10 декабря 2017 г.
Здесь мы представляем адаптация пассивной ЯСНОСТИ и 3D реконструкции метод для визуализации яичников сосудистую и фолликулярной капилляров в яичниках нетронутыми мыши.
Общая цель этого протокола состоит в том, чтобы получить полное трехмерное представление о распределении капилляров в фолликулах яичников мышей и показать их взаимосвязь. Яичники являются важным органом в репродукции и эндокринологии. Подсчитайте каждую стадию развития фолликула и соматических клеток.
Кроме того, в отличие от других органов, яичник не демонстрирует повторяющегося разветвления функциональной единицы. Местная сосудистая система может быть вместе с нервной системой также способны претерпевать серьезные изменения в каждом менструальном цикле у взрослых женщин. Применение пассивной прозрачности в яичнике позволяет нам увидеть общее распределение и связь между клетками и фолликулами в яичнике.
Ключевым моментом этого показателя является то, что он оказывает наименьшее влияние на яичники и отвечает за очистку от различных маркеров. Путем реконструкции микроскопического изображения мы получили карту яичника. Можно отчетливо наблюдать некоторые детали сосудов, нейронов и фолликулов.
Для анализа изображений были использованы некоторые варианты Имариса, чтобы оценить взаимосвязь между яичником и структурами. Приготовьте обильные растворы в соответствии с инструкцией к артикулу и держите их на льду. Обезболите мышей и убедитесь, что мышь не реагирует на защемление пальцев ног.
Распылите этанол, сделайте надрез на правом предсердии, затем мгновенно пропитайте левый желудочек 20мл ледяного PBS со скоростью 10мл в минуту для вымывания крови. Затем пропитайте животное холодным гидрогелевым раствором с той же скоростью. Соберите яичники, а также матку, чтобы сохранить целостность морфологии яичников.
Перенесите отделенные яичники в холодный раствор гидрогеля. Под стереомикроскопом удаляют жировые ткани вокруг яичника. Для лучшего результата фиксации тканей мы рекомендуем удалить яичниковую сумку.
Держите яичники в гидрогелевом растворе в течение трех дней. Через три дня переложите яичники в стеклянную пробирку и заполните пробирку свежим раствором гидрогеля. Натяните парапленку на верхнюю часть трубки, а затем оберните другую парапленку вокруг горлышка трубки.
Убедитесь, что между парапленкой и гидрогелевым раствором нет пузырьков. Поместите стеклянную трубку в шейкер при температуре 37 градусов по Цельсию на два часа, пока не образуется гель. Аккуратно удалите излишки геля вокруг яичников с помощью бумажного фильтра.
Поместите яичники в пробирку объемом 15 мл и заполните пробирку 10 мл очищающего раствора. Поместите пробирку в шейкер при температуре 37 градусов по Цельсию не менее чем на два месяца. Меняйте раствор для очищения каждый день в течение первых трех дней, а затем еженедельно до тех пор, пока яичник не очистится.
Все процедуры иммуноокрашивания проводятся при температуре 37 градусов по Цельсию на шейкере. Сначала промойте яичник в PBST в течение 24 часов. Второй инкубированный яичник в первичные антитела, разведенные PBST в течение двух суток.
В-третьих, смойте первичные антитела PBST-буфером. В-четвертых, инкубируйте яичник с желаемым вторичным антителом в PBST в течение двух дней. В-пятых, смыть вторичные антитела с помощью PBST.
В-шестых, перенесите яичник в раствор для согласования показателей преломления для гомогенизации RI. Проверьте визуальную прозрачность, когда яичник полностью осветлился, его можно визуализировать. Для начала приготовьте чистое блюдо со стеклянным дном.
Сделайте цилиндр для шпаклевки и придайте ему форму подковы. Плотно прижмите внешний край к предметному стеколу, чтобы создать герметичное пространство. Высота шпаклевки должна быть немного выше завязи.
Осторожно переместите завязь к центру и добавьте монтажный раствор. Надавите на замазку блюдом и закрепите ее двумя кусками шпаклевки. Когда яичник готов к изображению, для его изображения можно выбрать конфокальный микроскоп Nikon с объективом 16X.
Для получения изображений с помощью конфокального микроскопа сначала выберите линзу на панели Ni-E. В панели захвата выберите количество каналов. Во-первых, используйте язычок Eye Port и джойстик контроллера XY, чтобы переместить ткань к центру поля зрения с помощью окуляров микроскопа.
Во-вторых, после выключения света затвора нажмите на вкладку «Трансляция», чтобы отрегулировать мощность лазера, HV и смещение для каждого канала. На панели Коррекция интенсивности по оси Z отрегулируйте сбор данных для верхнего слоя, нажмите кнопку с плюсом, чтобы определить верх, переместите линзу вниз и установите соответствующую мощность высоковольтного и лазерного излучения на нижнюю часть ткани, а также добавьте информацию о самом низком слое, нажмите кнопку To ND, чтобы синхронизировать настройку с панелью и сбором. И при получении сначала установите количество шагов сканирования.
Нажмите на вкладки Z и большое изображение. Во-вторых, перейдите в окно сканирования большого изображения, чтобы определить размер поля в соответствии с границей ткани. В-третьих, вернитесь к получению ND, чтобы ввести размер полей сканирования и выбрать перекрытие в пределах 10 и 50%, затем нажмите «Запустить коррекцию Z» и дождитесь процесса визуализации.
Сначала используйте imagic, чтобы открыть исходный файл NIS. Нажмите кнопку изображения, выберите цвет и каналы отображения, затем нажмите файл, выберите последовательности изображений и отдельно сохраните их как файлы TIFF. Во-вторых, используйте Imaris для открытия одного из файлов tiff.
Нажмите кнопку редактирования и выберите добавить каналы, чтобы добавить остальные. Название и цвет можно изменить в настройках дисплея. Толщина ткани также должна быть скорректирована в свойствах изображения.
В-третьих, нажмите кнопку редактирования и выберите «Обрезать 3D», чтобы вырезать лишнюю деталь. Сначала нажмите кнопку с нитью накала и нажмите далее. Перейдите на панель среза, найдите сосуд для трассировки и расстояние, затем вернитесь к Surpass, введите статическое значение и нажмите далее.
Во-вторых, отрегулируйте начальный порог и порог заданной точки. На панели камеры выберите выделение, нажмите Shift и нажмите на точку, чтобы удалить лишнюю деталь. В-третьих, выберите самый высокий порог и нажмите «Далее».
Не выделяйте точки обнаружения и переходите дальше. Некоторую лишнюю деталь можно удалить в панели редактирования. Цвет можно редактировать, щелкнув по цвету.
3D-архитектура сосудистой сети яичников была исследована после иммуноокрашивания CD31. 3D-структуру можно наблюдать либо срезами через другие срезы, либо целиком с помощью объемного рендеринга. CD 31 – окрашивание фолликулярной сосудистой сети взрослой мыши.
С помощью реконструкции капилляров филаментами мы смогли показать взаимосвязь между отдельными фолликулами и их капиллярами. Яичник, как и у женщины, всегда активен и взаимозаменяем. Однако из-за ограниченности традиционного гистологического анализа очень трудно описать взаимоотношения между такими сложными составляющими.
Недавно разработанный метод, пассивная ясность, может помочь нам преодолеть оптическое препятствие, сохранить целостность целых тканей и предоставить функциональные подсказки.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Это исследование представляет адаптацию пассивного метода CLARITY для визуализации сосудов яичников и фолликулярных капилляров в неповрежденных яичниках мышей. Протокол направлен на обеспечение всеобъемлющего трехмерного представления распределения капилляров внутри фолликулов яичников.
Visualizing intact ovarian vasculature in 3D enables mechanistic de-risking of reproductive target hypotheses by clarifying structural relationships between follicles and their capillary networks. This approach supports predictive confidence in early discovery by providing quantitative, reproducible readouts of vascular architecture that can inform target validation and phenotypic screening workflows. The method addresses a key discovery-stage challenge: linking anatomical context to functional ovarian biology without tissue distortion.
The method integrates into the discovery continuum by enabling hypothesis-driven analysis of vascular contributions to follicle maturation, supporting lead identification through phenotypic vascular profiling, and informing preclinical validation via intact tissue phenotyping.