11 апреля 2018 г.
Здесь мы описываем метод для создания трехмерных сфероида культур человеческого носа эпителиальных клеток. Сфероидов затем стимулируются диск муковисцидоз регулятор трансмембранной проводимости (МВТР)-зависимых ионных и жидкости секреции, количественная оценка изменения в размер Люминал сфероида как прокси для МВТР функции.
Общая суть этой процедуры заключается в получении сфероидов из носовых клеток человека, которые в конечном итоге могут быть использованы в качестве анализа для функциональных исследований CFTR. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области муковисцидоза, такие как оценка реакции отдельного субъекта на препараты, изменяющие CFTR, в модельной системе ex vivo. Основное преимущество этого метода заключается в том, что большое количество сфероидов генерируется в относительно короткие сроки из небольшого образца назальной клетки, что позволяет проводить обширное тестирование.
Демонстрировать процедуру будут Лорен Стрекер и Джессика Мончивайз, техники из моей лаборатории. После обработки и расширения клеток назального эпителия человека или HNE на фидерных фибробластах в соответствии с текстовым протоколом доведите предварительно приготовленную среду для расширения, среду для дифференцировки, 0,1% раствор трипсина ЭДТА и стерильный PBS до комнатной температуры в течение 30 минут. Затем используйте 70% этанол для очистки контейнеров и переложите их в чистый шкаф биобезопасности.
В шкафу биобезопасности используйте пипетку Пастера, подключенную к вакуумной линии, для отсасывания и удаления среды из культуры HNE. Затем с помощью чистой серологической пипетки используйте пять миллилитров PBS для мытья посуды, добавляя, перемешивая и отсасывая буфер. Добавьте в культуру пять миллилитров 0,1%-ного раствора трипсина ЭДТА и верните ее в инкубатор при температуре 37 градусов Цельсия и 5% углекислого газа на пять минут.
Затем под инвертированным микроскопом с температурой от 4 до 10 раз проверьте, что клетки отделяются от чашки, становятся круглыми и плавают. Осторожно постучите по боковой стороне чашки для культивирования, чтобы вытеснить клетки, и, при необходимости, повторно инкубируйте чашку еще на пять минут, пока большинство клеток не отделятся. Далее с помощью серологической пипетки объемом 10 миллилитров добавьте в чашку пять миллилитров расширительной среды и соберите всю жидкость в маркированную стерильную коническую трубку объемом 50 миллилитров
.Если клетки остаются прилипшими к чашке для культивирования после трех раундов трипсинизации, используйте стерильный скребок для клеток, чтобы аккуратно освободить оставшиеся клетки, и с помощью пяти миллилитров расширяющей среды вымойте скребок и чашку и соберите содержимое в ту же меченую коническую пробирку. Центрифугируйте пробирку при 360-кратном g в четырех градусах Цельсия в течение пяти минут. Отсадите надосадочную жидкость и используйте один миллилитр расширяющей среды для ресуспендирования клеточной гранулы.
Затем с помощью гемоцитометра подсчитайте клетки. Разморозьте матрицу базальной мембраны на льду в соответствии с инструкциями производителя. Отделите соответствующее количество дифференциально трипсинизированных пассажных клеток для получения конечной концентрации 500 000 клеток на миллилитр матрицы.
Для четырехлуночного планшета используйте 200 000 клеток и соберите их в пробирку объемом 1,5 миллилитров. Далее центрифугируйте клеточную смесь при плотности не более 360 раз г в течение пяти минут. Затем с помощью пипетки объемом в один миллилитр полностью и тщательно отсадите и выбросьте среду, стараясь не потревожить клеточную гранулу.
Держите трубку с клетками на льду, когда вы не работаете с ней активно. С помощью наконечника для пипетки объемом в один миллилитр добавьте в клетки 100 микролитров матрицы базальной мембраны на запланированную лунку. Не полностью опорожняя наконечник пипетки, чтобы избежать попадания пузырьков воздуха, проводите пипеткой вверх и вниз, чтобы осторожно и тщательно ресуспендировать клетки.
Двигайтесь быстро, чтобы избежать застывания матрицы. Чтобы засеять 100 миллилитровую матрицу аликвот в каждую лунку четырехлуночного планшета для ЭКО, используйте чистые ножницы, чтобы обрезать дистальные три-четыре миллиметра от 200-микролитрового наконечника пипетки. Осторожно и медленно нанесите пипеткой каплю 100 микролитров смеси клеточного матрикса в центр каждой лунки, следя за тем, чтобы капля оставалась сферической и не касалась стенок лунки.
Инкубируйте тарелку при температуре 37 градусов Цельсия и 5% углекислого газа в течение 30 минут до полного затвердевания. Затем осторожно нанесите пипеткой по 500 микролитров дифференцировочной среды в каждую лунку, стараясь не нарушить падение матрицы. Следите за тем, чтобы средство просто покрывало каплю, и при необходимости добавьте еще.
Для культивирования сфероидов HNE с помощью кончика пипетки объемом в один миллилитр осторожно отсасывают всю среду из лунки, избегая при этом матрицы, которая приведет к разрушению сфероидов. Затем с помощью свежего наконечника для пипетки объемом в один миллилитр, избегая прикосновения к матрице или ее нарушения, аккуратно добавьте 500 микролитров дифференцировочной среды в лунку вокруг матрицы. Продолжайте инкубацию сфероидов, заменяя среду для дифференцировки три раза в неделю, как показано выше.
Под инвертированным микроскопом при 20-кратном увеличении ежедневно оценивайте морфологию сфероида. Сфероиды должны сформироваться в течение трех-пяти дней после нанесения покрытий и достичь зрелости примерно через 10 дней. HNE должны прикрепиться к чашке для культивирования и образовать небольшие островки в течение 72 часов после посева.
Примеры хорошего и плохого формирования островов за одну неделю показаны здесь. Островки должны расширяться, чтобы покрыть блюдо в течение 15-30 дней. В течение первых трех-четырех дней культивирования в матриксе должны начать формироваться небольшие кистозные структуры, которые созревают в течение примерно 10 дней.
При нанесении покрытия с описанной плотностью, успешные культуры будут содержать от 50 до 100 сфероидов на каплю матрицы. Просветы могут быть относительно чистыми, как у CFTR дикого типа, или заполнены клеточным мусором и слизью, как у сфероидов CF. Маскировка для очерчивания просветной области сфероидов продемонстрирована на этих двух панелях.
Здесь приведены примеры плохо сформированных неудачных сфероидальных культур. Как показано на этих графиках из функциональных анализов, сфероиды у пациентов с CFTR дикого типа должны набухать в течение часа при стимуляции и должны уменьшаться или уменьшаться при стимуляции в присутствии ингибитора CFTR inh-172. Сфероиды из субъекта, гомозиготного по F508del-CFTR, должны либо уменьшаться, либо незначительно набухать с увеличением набухания или меньшим уменьшением усадки при фармакологической коррекции модуляторами CFTR VX809 и VX770.
После освоения посев сфероидов назальных клеток может быть выполнен за 15-20 минут, если он выполнен правильно. При выполнении этой процедуры важно помнить о соблюдении чистоты в шкафу биобезопасности, чтобы свести к минимуму риск загрязнения проб и избежать любых рисков для вашего собственного здоровья. После этой процедуры могут быть выполнены другие методы, такие как фиксация, окрашивание и микроскопия, чтобы ответить на дополнительные вопросы о морфологии и составе клеток.
После просмотра этого видео вы должны иметь хорошее представление о том, как получить первичные сфероиды из носовых клеток человека, которые можно использовать в качестве персонализированного анализа функции CFTR. Не забывайте, что работа с первичными тканями человека может быть опасной, и при выполнении этой процедуры всегда следует соблюдать меры предосторожности, такие как правильное использование средств индивидуальной защиты.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной статье представлен метод создания трехмерных сфероидных культур эпителиальных клеток слизистой оболочки носа человека, которые могут быть использованы для изучения функции CFTR. Сфероиды подвергают стимуляции для оценки CFTR-зависимой секреции ионов и жидкости, при этом изменение размера просвета служит функциональным показателем.
Модели, полученные из клеток пациентов, которые отражают индивидуальную функцию CFTR, позволяют на ранних этапах снизить риски при применении терапии модуляторами, прогнозируя клинический ответ до начала лечения пациента. Этот подход устраняет ограничения терапии, основанной на генотипе, обеспечивая функциональный анализ редких или недостаточно изученных мутаций, не представленных в клинических исследованиях. Данная модель помогает принимать решения о целесообразности дальнейшей разработки модуляторов CFTR, связывая ответ сфероидов ex vivo с оптимизацией индивидуального лечения.
Данный метод интегрируется в процесс разработки препаратов, обеспечивая функциональную валидацию мишеней CFTR перед этапами оптимизации соединений-лидеров и выбора доклинических кандидатов.