RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/57641-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Здесь мы представляем подробный протокол дифференцировать человеческих плюрипотентных стволовых клеток (hPSCs) в поджелудочной железы/двенадцатиперстную кишку гомеобокс белка 1+ (PDX1+) клетки для поколения поджелудочной железы линий на основе роста монослоя-колонии типа отделить одиночных клеток. Этот метод подходит для производства однородных клеток hPSC производные, генетические манипуляции и скрининг.
Основным преимуществом этой техники является то, что перед стимуляцией клетки равномерно рассеиваются, а затем равномерно стимулируются в тандеме клеточной адгезии. Демонстрацией процедуры будет Азума Кимура, аспирант нашей лаборатории. Чтобы начать эту процедуру, перенесите шесть миллилитров RPMI 1640 в трубку, охлаждаемую до четырех градусов по Цельсию на льду.
Используя охлажденные один миллилитр пипетки советы, добавить два миллиграмма мембранной матрицы подвала. Хорошо смешайте с помощью нежной трубы, чтобы сделать ее матрицей мембраны подвала с концентрацией 0,33 миллиграмма на миллилитр. Далее, используйте пипетку для передачи двух миллилитров разбавленной мембранной матрицы подвала в каждый колодец шести-хорошо пластины клеточной культуры.
Инкубировать пластину при 37 градусах по Цельсию в течение 60-90 минут. После этого держите тарелку при комнатной температуре до трех часов, пока она не будет готова к использованию. Во-первых, аспирировать используемую среду и использовать пипетку, чтобы добавить два миллилитров 0,5 миллимолярной EDTA к каждому хорошо мыть hPCSs культурных в шесть хорошо пластины.
Затем, аспирировать EDTA из скважин и добавить два миллилитров свежих 0,5 миллимолярной EDTA к каждой скважине. Инкубировать пластину при 37 градусах по Цельсию в течение пяти минут. После этого, аспирировать EDTA из каждой хорошо.
Добавьте один миллилитр среднего обслуживания hPSC при комнатной температуре, дополненный 10 микромолярной Y27632 к каждой хорошо. Pipette мягко, но быстро, чтобы сдуть прикрепленные клетки на пластине и разобщить любые слипшиеся клетки в одиночные клетки. Передача клеточной подвески в 50-миллилитровую центрифугу, содержащую четыре миллилитров среды обслуживания HPSC, дополненную 10 микромолярной Y27632 на колодец и перемешать с помощью труб.
Далее смешайте 15 микролитров клеточной подвески с 15 микролитров трипан-голубого цвета в трубке. Используйте 10 микролитровых пипеток для передачи 10 микролитров разбавленной клеточной подвески в слайды подсчета клеток в дубликате. Используя автоматизированный счетчик ячеек, подсчитайте номер ячейки и вычислите плотность ячейки в подвеске ячейки.
Выделите подвеску клетки в 50 миллилитровую трубку при плотности от одного до полутора миллионов клеток для каждого хорошо, который будет использоваться. Центрифуга трубки в 200 раз G и при комнатной температуре в течение пяти минут. После этого используйте пипетку, чтобы аспирировать супернатант и повторно приостановить клетки, используя один миллилитр стадии 1A среды на колодец.
Аккуратно пипетка клеточной подвески, а затем добавить еще один миллилитр стадии 1A среды на колодец. Используя 1000 микролитровую пипетку, аспирировать разбавленную мембранную матрицу подвала из колодцев ранее подготовленной пластины клеточной культуры. Немедленно пипетка подвески в трубке осторожно и передачи двух миллилитров в каждый колодец из шести хорошо пластины.
Обложка пластины с алюминиевой фольгой, чтобы защитить его от света и поместить пластину на чистую скамейку при комнатной температуре в течение 10 до 15 минут. После этого тщательно перенесите пластину в инкубатор при 37 градусах Цельсия с 5%-ным углекислым газом и увлажненной атмосферой в течение 24 часов. Во-первых, осторожно встряхните пластину и используйте пипетку, чтобы аспирировать используемую среду.
Затем добавьте два миллилитров DPBS к каждому хорошо. Аккуратно встряхните тарелку снова и аспирировать используемый DPBS. Добавьте четыре миллилитров среднего этапа 1B, предварительно разогретые до 37 градусов по Цельсию, к каждому хорошо.
Тщательно перенесите пластину в инкубатор при 37 градусах по Цельсию с 5%-ным углекислым газом и увлажненной атмосферой в культуру в течение 48 часов. После этого аккуратно встряхните тарелку и аспирировать использованную среду. Добавьте два миллилитров DPBS к каждому хорошо.
Повторите это стремление и добавление DPBS еще раз. Аккуратно встряхните тарелку и аспирировать используемый DPBS. Добавьте четыре миллилитров среднего этапа 1B, предварительно разогретые до 37 градусов по Цельсию, к каждому хорошо.
Тщательно перенесите пластину в инкубатор при 37 градусах Цельсия с 5%-ным углекислым газом и увлажненной атмосферой в культуру в течение 24 часов. Во-первых, осторожно встряхните пластину и аспирировать используемую среду. Добавьте два миллилитров DPBS к каждому колодец из шести хорошо пластины.
Затем аккуратно встряхните тарелку и аспирировать используемый DPBS. Добавьте четыре миллилитров второй стадии среды, предварительно разогретой до 37 градусов по Цельсию, к каждому хорошо. Тщательно перенесите пластину в инкубатор при 37 градусах Цельсия с 5%-ным углекислым газом и увлажненной атмосферой в культуру в течение четырех дней.
Аккуратно встряхните тарелку и оспирировать использованную среду. Добавьте два миллилитров DPBS к каждому хорошо. Повторите этот процесс аспирации и добавления DPPS еще раз.
После этого аккуратно встряхните тарелку и аспирировать использованный DPBS. Добавьте четыре миллилитров среднего этапа 3, предварительно разогретые до 37 градусов по Цельсию, к каждому хорошо. Тщательно перенесите пластину в инкубатор при 37 градусах по Цельсию с 5%-ным углекислым газом и увлажненной атмосферой в культуру в течение трех дней.
В этом исследовании, распространение hIPSEs конденсируются и образуют однородный монослой, который подходит для дифференциации. Недифференцированные hIPSEs разобщены и reseeded как одиночные клетки на низких плотностях клетки. В течение одного часа клетки прикрепляются к пластине и начинают проявлять выступ.
В первый день клетки размножаются и хорошо распределены, чтобы покрыть от 80 до 90% площади поверхности. В три и четыре дня клетки образуют однородный монослойный лист, который можно охарактеризовать как мощеный вид. На данный момент, большинство клеток перестают выражать SOX2, который является маркером для недифференцированных клеток, и вместо этого выразить окончательный маркер эндодерма, SOX17, на более чем 90%Большинство SOX17-положительных клеток выразить FOXA2.
Затем клетки начинают выражать примитивные маркеры гоптупе, HNF1-бета и HNF4-альфа, и в конечном итоге выражают задний маркер прогродителя поджелудочной железы, PDX1, на более чем 90%Положительная индукция клеток PDX1 воспроизводится в другой линии hIPSE, 1231A3, и линии HESE, KhES-3. Результаты MRNA выражения маркеров стадии MRNA согласуются с иммуностимулятором, и выражение MRNA PDX1 очевидно на этапе 3 и существенно увеличивается впоследствии. Так как недифференцированные клетки ESIPS выращиваются как колонии, отдельные клетки локально находятся в другом состоянии.
Этот протокол обеспечивает способ равномерного стимулирования клеток для избранной дифференциации.
Related Videos
10:51
Related Videos
14K Views
08:35
Related Videos
14.2K Views
09:31
Related Videos
9.7K Views
09:23
Related Videos
8.3K Views
09:37
Related Videos
13.4K Views
05:38
Related Videos
12.6K Views
09:33
Related Videos
9.4K Views
07:32
Related Videos
3.5K Views
10:12
Related Videos
3.1K Views
08:41
Related Videos
3.8K Views