-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biochemistry
Метод альтернативной культуры для поддержания геномной Hypomethylation мышиных эмбриональных ство...
Метод альтернативной культуры для поддержания геномной Hypomethylation мышиных эмбриональных ство...
JoVE Journal
Biochemistry
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biochemistry
An Alternative Culture Method to Maintain Genomic Hypomethylation of Mouse Embryonic Stem Cells Using MEK Inhibitor PD0325901 and Vitamin C

Метод альтернативной культуры для поддержания геномной Hypomethylation мышиных эмбриональных стволовых клеток с использованием MEK ингибитор PD0325901 и витамином С

Full Text
6,854 Views
11:53 min
June 1, 2018

DOI: 10.3791/56391-v

Cuiping Li1, Weiyi Lai1, Hailin Wang1

1State Key Laboratory of Environmental Chemistry and Ecotoxicology, Research Center for Eco-Environmental Sciences,Chinese Academy of Sciences

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Мы подробно описаны два химической основе протоколы для культивирования мышиных эмбриональных стволовых клеток. Этот новый метод использует синергетический механизмы содействия тет опосредованной окисления (витамин C) и подавления de novo синтеза 5-метилцитозин (по PD0325901) для поддержания ДНК hypomethylation и плюрипотентности эмбриональных стволовых клеток мыши.

Transcript

Общая цель этого протокола заключается в использовании низкомолекулярных соединений PD0325901 и витамина С для поддержания гипометилированного и плюрипотентного состояния в эмбриональных стволовых клетках мышей. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области культивируемых эмбриональных стволовых клеток мыши FBS, такие как гетерогенность морфологии и дегиперметилирование. Таким образом, основное преимущество этого метода заключается в том, что эмбриональные стволовые клетки мыши способны поддерживать превосходную морфологию и гипометилированное и недифференцированное состояние.

После приготовления планшетов и буферов, согласно текстовому протоколу, предварительно разогрейте мышиные ЭС клетки, питательную среду, трипсин и ПБС на водяной бане при температуре 37 градусов Цельсия. Чтобы пройти через клетки, отсадите среду из чашки и используйте два миллилитра PBS для промывания клеток два раза. Затем снимите PBS и добавьте в клетки 0,3 миллилитра трипсона ЭДТА и быстро наклоните чашку, чтобы покрыть клетки в растворе.

Немедленно удалите трипсин и инкубируйте планшет при температуре 37 градусов Цельсия в течение одной минуты, чтобы отделить клетки. Добавьте два миллилитра предварительно подогретой сывороточной среды, чтобы инактивировать трипсин, и используйте пятимиллилитровую пипетку, чтобы повторно суспендировать клеточные колонии 10 раз в одноклеточную суспензию. Налейте 150 микролитров клеточного раствора в новую шестисантиметровую посуду, покрытую желатином, и добавьте три миллилитра свежеприготовленной VCPD0325901 среды.

Культивируйте клетки при температуре 37 градусов Цельсия и пяти процентах CO2. Из-за нестабильности Vc каждые 24 часа во время инкубации удаляйте старую питательную среду и добавляйте три миллилитра свежей среды Vcpd0325901. После достижения 70-80-процентной конфлюенции пропустите клетки и продолжайте культивировать их, как показано на рисунке.

Чтобы провести экстракцию ДНК, соберите клетки с трипсином, как было показано ранее, и используйте набор для очистки геномной ДНК в соответствии с инструкциями производителя. Добавьте 100 микролитров ультрачистой воды в пробирку с ДНК и растворите ДНК пипетированием примерно 15 раз. Затем с помощью спектрофотометра измерьте соотношение Od260 и 280, чтобы определить концентрацию и качество ДНК.

Концентрация ДНК должна составлять около 500 нонограмм на микролитр. Затем расщепите пять микрограммов ДНК, объединив их с пятью микролитрами 100 миллимолярного трис-гидрохлорида PH7,6, двумя единицами кишечной фосфатазы теленка, одной единицей Dnase One и 0,005 единицами змеиного яда, фосфодиэстеразой. Затем используйте ультрачистую воду, чтобы довести объем до 50 микролитров.

Инкубируйте реакцию при температуре 37 градусов Цельсия в течение ночи. На следующее утро соберите образец центрифугированием при температуре 1000xg при комнатной температуре в течение одной минуты. Затем перелейте раствор в ультрафильтрационные пробирки и вращайте образцы при температуре 13 000xg и 4 градусах Цельсия в течение 30 минут, чтобы удалить ферменты пищеварения.

Чтобы подготовить образцы к анализу 5HMC, перенесите 36 микролитров фильтрата в новую пробирку объемом один миллилитр и добавьте четыре микролитра D35HMC для окончательной концентрации в три наномоляра. Для анализа 5MC пипетируйте 196 микролитров ультрачистой воды в новую центрифужную пробирку и добавьте четыре микролитра фильтрата из-за высокой плотности 5MC в геномной ДНК. Перелейте 36 микролитров разбавленного раствора 5MC в новую центрифужную пробирку и добавьте четыре микролитра D35MC для получения конечной концентрации 50 наномоляров.

Используйте D35HMC и D35MC в качестве внутренних стандартов для калибровки 5HMC и 5MC соответственно. После настройки параметров для анализа 5MC и 5HMC в программном обеспечении UHPLCMS, согласно текстовому протоколу, установите параметры для QQQMSMS, нажав MS QQQ. Для параметра «Время остановки» выберите «Без ограничений/как насос».

В качестве источника ионов выберите ESI. Для фильтрации по времени установите флажок Ширина пика и введите 0,07 минуты. Чтобы настроить временные сегменты, в качестве времени начала выберите ноль.

Чтобы задать режим сканирования в MRM для анализа намека из столбца, в поле Тип сканирования выберите MRM. В поле Значение деления выберите To MS. Для Delta EMV plus введите 200, а для Delta EMV минус введите ноль. Постройте параметры для мониторинга переходов, сначала щелкнув MSQQQ one acquisition.

Чтобы задать сегменты сканирования, в поле Задержка введите 90. Чтобы задать напряжения фрагментов для фрагментора, введите 90. Для Collision Energy введите пять.

В поле Cell Accelerator Voltage введите четыре. Чтобы установить режим положительных ионов, для параметра Полярность выберите положительный. Для проведения СВЭЖХ-разделения мононуклеозидов готовят растворы а и б для аллюзии 5МК и цитозина путем смешивания 500 миллилитров ультрачистой воды с 500 микролитрами муравьиной кислоты для раствора а.

Затем отмерьте 500 миллилитров 100-процентного метанола и раствор b. Смешайте раствор a и раствор b в соотношении объема 95 к 5 объему в качестве подвижной фазы для элюирования 5MC и C. Затем установите скорость потока на 0,25 миллилитров в минуту. Отделите 5HMC с помощью оптимизированной градиентной аллюзии.

Затем установите скорость потока на уровне 0,25 миллилитра в минуту. Мониторинг переходов для 5MC, D35MC, DC, 5HMC и D35HMC. Установите напряжение капилляров на 3 500 вольт.

Затем установите объем инъекции в 5 микролитров и проанализируйте каждый образец по три раза. Используйте соответствующие стандартные кривые для оценки количества 5MC и 5HMC в соответствии с текстовым протоколом. Как видно из этого анализа геномной ДНК в клетках ES мышей с помощью СВЭЖХ МСМС, лечение VcPD0325901 привело к более быстрому снижению метилирования ДНК и достигло стабильных пяти уровней MC через пять дней, в то время как лечение Vc 2i привело к сопоставимому уровню на 11-й день.

Этот график показывает, что Vc-содержащая обработка резко увеличивала частоту 5HMC через один день, а после этого уровни 5HMC постепенно снижались из-за прогрессирующего снижения субстрата 5MC. Вестерн-блоттинг показал, что Prdm14 был значительно повышен, в то время как Dnmt3b и его кофактор, Dnmt3l, значительно снижались при отступлении клеток с PD0325901, что указывает на действие PD0325901 в стирании 5MC. В этом анализе щелочной фосфатазы все мышиные ЭС-клетки были окрашены в фиолетовый цвет с шарообразной морфологией при культивировании в течение 26 дней в VcPD032590, что указывает на недифференцированное состояние.

Напротив, клетки, выращенные в FBS, содержащем только среду, имели светлый цвет с частичным расширением, указывающим на частичную дифференцировку. После освоения этой техники ее можно выполнить за пять часов, если она выполнена правильно. При попытке выполнить эту процедуру важно помнить, что FBS необходимо предварительно проверить.

Кроме того, следует избегать чрезмерного дозирования клеток через проход и ежедневной замены питательной среды VcPDO325901. После этой разработки этот метод открывает путь для исследователей в области культивирования мышиных ЭС-клеток in vitro для изучения развития и процессов эмбрионов in vitro и сгенерированных клеток, имеющих медицинское значение для регенеративной медицины. После просмотра этого видео у вас должно сложиться более глубокое понимание того, как поддерживать морфологию роста и гиперметилированное и множественное потенцирующее состояние для мышиных ЭС-клеток с помощью двух малых молекулярных компонентов, ингибитора MEK, PD0325901.

Не забывайте, что работа с Trisol, DMS или PMS и DTT может быть чрезвычайно опасной, и при выполнении этой процедуры всегда следует соблюдать меры предосторожности, такие как ношение перчаток, маски и очков.

Explore More Videos

Биохимия выпуск 136 витамин C PD0325901 мышь эмбриональных стволовых клеток hypomethylation ДНК Prdm14 плюрипотентность

Related Videos

Подготовка мышиных эмбриональных фибробластов подходит для культивирования эмбриональных и индуцированных плюрипотентных стволовых клетках

09:38

Подготовка мышиных эмбриональных фибробластов подходит для культивирования эмбриональных и индуцированных плюрипотентных стволовых клетках

Related Videos

91.8K Views

Серийный обогащению сперматогониальные стволовых и клеток-предшественников (SSC) в культуре Вывод Долгосрочные взрослых мышей линии Юг-Юг

12:26

Серийный обогащению сперматогониальные стволовых и клеток-предшественников (SSC) в культуре Вывод Долгосрочные взрослых мышей линии Юг-Юг

Related Videos

14.1K Views

Альтернативные Культуры для человека плюрипотентных стволовых клеток производство, техобслуживание, и генетический анализ

08:27

Альтернативные Культуры для человека плюрипотентных стволовых клеток производство, техобслуживание, и генетический анализ

Related Videos

12.6K Views

Коллекция Serum- и фидерных свободной эмбриональных стволовых клеток мыши-кондиционированная среда для подхода бесклеточный

09:32

Коллекция Serum- и фидерных свободной эмбриональных стволовых клеток мыши-кондиционированная среда для подхода бесклеточный

Related Videos

10.5K Views

Структурно-функциональные исследования в мышиных эмбриональных стволовых клеток Использование Рекомбиназа-опосредованного кассетный Обмен

15:13

Структурно-функциональные исследования в мышиных эмбриональных стволовых клеток Использование Рекомбиназа-опосредованного кассетный Обмен

Related Videos

11.2K Views

Анализ ретиноевой кислоты-индуцированной Neural дифференциации эмбриональных стволовых клеток мыши в двух и трех-мерных эмбриональных телец

09:04

Анализ ретиноевой кислоты-индуцированной Neural дифференциации эмбриональных стволовых клеток мыши в двух и трех-мерных эмбриональных телец

Related Videos

9.2K Views

Дифференцирование линий стволовых клеток мыши Предимплантационная эмбрионов

12:59

Дифференцирование линий стволовых клеток мыши Предимплантационная эмбрионов

Related Videos

8.7K Views

Репрессии транскрипции гена, перенаправив клеточными с химической эпигеномные модификаторы

10:28

Репрессии транскрипции гена, перенаправив клеточными с химической эпигеномные модификаторы

Related Videos

6.7K Views

Модель неслучайной мыши для фармакологической активации Mecp2 на неактивной х-хромосоме

08:27

Модель неслучайной мыши для фармакологической активации Mecp2 на неактивной х-хромосоме

Related Videos

6.6K Views

Двухэтапная стратегия, которая сочетает эпигенетическую модификацию и биомеханические сигналы для создания плюрипотентных клеток млекопитающих

08:01

Двухэтапная стратегия, которая сочетает эпигенетическую модификацию и биомеханические сигналы для создания плюрипотентных клеток млекопитающих

Related Videos

2.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code