7 сентября 2018 г.
В настоящем документе мы описываем протокол для характеристики Т-зависимых и T-независимой иммуноглобулина (Ig) изотипа ответы в мышах с помощью ИФА. Этот метод используется в одиночку или в сочетании с потоком цитометрии позволит исследователям для выявления различий в ответах изотипа Ig B клеточный мышей после иммунизации антигена Т-зависимых и T-независимой.
Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области иммунологии об иммунизации, индуцированной антигенами, зависимых и независимых ответах антител, а также об активации В-клеток и реакциях зародышевого центра. Основное преимущество этой методики заключается в том, что она обеспечивает надежные и количественные измерения ответа изотипа Ig с прямым сравнением активации В-клеток и гуморального иммунитета у мышей. Для иммунизации ТНП-полисахаридами загрузите в один миллилитровый инсулиновый шприц на каждую мышь 100 микролитров свежеприготовленного раствора антигена и введите иглу в нижний правый квадрант каждого животного под углом примерно 30 градусов, чтобы избежать инъекции нижнего органа.
Когда все мыши будут введены инъекции, верните животных в клетки для содержания в определенном учреждении, свободном от патогенов. В соответствующие экспериментальные точки соберите от 150 до 200 микролитров крови от каждого иммунизированного животного с помощью ретроорбитального кровотечения и дайте образцам свернуться при комнатной температуре в течение одного-двух часов. В конце инкубации центрифугируйте коагулированные образцы крови и переведите прозрачную сыворотку из верхней части каждого сгустка крови в стерильную микроцентрифужную пробирку объемом 1,5 миллилитров.
После повторного центрифугирования для удаления любого остаточного тромба переложите 50 микролитров сыворотки в отдельные стерильные микроцентрифужные пробирки объемом 1,5 миллилитров для хранения при температуре минус 80 градусов Цельсия. Перед нанесением покрытия на отдельные 96-луночные иммунопланшеты нанесите соответствующую концентрацию специфических антител к изотипу Ig мыши для общего сывороточного антигена Ig-изотипа TNP-38BSA для специфичного для TNP изотипа Ig или антигена TNP-3BSA для высокоаффинного специфического для TNP изотипа Ig и инкубируйте покрытые пластины в течение ночи при четырех градусах Цельсия. На следующее утро вымойте пластины два раза с 200 микролитрами буфера для промывки на лунку.
Выбросьте буфер для стирки и промокните тарелки насухо на стопке бумажных полотенец после каждой стирки. Затем залейте планшеты 200 микролитрами блокирующего буфера на лунку на одну часовую инкубацию при комнатной температуре. Пока планшеты блокируются, готовят соответствующие стандартные и сывороточные разведения и блокирующий буфер в отдельном необработанном 96-луночном планшете по 150 микролитров на лунку, как указано.
Затем промойте планшет для ИФА с промывочным буфером, как показано на рисунке, и добавьте по 100 микролитров каждого стандартного изотипа Ig и образца сыворотки в соответствующие лунки планшета для ИФА. После ночной инкубации при температуре 4 градуса Цельсия промойте планшеты, как показано на рисунке, и добавьте в каждую лунку 100 микролитров соответствующего конъюгированного изотип-специфического антитела щелочной фосфатазы, разведенного в блокирующем буфере, для инкубации в течение одного-двух часов при комнатной температуре. По окончании инкубации вымойте пластины и добавьте в каждую лунку по 100 микролитров свежеприготовленного раствора субстрата.
Наблюдение за развитием реакции в течение следующих нескольких минут при комнатной температуре. Когда реакция достаточно устойчива для анализа, поместите планшет в считыватель микропланшетов и нажмите на настройки, чтобы установить длину волны на 405 нанометров. Нажмите OK, затем нажмите шаблон, чтобы назначить соответствующие пустые, стандартные и неизвестные скважины в соответствии с настройкой пластины 96 лунок.
Затем, когда наиболее концентрированный стандарт достигнет оптической плотности примерно 1, 1,5, 2 и 2,5, нажмите кнопку «Прочесть», чтобы прочитать пластину, и сохранить полученный файл данных после каждого анализа. При отсутствии иммунизации наблюдается повышение базальных сывороточных уровней IgM, IgG2a, IgG2b, IgG3 и IgA у мышей, получавших фактор три, или мышей с нокаутом B-TRAF3, специфичных для рецептора TNF, по сравнению с животными с достаточным количеством однопометников B-TRAF3. Через семь дней после иммунизации TNP-полисахаридом или TNP-KLH, как только что было продемонстрировано, анализ реакции Ig-независимого изотипа Ig на иммунизацию показал значительно более высокие уровни TNP-специфичного IgG3 к тимусу, а также повышенные тимус-зависимые уровни TNP-специфичных IgG2b у мышей с нокаутом TRAF3 с нокаутом миелоидных клеток по сравнению с контрольной группой.
Кроме того, оценка тимус-зависимого первичного ответа и реакции памяти мышей на иммунизацию TNP-KLH указывает на наличие частично сниженных тимус-зависимых первичных ответов IgM и дефектных первичных ответов и реакций памяти IgG1 у мышей с нокаутом TRAF3, специфичных для Т-клеток. При попытке выполнить эту процедуру важно помнить, что ИФА имеет пределы обнаружения, которые обычно определяются линейным диапазоном стандартных кривых, и поэтому может потребоваться многократное разведение образца. После этой процедуры могут быть выполнены другие дополнительные методы, такие как проточная цитометрия или L-пятно, чтобы получить всестороннее представление об ответах антител в данных экспериментальных условиях.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данной работе описывается протокол характеристики Т-зависимых и Т-независимых иммуноглобулиновых (Ig) изотипических ответов у мышей с помощью метода ИФА. Этот метод позволяет исследователям выявлять различия в изотипических ответах Ig, опосредованных B-клетками, после иммунизации антигеном.
Данный протокол позволяет исследователям в области биофармацевтики количественно анализировать тимус-зависимые и тимус-независимые ответы изотипов иммуноглобулинов в моделях мышей, обеспечивая понимание механизмов активации B-клеток и гуморального иммунитета. Предоставляя надежные данные ИФА с изотипоспецифическим определением, этот метод способствует валидации мишеней и прогностическому снижению рисков при разработке вакцин и иммуномодуляторов. Метод повышает трансляционную непрерывность при использовании в сочетании с дополнительными анализами, такими как проточная цитометрия, что позволяет принимать решения о целесообразности дальнейшей разработки на ранних этапах поиска.
Данный метод вписывается в непрерывный процесс разработки — от ранней валидации мишеней и идентификации ведущих соединений до доклинической оценки, что особенно актуально для иммуномодуляторов и вакцин, где профилирование изотипов позволяет предсказать функциональные результаты.