5 сентября 2018 г.
По множеству признаков болезни более физиологически соответствующих моделей в настоящее время разработана и реализована в наркотики discovery программ. Новой модели системы, описанные здесь показано как трехмерные опухоли сфероидов может быть культивировали и показан в высок объём 1536-ну пластины системы для поиска новых онкологических препаратов.
Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области разработки лекарств, такие как то, какие условия культуры тканей являются наиболее подходящими для идентификации попадания в свинец. Основное преимущество этого метода заключается в том, что он позволяет культивировать клетки в трех измерениях, с высокой пропускной способностью, используя 1536 луночных планшетов. Демонстрировать этот протокол будет Кальяни Гампа, старший научный сотрудник моей лаборатории.
Чтобы создать 3D-культуру сфероидов опухоли, отсоедините интересующие линии раковых клеток с помощью трех смывов BBS. Далее следует добавление одного миллилитра трипсина на пять квадратных сантиметров площади культуральной колбы. Через пять минут нейтрализуйте трипсин с помощью пятикратного объема сывороточной среды, добавленной в каждую колбу, и подсчитайте клетки.
Используйте стерилизованную небольшую кассету с наконечником из нержавеющей стали с перистальтической системой на основе насоса, чтобы засеять в общей сложности 500 клеток в восьми микролитрах сфероидной среды в каждую лунку 1536-луночного планшета, обработанного тканевой культурой. Затем используйте дышащий клейкий уплотнитель, чтобы закрыть пластину. И поместите тарелку во вращающийся инкубатор, установленный на 37 градусов Цельсия и 10 оборотов в минуту с 5% углекислым газом и относительной влажностью 95% на три дня.
Самым важным шагом является обеспечение хорошей герметизации пластин перед их помещением в инкубатор. Сфероидам потребуется три дня для формирования, и этот этап предотвращает испарение среды. В конце инкубации быстро вращайте выстланные раком культуральные планшеты под давлением, в 100 раз превышающим силу тяжести, чтобы собрать конденсат, и снимите адгезивные пломбы.
Поместите каждую обрабатываемую пластину на акустический дозатор, настроенный на подачу в общей сложности восьми нанолитров каждого соединения. Разбавление до конечной концентрации 0,1% ДМСО на лунку и верхней комбинированной дозы 10 микромоляров. Когда соединение будет добавлено в соответствующие тарелки, поместите на каждую пластину изготовленную на заказ крышку для клеточной культуры из нержавеющей стали, чтобы предотвратить испарение, и верните пластины в вращающийся инкубатор еще на пять дней.
В конце инкубации добавьте три микролитра предварительно подогретого реагента для лизиса клеток, дополненного люциферином, в каждую лунку каждой пластины для культивирования клеток. И инкубировать пластины при комнатной температуре не менее 15 минут. Затем зарегистрируйте люминесце АТФ на пластинчатом люминометре.
Когда все планшеты будут проанализированы, извлеките исходные данные из прибора и нормализуйте все поля, содержащие исследуемые соединения, до среднего значения по всем скважинам, содержащим только ДМСО в качестве нейтрального контроля. Затем в соответствии с формулой можно рассчитать процентное ингибирование роста каждого соединения, а также создать кривые реакции на дозу и ингибиторные IC50. Разнообразие укоренившихся раковых клеток, которые, как известно, хорошо растут в условиях 2D-культивирования, также сформировали 3D-структуры при культивировании, как только что продемонстрировано, несмотря на их морфологические различия.
При использовании для крупномасштабного скрининга можно наблюдать дифференциальную чувствительность к соединениям между культурами, выращенными в 2D, и культурами, выращенными в 3D. Каждая точка представляет собой ингибиторную концентрацию одного соединения, для которого наблюдается 50%-ный ответ на уничтожение клеток в обоих условиях культивирования. В этом репрезентативном эксперименте оба тестируемых ингибиторных соединения RAF-киназы оказались более мощными в 3D-условиях в культуре линии немелкоклеточного рака легких, содержащей активирующую мутацию в белке KRAS.
Тем не менее, соединения демонстрируют аналогичную активность как в 3D сфероидах, так и в культурах 2D линии рака толстой кишки, которые содержат активирующую мутацию G13D в KRAS. 3D-анализ также позволяет наблюдать парадоксальный феномен активации роста, который происходит при неполном ингибировании димеров RAF в высокоактивированных мутантных линиях RAFs, о чем свидетельствует рост клеток при низких концентрациях препарата, который подавляется при высоких концентрациях. После своего развития этот метод проложил путь исследователям в области разработки лекарств от рака для изучения альтернативных условий культивирования для идентификации нового, эффективного химического вещества против известных мишеней.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен новый метод поиска лекарственных средств с использованием трехмерных опухолевых сфероидов, культивируемых в высокопроизводительной системе планшетов на 1536 лунок. Этот подход направлен на повышение релевантности условий культивирования тканей при идентификации потенциальных онкологических препаратов.
Данный метод сокращает трансляционный разрыв в разработке онкологических препаратов, обеспечивая возможность высокопроизводительного скрининга на физиологически релевантной 3D-модели опухолевых сфероидов. Он повышает достоверность прогнозов при валидации мишеней, выявляя различия в ответе на препараты в условиях 2D- и 3D-культивирования. Этот подход оптимизирует процесс идентификации соединений-лидеров (hit-to-lead) для ингибиторов пути MAPK в генетически определенных моделях рака.
Данный метод интегрируется в непрерывный процесс разработки — от валидации мишени до идентификации соединений-лидеров, что позволяет на ранних этапах оценить эффективность соединений в более физиологически релевантном контексте перед началом доклинических исследований.