RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/56926-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Хиральных спиртов аминокислоты являются универсальным молекулы для использования как строительные леса в органическом синтезе. Начиная с L-лизин, мы синтезировать амино спиртов реакцией ферментативные Каскад, сочетая окисления diastereoselective C-H, катализируемые dioxygenase следуют расщепления карбоновые кислоты группу соответствующего гидроксила аминокислоты, Декарбоксилаза.
Общей целью этой процедуры является синтез и очистка хиральных аминоспиртов, которые представляют собой соединения с широким спектром применения от хиральных вспомогательных спиртов для органического синтеза до фармацевтической терапии. Это всеподатливый измеритель для получения доступа к хиральному аминокислотному спирту, полученному из натуральной аминокислоты лизина в два или три ферментативных этапа в одной части. Основными преимуществами данной процедуры является простота протокола и оперативность этапов очистки.
Демонстрировать процесс будет Орели Фосси-Жуэн, техник из моей лаборатории. Чтобы синтезировать производное дигидроксилированного лизина, добавьте буфер хепса, L-лизин, глутаровую кислоту альпахиты, аскорбат натрия и еще соль в колбу Эрленмайера объемом 250 мл. Затем добавьте воду до конечного объема 10 мл, учитывая объем добавляемого ферментного раствора.
Добавьте дезоксигеназу KD-01 до конечной концентрации 0,075 мг на мл. Встряхните реакционную смесь при комнатной температуре при 300 об/мин в течение соответствующего времени. После смешивания переложите 10 мкл реакционной смеси в пробирку с эпендорфом объемом 1,5 мл.
Затем добавьте раствор бикарбоната натрия aquias, этанол и 2,5 мг на мл раствора DNFB в этанол. Закройте микропробирку и встряхивайте раствор в течение 1 часа при 1000 об/мин и 65 градусах Цельсия. Когда закончите, используйте мини-центрифугу, чтобы успокоить раствор.
Погасить реакционную смесь 10 мкл 1М гидрохлорной кислоты. Смешайте раствор с помощью вихря, а затем используйте мини-центрифугу, чтобы успокоить его. Используя шприц с приманкой объемом 1 мл, отфильтруйте смесь на нестерильном шприц-фильтре диаметром 4 мм с гидрофильной мембраной из поливинилиденфторида размером 0,22 мкм.
После этого поместите образец деривитизированной реакционной смеси в прибор для ВЭЖХ. Введите 10 мкл в колонку C-18 с помощью ультрафиолетового детектирования на 400 нанометрах для анализа продукта. Когда мониторинг реакции покажет завершение реакции, добавьте в колбу глутаровую кислоту alphaquita, аскорбат натрия и еще соли.
Добавьте дезоксигеназу KD-02 в соответствующую конечную концентрацию 0,5 мг/мл. Рассчитано с использованием начального объема реакции. Встряхните реакционную смесь при комнатной температуре при 300 об/мин в течение 18 часов.
Когда мониторинг реакции покажет завершенную реакцию, добавьте 100 мкл 100 миллимолярного DTT в реакционную смесь. Плюс 100 мкл 100 миллимолярных PLP. Добавьте очищенную декарбоксилазу Dccpin в приблизительной конечной концентрации 0,5 мг на мл.
Рассчитывается с использованием начального объема реакции. Затем встряхните реакционную смесь при комнатной температуре при 300 об/мин в течение 18 часов. Как только реакция завершится, охладите смесь, поместив колбу в ледяную баню.
Осторожно добавьте 0,25 мл 6 моляров HCL и осторожно встряхните холодную реакционную смесь во время добавления. Теперь переложите акдиковую смесь в коническую центрифужную пробирку объемом 50 мл с помощью стеклянной пастбищной пипетки. Центрифугируйте смесь при давлении в 1,680 раз и 4 градусах Цельсия в течение 15 минут.
После центрифугирования переложите надосадочную жидкость в колбу с круглым дном объемом 250 мл. Затем добавьте 10 мл деионизированной воды в центрифужную трубку, содержащую гранулу. Vortex для повторного суспендирования гранулы.
После центрифугирования образца переложите надосадочную жидкость в круглую донную колбу, содержащую первую надосадочную жидкость. Заморозьте собранные надосадочные жидкости, всплывая из колбы в жидкий азот при постоянном ручном закручивании. Немедленно перенесите колбу в сублимационную сушилку с настольным коллектором, чтобы предотвратить оттаивание материала.
После завершения процесса сублимационной сушки извлеките колбу из сублимационной сушилки и выполните этапы очистки. Для биокаталитического декарбоксилирования моногидроксильных L-лизинов DC из S Rhumerentium проявляет активность по отношению ко всем моногидроксилизинам. Где наилучшая конверсия наблюдается для трех и пяти производных соответствующих хиральных гидрокси-диаминов.
Как и ожидалось, Dccpin оказался наиболее подходящим для декарбоксилирования 4R-гидрокси-L-лизина 2. В стандартных условиях реакции превращение 3S-гидрокси-L-лизина 1 в его декарбоксилированный аналог 5 с DCcpin было низким. При этом не наблюдалось никакой активности в отношении 5R-гидрокси-L-лизина.
Для биокаталитического декарбоксиилирования дегидрокси-L-лизинов только 3R, 4R, дигидрокси-L-лизин 3 количественно превращали в соответствующий дигидрокси-диамин 7 в стандартных условиях реакции. Конверсия 45-дигидрокси-L-лизина 8 была умеренной, но улучшалась за счет увеличения ферментативной нагрузки. Ни один из PLP-DC не был активен по отношению к 35-дигидрокси-L-лизину 9.
Ферментативные каскадные реакции, демонстрирующие количественную конверсию по данным мониторинга ВЭЖХ, были успешно масштабированы. Аминоспирты были очищены от сложных ферментативных реакционных смесей и превосходных кислот и характеризовались методом ЯМР. После освоения этого ферментативного каскада синтез и последующая очистка могут быть выполнены в течение 48 часов, если он правильно сформирован.
При попытке проведения этой процедуры важно помнить, что хорошее насыщение кислородом основного реакционного вещества имеет важное значение для диоксигенированных реакций. А также тщательный мониторинг, чтобы убедиться, что весь лизин употреблен перед добавлением дикарбоксидазы. Основным недостатком данного протокола являются ограниченные субсидируемые диапазоны фермента диоксигеназы и декарбоксилазы.
Тем не менее, биочаталитный синтез различных аминокислот из аминокислот может быть изучен с помощью другого набора ферментов. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как проводить ферментативную каскадную реакцию и как очищать аминоспирты от сложных реакционных смесей. Не забывайте, что работа с DNFB может быть опасной, и в противном случае следует принимать меры предосторожности, такие как ношение средств индивидуальной защиты и предотвращение реакции в вытяжном шкафу.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
06:31
Related Videos
9.9K Views
11:01
Related Videos
10.2K Views
09:57
Related Videos
9.3K Views
12:02
Related Videos
12.5K Views
06:44
Related Videos
10.1K Views
11:09
Related Videos
11.2K Views
08:12
Related Videos
10.5K Views
10:17
Related Videos
7.3K Views
11:04
Related Videos
3.4K Views
12:07
Related Videos
17.7K Views