RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/57406-v
Tomoko Yamazaki1,2, Wenling Li1, Yoh-Suke Mukouyama1
1Laboratory of Stem Cell and Neuro-Vascular Biology, Genetics and Developmental Biology Center, National Heart, Lung, and Blood Institute,National Institutes of Health, 2Earle A. Chiles Research Institute, Robert W. Franz Cancer Center,Providence Portland Medical Center
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Здесь мы описываем высокого разрешения всего гора изображений метод в коже уха всей взрослой мыши, что позволяет нам визуализировать ветвления морфогенеза и кучность периферических нервов и кровеносных сосудов, а также распределение иммунных клеток.
Общая цель этой процедуры заключается в визуализации морфогенеза ветвления и структурирования периферических нервов и кровеносных сосудов, а также распределения иммунных клеток. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области нейробиологии, сосудистой биологии и иммунологии, проливая свет на морфологические аномалии в периферических нервах и кровеносных сосудах, а также на воспаление. Основное преимущество этой методики заключается в том, что мы можем визуализировать клеточные компоненты периферических нервов, кровеносных сосудов и иммунных клеток в коже по всей ее глубине и сравнивать трехмерную архитектуру нервной и сосудистой систем.
Этот метод может дать представление о структурах нейрососудистой системы и распределении иммунных клеток у молодых и взрослых мышей в нормальных и патологических условиях. После усыпления взрослых мышей в соответствии с текстовым протоколом отделите ухо от основания и поместите его в чашку Петри размером 35 на 10 миллиметров, содержащую два миллилитра HBSS. Затем с помощью ножниц кратко подстригите волоски.
Осторожно отшелушите заднюю и переднюю кожу от промежуточного хряща. Перенесите каждый участок кожи отдельно в 24-луночный планшет, содержащий один миллилитр ледяного, свежего 4% PFA в PBS на лунку. Затем разровняйте кожу в ПФА.
Далее зафиксируйте заднюю и переднюю кожу хрящами при температуре четыре градуса Цельсия на один час. Затем используйте один миллилитр PBS для полоскания кожи три раза в течение пяти минут, аккуратно перемешивая при комнатной температуре. Перенесите кожу с хрящом на дно чашки Петри размером 35 на 10 миллиметров.
С помощью тонких изогнутых щипцов отшелушите хрящ от передней части кожи. Затем отрежьте область основания, которая свернута и имеет жировую и соединительную ткани. С помощью тех же щипцов аккуратно удалите волоски, жировую ткань и соединительную ткань с внутренней стороны задней части кожи.
Используйте PBS, чтобы поддерживать кожу влажной. Чтобы провести иммуногистохимическое окрашивание всего монта, перенесите заднюю и переднюю поверхность кожи на 24-луночный планшет, содержащий один миллилитр 10% термоинактивированного буфера для блокирования сыворотки на лунку. Инкубируйте кожу при аккуратном перемешивании при комнатной температуре в течение 30 минут.
Разведите первичные антитела в блокирующем буфере, как описано в текстовом протоколе, и добавьте в лунку 150 микролитров первичных антител из блокирующего буфера. Затем перенесите заднюю и переднюю части кожи в новые лунки, содержащие первичные антитела. Инкубируйте кожуру при слабом перемешивании при температуре четыре градуса Цельсия в течение ночи.
На следующий день, после переноса кожи в новые лунки или аспирации первичных антител, добавьте один миллилитр 2%-ной сыворотки в PBS с 0,2%-ным Тритоном Х-100. Промойте образцы при аккуратном перемешивании при комнатной температуре в течение 15 минут. Повторите стирку еще два раза.
Тем временем приготовьте вторичные антитела в 10%-ном блокирующем буфере и отфильтруйте растворы антител через мембранный шприцевой фильтр PVDF толщиной 0,22 микрометра, подключенный к одномиллилитровому шприцу. Центрифугируйте раствор при 13 000-кратном течении силы тяжести в течение 10 минут, чтобы удалить агрегированные частицы вторичных антител из блокирующего буфера, добавив в новую лунку 150 микролитров вторичных антител из блокирующего буфера. Перенесите кожу в лунку, содержащую вторичные антитела.
Оберните 24-луночный планшет алюминиевой фольгой, чтобы защитить его от света, и инкубируйте кожу при осторожном перемешивании при комнатной температуре в течение одного часа. Добавьте один миллилитр 2%-ной сыворотки в буфере для стирки. Затем перенесите заднюю и переднюю кожу в лунки, содержащие промывочный буфер.
Оберните тарелку, и промойте образцы с помощью аккуратного перемешивания при комнатной температуре в течение 15 минут. Повторите стирку еще два раза. Положите кожу на дно чашки Петри размером 35 на 10 миллиметров.
Затем под стереомикроскопом с низкой освещенностью, чтобы свести к минимуму фотообесцвечивание, с помощью тонких изогнутых щипцов аккуратно удалите волосы, жировую ткань, соединительную ткань, пыль и волокна с внутренней стороны кожи. Используйте PBS, чтобы поддерживать кожу влажной. С помощью щипцов перенесите заднюю и переднюю кожу внутренней стороной вверх на предметное стекло для липкого микроскопа.
Используйте щипцы для выравнивания кожи. Поместите кожу в жидкий монтажный материал, препятствующий выцветанию, чтобы избежать фотообесцвечивания и сохранить флуоресцентные сигналы. Следите за тем, чтобы на коже или вокруг нее не было пузырьков воздуха.
Храните предметные стекла с окрашенной кожей в темноте в течение ночи при комнатной температуре, чтобы монтажный материал стал твердым. Затем используйте лак для ногтей, чтобы приклеить покровное стекло к предметному стеклу, и храните его при температуре четыре градуса Цельсия для длительного хранения. Чтобы провести конфокальную микроскопию, настройте соответствующие лазеры для флуорофоров.
В эксперименте используется конфокальный микроскоп с тремя лазерными источниками. Визуализируйте образцы под объективом 10X и используйте инструмент последовательного сканирования, который одновременно возбуждает образцы с тройным окрашиванием, чтобы избежать и уменьшить любое перекрытие. В этом эксперименте кожа заднего уха и кожа переднего уха взрослой мыши были иммуноокрашены антителами к альфа-СМА, Tuj1 и PECAM-1.
Заднюю часть кожи окрашивали иммуно для изучения нейроиммунного распределения с использованием антител к CD11b и MBP вместе с Tuj1. Наконец, как показано здесь, распределение CD11b-положительных воспалительных клеток, включая макрофаги, было обнаружено с разрешением одной клетки. Пытаясь выполнить эту процедуру, важно помнить о бережном обращении с кожей и аккуратно и медленно удалять волоски, жировую ткань и соединительную ткань с внутренней стороны кожи уха перед установкой.
Этот метод проложит путь для исследователей к изучению разветвленного морфогенеза и структурирования периферических нервов и кровеносных сосудов, а также трехмерного распределения компонентов кожи, включая иммунные клетки в моделях молодых и взрослых мышей. Спасибо за просмотр. Удачи в ваших экспериментах.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
09:53
Related Videos
18.1K Views
09:00
Related Videos
19.7K Views
13:58
Related Videos
22.4K Views
12:02
Related Videos
58.2K Views
11:28
Related Videos
11.3K Views
11:29
Related Videos
7.9K Views
06:29
Related Videos
11.7K Views
09:01
Related Videos
10.2K Views
08:51
Related Videos
4.5K Views
04:11
Related Videos
2.2K Views