July 27th, 2018
Здесь мы описываем протокол для подкожной вены decellularization помощью перфузии периферической крови и эндотелиальных среднего моющих и recellularization.
Этот метод подробно описывает процедуру тканевой инженерии подкожных вен. Также мы демонстрируем подготовку установок для децеллюляризации и биореактора для рецеллюляризации с использованием простых аппаратов. Основное преимущество этой методики заключается в том, что для рецеллюляризации требуется простой образец крови, что исключает болезненное скопление костного мозга и трудоемкие процедуры культивирования клеток.
Для перфузии и промывки Triton-X 100 приготовьте установку для децеллюляризации. К двухлитровой камере прикрепите все три куска трубки А. Приклейте одну трубку скотчем к стене там, где край касается дна камеры для входа моющего средства. Прикрепите две другие трубки к противоположной стенке с расстоянием от пяти до 10 сантиметров между ними, в зависимости от длины жилы.
Не менее пяти сантиметров этих трубок также должны быть прикреплены скотчем к полу камеры. Подсоедините входную трубку моющего средства к трубке B с помощью соединителей для приманки с наружной и внутренней резьбой. Затем подсоедините трубку B к трубке F, а трубку F к трубке C. Подсоедините трубку C к входу в вену.
Теперь вставьте трубку F в кассету перистальтического насоса. Возьмите еще одну трубку С и подсоедините один конец к выходу вены. Поместите другой конец в стеклянную банку, оснащенную нижним выходным отверстием для шланга и расположенную на высоте 45 сантиметров над камерой, и закрепите ее скотчем.
Это служит выходом моющего средства. Затем вставьте один конец трубки G в отверстие для шланга стеклянной банки, а другой конец поместите в камеру для вен. Затем подготовьте вторую установку децеллюляризации для перфузии TnBP, как описано в текстовом протоколе.
Также подготовьте третью установку децеллюляризации для перфузии ДНК, как подробно описано в тексте, и поместите ее при температуре 37 градусов Цельсия. Чтобы подготовить биореактор для рецеллюляризации, вставьте трубку H в один из четырех портовых колпачков, который будет служить выходом вены. Во второй порт вставьте трубку I, которая будет служить входом для среды.
И в третье отверстие вставьте трубку J для входа в вену. Затем вставьте другой конец трубки H в четвертый порт, который будет служить выходом для носителя. Соедините переходные соединители с внутренними концами трубок H и J. Согните другой конец трубки J в форме буквы U и завяжите его швом.
Теперь поместите 60-миллилитровую трубку с плоским дном в стакан объемом 250 миллилитров. Затем подсоедините один конец трубки K к входу вены и подсоедините другой конец к трубке E. Подключите трубку E к второй трубке K, а затем к входу среды. Затем поместите подготовленный колпачок в тюбик, присутствующий в бутылке.
Наконец, стерилизуйте биореактор методом автоклавирования. Выполните два цикла замораживания-размораживания на подкожной вене человека, как подробно описано в текстовом протоколе, прежде чем разрезать ножницами биопсию длиной два миллиметра. Зафиксируйте биопсию в формальдегиде на срок от 24 до 48 часов при комнатной температуре.
Привяжите каждый конец вены к заусенцам соединителя приманки самца и самки швом. Подключите вену к установке децеллюляризации один и заполните камеру одним литром раствора два. Теперь перфузируйте в течение 15 минут со скоростью 35 миллилитров в минуту и опорожните содержимое установки.
Затем добавьте один литр раствора в четыре раза и перфузируйте в течение четырех часов по 35 миллилитров в минуту. Высыпаем содержимое, добавляем 500 миллилитров раствора два, выдерживаем в течение пяти минут, и снова высыпаем содержимое. Отсоедините вену от первой перфузионной установки и подключите ее ко второй перфузионной установке.
Далее добавьте один литр раствора пять, включите мешалку, и перфируйте в течение четырех часов по 35 миллилитров в минуту. Отсоедините вену от второго перфузионного набора и дважды промойте наружную часть вены 20 миллилитрами сверхчистой воды. Затем с помощью шприца дважды промыть внутреннюю часть вены 20 миллилитрами сверхчистой воды в течение 5-10 минут.
После перфузии с первой перфузионной установкой, как описано в текстовом протоколе, подключите вену к первой перфузионной установке. Залить один литр раствора двумя и перфузировать в течение ночи со скоростью 35 миллилитров в минуту. Повторите процесс перфузии четыре раза для полного удаления ядерного материала.
После перфузии опустошите установку, наполните один литр раствора двумя и перфузируйте в течение 24 часов со скоростью 35 миллилитров в минуту. Через 24 часа снова опорожните установку и залейте одним литром сверхчистой воды. Перфузируйте еще 24 часа по 35 миллилитров в минуту.
Наконец, повторите перфузию с использованием тех же условий, но с седьмым раствором. После проверки децеллюляризации, как описано в текстовом протоколе, простерилизуйте вену, поместив ее в 50 миллилитровую пробирку, содержащую 50 миллилитров раствора восьмилитров. Взбалтывайте со скоростью 80 оборотов в минуту в шейкере в течение одного часа при температуре 37 градусов Цельсия.
Работая в ламинарном проточном шкафу для поддержания стерильности, теперь с помощью стерильных щипцов переносят стерильную вену в новую 50 миллилитровую пробирку, содержащую 50 миллилитров стерильного раствора семи, содержащую 500 микролитров анти. По-прежнему взбалтывайте вену в течение 12 часов, меняя раствор семь раз между ними, по крайней мере, дважды. С помощью стерильных щипцов перенесите вену в новую 50 миллилитровую трубку, добавьте 50 миллилитров эндотелиальной среды, и взбалтывайте в течение 11 часов.
Теперь соедините вену, привязав ее к входу и выходу вены биореактора стерильным швом и щипцами, и затяните колпачок на бутылке объемом 250 миллилитров. Заполните биореактор той же эндотелиальной средой. Добавьте гепарин по 50 единиц на миллилитр и перфузируйте в течение одного часа по два миллилитра в минуту в инкубаторе.
Соберите от 15 до 25 миллилитров свежей крови донора в вакутайнерные пробирки, покрытые гепарином, и разведите их один к одному раствором стина. Позже добавьте фактор роста эндотелия сосудов, полученный из эндокринных желез, основной фактор роста фибробласта и тонкую салициловую кислоту. После опорожнения эндотелиальной среды из биореактора добавьте в нее кровь и перфузируйте в течение 48 часов по два миллилитра в минуту в инкубаторе при температуре 37 градусов Цельсия с пятью процентами углекислого газа.
Примерно через 12 часов в ламинарном шкафу проводятся работы по удалению капли крови из биореактора и измерению уровня глюкозы с помощью устройства для мониторинга уровня глюкозы в крови. Если уровень составляет менее трех миллимоль на литр, добавьте глюкозу, чтобы привести его в диапазон от семи до девяти миллимоль на литр. Через 48 часов после возвращения в инкубатор слейте кровь из биореактора в ламинарном шкафу.
Добавьте 30 миллилитров стерильного раствора семь, профужьте в течение пяти минут, и слейте раствор. Повторяйте этот процесс до тех пор, пока кроваво-красный цвет не потеряется. Наконец, добавьте от 30 до 45 миллилитров эндотелиальной среды и перфузируйте в течение 96 часов в инкубаторе со скоростью два миллилитра в минуту.
Отсоедините рецеллюляризованную вену от биореактора в ламинарном шкафу, отрежьте ножницами пять миллиметровых краев вены и выбросьте. Возьмите биопсию, как и раньше, поместите в формальдегид и проведите верификацию рецеллюляризации, как описано в текстовом протоколе. Грубая морфология нормальной жилки выглядит ярко-красным цветом.
Красный цвет теряется в прогрессирующих циклах децеллюляризации, а после пяти циклов лечения выглядит бледным и белым. Вена, рецеллюляризированная перфузией периферической крови и эндотелиальной среды, снова выглядела ярко-красной по цвету. Здесь показано репрезентативное изображение нормальной вены, окрашиваемое гемотоксилином и эозином, показывающее наличие многих синих ядер.
Тем не менее, синие ядра не были замечены при окрашивании децеллюляризованной вены гемотоксилином и эозином. В целлюляризированной вене, перфузированной кровью и эндотелиальной средой, окрашивание гемотоксилином и эозином показало наличие прикрепления клеток в просвете. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как проводить децеллюляризацию подкожной вены детергентами и рецеллюляризацию периферической кровью и эндотелиальной средой.
Этот метод децеллюляризации с использованием перфузии Triton-X 100, TnBP и ДНК под давлением оказался успешным и воспроизводимым при удалении ядер из подкожных вен человека. Несмотря на то, что этот метод занимает 20 дней, хранение децеллюляризованной вены в качестве продукта быстрого хранения сократит время процедуры до восьми дней. Рецеллюляризация вен с использованием периферической крови реципиента может считаться клинически значимой.
Рецеллюляризация вен по аналогичному протоколу показала многообещающие результаты в клинической трансплантации, обеспечивая функциональное кровоснабжение после операции. С небольшими изменениями этот протокол может быть использован для любого типа вен, а также в качестве персонализированного трансплантата в клиниках для всех сосудистых операций.
В этой статье описан подробный протокол деклеточной обработки подкожной вены с использованием детергентов и последующей реклеточной обработки путем перфузии с периферической кровью и эндотелиальным средством. Метод упрощает процесс за счет использования простой пробы крови, тем самым избегая более инвазивных процедур.
Decellularization and recellularization of human saphenous veins enable the generation of patient-specific vascular grafts, reducing reliance on allogeneic or synthetic conduits that carry risks of immunosuppression and poor patency. This approach supports predictive confidence in graft functionality by using autologous peripheral blood, thereby de-risking translational pathways in vascular tissue engineering. The method provides a scalable platform for preclinical evaluation of personalized grafts, aligning with enterprise goals of risk-adjusted advancement in regenerative medicine pipelines.
The method integrates into the discovery continuum from target validation through lead identification to preclinical evaluation, providing a reusable platform for vascular graft development.