September 4th, 2017
Этот протокол демонстрирует индукции мозгового кавернозных мальформация болезни в мышиной модели и контраст использует расширение Микро Компьютерная томография для измерения поражения бремя. Этот метод увеличивает значение установленных мыши модели для изучения молекулярные основы и потенциальных терапий для церебральной кавернозных мальформация и другие цереброваскулярные заболевания.
Общая цель этой процедуры состоит в том, чтобы вызвать церебральные кавернозные мальформации у неонатальных мышей и измерить бремя заболевания с помощью микрокомпьютерной томографии. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области церебральных сосудистых заболеваний, таких как церебральные кавернозные мальформации. Основное преимущество этого метода заключается в том, что бремя болезни кавернозной мальформации головного мозга в моделях новорожденных мышей может быть точно и эффективно определено по сравнению с существующими методами.
Визуальная демонстрация этого метода имеет решающее значение, так как индукция кавернозной мальформации головного мозга и этапы анализа микрокомпьютерной томографии сложны для изучения, поскольку это требует опыта и использования сложного программного обеспечения. Начните с растворения 4-HT в 100% этаноле до концентрации 10 миллиграммов на миллилитр. Приготовьте 30 микролитров алаквад, а затем храните при температуре минус 80 градусов по Цельсию.
В день применения разведите алакваду в дозе 4-HT в кукурузном масле до 0,5 миллиграмм на миллилитр. Затем с помощью инсулинового шприца интрогастрально введите 50 микролитров 4-HT новорожденным детенышам P1, чтобы вызвать экспериментальные поражения CCM. Начните подготовку образца с наполнения шприца объемом 10 миллилитров, оснащенного иглой 29 калибра, тремя миллилитрами 2%-ного параформальдегида и PBS.
Затем проведите внутрисердечную продукцию эвтенизированного щенка Р8, введя иглу в желудочек мышиного сердца и медленно вводя полный объем параформальдегида. После того, как вы с помощью ножниц отделите голову, удалите кожу с головы и отклейте череп с помощью щипцов, чтобы рассечь весь мозг на 4% параформальдегида и PBS. После фиксации мозга на ночь при температуре 4-HT градусов по Цельсию.
На следующий день отделите задние мозги с помощью щипцов и промойте раствором PBS. Затем инкубируйте задний мозг в растворе йода Люголя в течение 48 часов. После инкубации кратковременно высушите задний мозг на воздухе, чтобы удалить избыток раствора йода Люголя.
Затем упакуйте окрашенные йодом задние мозги Люголя в микроцентрифужные пробирки объемом 0,65 микролитра и полностью запечатайте пластиковой парафиновой пленкой, чтобы избежать усадки тканей. Поместите микроцентрифужные пробирки в пятимиллилитровые пластиковые пробирки с губками, чтобы они не двигались во время сканирования. Вертикально установите трубку, содержащую задний мозг, на алюминиевый держатель в системе микро-КТ.
Задайте параметры сканирования. Используйте 540 проекций и двухсекундное время экспозиции при источнике 50 киловольт и 10 ватт для получения томографических наборов данных. Радиограммы сканирования автоматически восстанавливаются с помощью аппаратного программного обеспечения для реконструкции проекции, поставляемого системой микро-компьютерной томографии, создавая серию изображений из 16-битных осевых срезов.
Микрокомпьютерная томография с контрастом йода Люголя в достаточной степени выявляла поражения КМК. Отсканированные рентгеновские изображения были реконструированы для получения 3D-изображений мозга мыши, что позволило визуализировать целые поражения в паренхиме мозга на разной глубине и ориентации, а также оценить структуру в 3D-расположении поражений в мозге. В этой таблице приведен пример количественного вывода помеченных отдельных поражений.
После своего развития этот метод проложил путь исследователям в области сосудистых заболеваний к изучению механизма и терапевтических возможностей для лечения церебральных кавернозных мальформаций на мышиных моделях. После просмотра этого видео у вас должно быть хорошее понимание того, как индуцировать поражение КМК на мышиных моделях, а также как получить и проанализировать нагрузку поражения КМК с помощью метода микро-КТ.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Этот протокол демонстрирует индукцию болезни церебральных каверном у новорожденных мышей и использует микро-КТ для измерения степени поражения. Этот метод улучшает понимание молекулярной основы и потенциальных методов лечения церебральных каверном и других болезней сердечно-сосудистой системы.
Quantitative micro-CT imaging of cerebral cavernous malformations (CCMs) in genetically engineered mouse models enables precise assessment of lesion burden, supporting mechanistic de-risking and target validation in cerebrovascular disease research. This approach enhances predictive confidence for early-stage therapeutic hypothesis testing and informs portfolio triage by providing robust, reproducible lesion quantification. Integration of high-resolution imaging with genetic disease models positions this workflow as a critical inflection point for translational continuity in vascular biology pipelines.
This method bridges early discovery and preclinical research by enabling hypothesis-driven genetic manipulation and quantitative phenotyping in mouse models, supporting lead identification and translational biomarker alignment.