-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Визуализация корковых модулей в плоский млекопитающих коре
Визуализация корковых модулей в плоский млекопитающих коре
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Visualization of Cortical Modules in Flattened Mammalian Cortices

Визуализация корковых модулей в плоский млекопитающих коре

Full Text
13,317 Views
08:49 min
January 22, 2018

DOI: 10.3791/56992-v

Simon M. Lauer*1, Undine Schneeweiß1, Michael Brecht1,2,3, Saikat Ray*1

1Bernstein Center for Computational Neuroscience,Humboldt University of Berlin, 2NeuroCure Cluster of Excellence, 3German Center for Neurodegenerative Diseases

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Эта статья описывает подробная методология для получения уплощенных секции касательной от млекопитающих коре и визуализировать корковых модули, используя гистохимические и иммуногистохимических методов.

Transcript

Общей целью этой процедуры уплощения и окрашивания коры головного мозга является визуализация клеточных модулей в областях коры головного мозга послойно. Этот метод может ответить на ключевые вопросы нейробиологии, например, как структура коры головного мозга распространяется на мозг и как она может быть связана с функцией. Основное преимущество этой техники заключается в том, что вы можете сравнивать кортикальную архитектуру в ламинальной манере, и сравнивать различные ее аспекты, например, как она сохранила эволюцию класса или как она изменяется по функциям.

Демонстрировать технику будут Саймон Лауэр и Ундина Шнеевейб, студентка и техник из лаборатории профессора Мишель Блэк. Для начала необходимо провести транскардиальную перфузию животного для получения однородно зафиксированного и бескровного мозга. После удаления мозга погрузите его в 0,1 молярного фосфатного буфера.

Если желательны участки с большими областями коры головного мозга, сделайте мозг плоской перед дальнейшей постфиксацией. Однако, чтобы получить участки более труднодоступных областей, таких как медиальная энторинальная кора, зафиксируйте мозг в 4% PFA в течение 24 часов до уплощения. Приготовьтесь поддерживать мозг влажным с помощью буфера в течение всего вскрытия.

Для начала разделите полусферы с помощью скальпеля. Если мозг не зафиксирован, будьте осторожны при обращении с ним. Далее, фиксируя мозг мозжечком, аккуратно введите шпатель, чтобы открыть плоскость рассечения в мозолистом теле.

Круглый кончик шпателя должен быть направлен в сторону от коры головного мозга. Затем манипулируйте шпателем, чтобы разделить таламус и кору головного мозга. Далее отделите подкорковые структуры с помощью лезвия бритвы.

Далее отделите подкорковые структуры с помощью скальпеля или края шпателя. Чтобы улучшить уплощение, сделайте чистый разрез через стриатум, прилежащее ядро и лобную кору орбиты, так как они увеличивают толщину коры в латеральной области. Затем добавьте облегчающий разрез у основания внутренней области префронтальной коры.

Это позволит развернуть медиальные участки коры головного мозга. Теперь поместите полусферическую кору вниз на предметное стекло. Затем поместите два глиняных цилиндра по обе стороны от ткани.

Глина должна быть на 10-20% тоньше, чем ткань мозга, так как глина определяет степень сплющивания. Затем поместите стеклянную сторону по касательной к коре головного мозга, сначала соприкасаясь с боковой частью. Затем установите груз на стакан так, чтобы масса была центрирована над боковой частью.

Теперь дайте сборке постоять от трех до пяти часов в фосфатном буфере при температуре четыре градуса Цельсия. Настоящий ключ к этой подготовке заключается в том, чтобы сделать мозг как можно более плоским, так как это оказывает наибольшее влияние на просмотр карты коры головного мозга. Наконец, при необходимости, зафиксируйте мозг.

Перенесите сплющенное полушарие на 1% PFA, или 2% PFA, если оно не было взято у животного, подвергшегося перфузии. Затем дайте ему зафиксироваться в течение 24 часов при температуре 4 градуса Цельсия, слегка помешивая. Сначала промойте сплющенную полусферу в фосфатном буфере в течение 15 минут.

Затем разрежьте полушарие по касательной на вибратоме. Зафиксируйте ткань в нужном положении с помощью небольшого объема цианоакрилата и мягкого нажатия. Будьте осторожны, так как слишком большое количество клея может привести к появлению дефектов пореза.

Теперь обрежьте полусферу от более толстого и устойчивого конца к более тонкому концу на необходимой толщине. Если использовались низкие концентрации фиксаторов, разрезайте ткань медленно с высокой амплитудой. Далее промойте разрезанную ткань в буфере hepes в течение 15 минут с легким помешиванием.

Во время стирки приготовьте свежий раствор для окрашивания цитохромоксидазы. И добавьте компонент DAB непосредственно перед его использованием. Теперь инкубируйте срезы в свежеприготовленном растворе для окрашивания при комнатной температуре с помощью шейкера и следите за происходящим.

В зависимости от степени фиксации, окрашивание может быть заметно через 10 минут или через несколько часов. Если реакция протекает слишком медленно, увеличьте температуру до 37 градусов по Цельсию. Чтобы остановить реакцию, переложите секции в ванну с 4% PFA и дайте им поинкубироваться в течение 15 минут при легком перемешивании.

Затем промойте секции три раза, с буфером хепса в течение 10 минут за одну стирку. Теперь закрепите и высушите секции на стеклянных предметных стеклах. И обезвоживайте их, используя все более сильные ванны с этанолом.

Затем промойте предметные стекла в изопропаноле в течение пяти минут, а затем в ксилоле в течение пяти минут. После ванны с ксилолом сразу же добавьте быстрозатвердевающий монтажный материал, не содержащий воды. Среды на водной основе ухудшают пятно.

После добавления защитного стекла храните предметные стекла при температуре четыре градуса Цельсия до получения изображения. Корковые участки соматосенсорной коры головного мозга в различных видах мозга обрабатывались с помощью описанных процедур. Этот сравнительный подход позволяет изучать эволюционные силы, формирующие кору головного мозга, такие как высококонсервативное представление мистических вибрисс у грызунов и зайцеобразных в виде бочек.

Архитектура медиальной энторинальной коры была изучена на участках, параллельных поверхности кожуры, с использованием тангенциального разреза медицинской энторинальной коры у мышей, крыс и египетских летучих мышей. Кроме того, человеческий мозг обрабатывался с помощью мягкого сплющивания коры головного мозга и тангенциальных срезов. Весь мозг был криоконсервирован и разрезан на криостате с температурой 60 микрон.

Иммуноокрашивание использовали для мечения кальбиндин-положительных модулей парамеатальных клеток. В энторинальной коре модули кальбиндина демонстрируют замечательную периодичность у каждого вида и изменяются по размеру всего в 10 раз, при этом размер мозга варьируется в 20 000 раз. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как получить тангенциальные сечения для анализа.

Однажды, освоив эту технику, можно пройти за пару часов. Пытаясь выполнить эту процедуру, важно помнить о правильном выравнивании мозга, а не о размере, качестве или конечных результатах. Не забывайте, что работа с такими агентами, как PFA и DAB, может быть чрезвычайно опасной, поэтому вы всегда должны носить защитную одежду и работать под полевым освещением.

Explore More Videos

Нейробиологии выпуск 131 уплощение касательной цитохрома оксидазы кальбиндин соматосенсорной коры кора медиальной entorhinal

Related Videos

В естественных изображений из глубоких слоях коры использованием микропирамид

09:45

В естественных изображений из глубоких слоях коры использованием микропирамид

Related Videos

11.6K Views

Хронический изображений Мыши зрительной коры Использование тоньше черепа-подготовка

11:12

Хронический изображений Мыши зрительной коры Использование тоньше черепа-подготовка

Related Videos

14.2K Views

Приготовление колликуло-таламокортикальных срезов из мозга детеныша мыши

03:47

Приготовление колликуло-таламокортикальных срезов из мозга детеныша мыши

Related Videos

301 Views

Гистохимическая визуализация корковых модулей в уплощенных срезах мозга

03:34

Гистохимическая визуализация корковых модулей в уплощенных срезах мозга

Related Videos

291 Views

Целевые маркировки нейронов в конкретных функциональных микро-области коры головного мозга путем объединения Внутренняя сигнала и Двухфотонные изображений

11:24

Целевые маркировки нейронов в конкретных функциональных микро-области коры головного мозга путем объединения Внутренняя сигнала и Двухфотонные изображений

Related Videos

13.9K Views

Модификация Colliculo-таламокортикального мозга мыши фрагмент, включающий 3-D печать палаты компонентов и нескольких масштаб оптических изображений

06:05

Модификация Colliculo-таламокортикального мозга мыши фрагмент, включающий 3-D печать палаты компонентов и нескольких масштаб оптических изображений

Related Videos

8.5K Views

Многослойный кортикальный Ca 2+ Визуализация в свободно перемещающихся мышах с помощью призматических зондов и миниатюрной флуоресцентной микроскопии

10:35

Многослойный кортикальный Ca 2+ Визуализация в свободно перемещающихся мышах с помощью призматических зондов и миниатюрной флуоресцентной микроскопии

Related Videos

31.7K Views

Визуализация Thalamocortical аксона ветвления и синапса формирования в Organotypic Cocultures

06:16

Визуализация Thalamocortical аксона ветвления и синапса формирования в Organotypic Cocultures

Related Videos

6.7K Views

Крупномасштабные трехмерных изображений клеточной организации коры головного мозга мыши

09:55

Крупномасштабные трехмерных изображений клеточной организации коры головного мозга мыши

Related Videos

8.6K Views

2D и 3D индуцированные человеком плюрипотентные модели на основе стволовых клеток для рассечения первичного поражения ресничек во время неокортикального развития

14:19

2D и 3D индуцированные человеком плюрипотентные модели на основе стволовых клеток для рассечения первичного поражения ресничек во время неокортикального развития

Related Videos

4.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code