July 24th, 2018
Здесь мы представляем протокол для изучения личиночной данио рерио и толстоголового гольян опорно-двигательной деятельности и photomotor реакции (PMR) с помощью автоматического отслеживания программного обеспечения. Когда включены в общей токсикологии bioassays, анализ этих поведений обеспечивают диагностический инструмент для изучения химические препараты. Этот Протокол описан с помощью кофеин, модель neurostimulant.
Модели рыб имеют множество преимуществ и впоследствии все чаще используются в биомедицинских науках. От разработки до открытия лекарств и токсикологических исследований. Поведение моделей рыб также все чаще используется в экологических и биомедицинских исследованиях.
Здесь особенно важно использовать многолетний опыт исследований в области водной токсикологии и поведенческой экологии для развития экологических биомедицинских наук. Наш метод может быть использован для понимания биоагрессивности химических веществ, а также преимуществ и опасностей, которые они могут представлять. Основным преимуществом этого протокола является то, что он обеспечивает чуткий и быстрый подход к диагностическому пониманию химических активностей, полезных для экологических и биомедицинских наук.
Применение этого метода призвано поддержать диагностику коммерческих биоавтивностей и поведенческих эффектов. В большинстве этих химических веществ часто отсутствует важная информация о токсичности. Тем не менее, его также можно применять для понимания воздействия других химических веществ, таких как фармацевтические препараты и пестициды.
Этот аспект важно учитывать, поскольку сравнительные данные по экологической фармакологии и токсикологии для промышленных соединений часто отсутствуют. В дополнение к измерению локомоторной активности личинок во время изменяющихся светлых и темных фотопериодов, этот протокол может быть использован для измерения фотомоторных реакций личинок. Которые эффективно исследуют величину разницы движений между переходами от светлого к темному и от темного к светлому.
Для начала растворите кофеин в восстановленной жесткой воде. Затем выполните серийные разведения для снижения уровня кофеина. Для приготовления отдельных экспонирующих камер налейте 20 миллилитров раствора в четыре стеклянных стакана по 100 миллилитров для рыбок данио
.Налейте 200 миллилитров раствора в три стеклянных стакана по 500 миллилитров для толстоголовых пескарей. Затем с помощью пипетки для переноса поместите 10 эмбрионов данио-рерио в возрасте от четырех до шести часов после оплодотворения в каждый из стаканов. С помощью модифицированной передаточной пипетки поместите в каждую из экспозиционных камер по 10 личинок толстоголового гольяна, достигших возраста в течение 24 часов после вылупления.
Поместите камеру данио-рерио и толстоголового гольяна в инкубатор. Через 96 часов загрузите отдельных рыб в отдельные лунки на 48 и 24 лунки. Поместите в камеру записи лунку с хотя бы одной личинкой рыбы.
Затем в программном обеспечении для отслеживания видео нажмите Протокол генерации файла. В поле подсчета местоположений диалогового окна введите количество отдельных скважин пластины скважины. И нажмите OK.At верхней части экрана, нажмите «Просмотр на весь экран».
Отображение вида с камеры сверху на пластину скважины. Затем нажмите на иконку областей рисования. Выберите значок круга в поле с надписями.
С помощью курсора очертите круглую область слежения за видео в верхнем левом углублении пластины. Выберите отметку в правом верхнем углу и обведите область просмотра в правом верхнем углублении. Затем выберите нижнюю отметку, чтобы обвести нижнюю правую лунку.
После определения областей слежения за скважиной нажмите кнопку «Построить», чтобы предложить программному обеспечению очертить области обзора оставшихся скважин. В области калибровки нажмите кнопку Нарисовать шкалу и нарисуйте горизонтальную линию поперек пластины. Как только линия будет нарисована, появится диалоговое окно с надписью «Калибровочное измерение».
Введите длину пластины лунки в это поле и нажмите OK. Нажмите «Применить» к группе в области калибровки. Чтобы выйти из диспетчера рисования, нажмите на значок областей рисования. Далее нажмите на иконку плитки.
С помощью курсора выделите все поля, которые появляются на экране просмотра так, чтобы каждое поле было зеленым. Нажмите «Просмотр» и перейдите на весь экран. Затем в поле порога обнаружения нажмите bkg и используйте панель настройки порога, чтобы установить порог обнаружения пикселей.
После выбора соответствующего порога нажмите кнопку Применить к группе. В поле с надписью порог движения введите желаемые параметры отслеживания скорости движения. После того, как параметры скорости установлены, нажмите «Применить к группе».
Далее нажмите «Параметры протокола» в выпадающем меню. В диалоговом окне выберите вкладку времени и введите время наблюдения и интегрирования. Нажмите OK и откройте диалоговое окно настроек светофорного драйвера, выбрав светошум из выпадающего меню параметров.
Установите светлый, темный, период, время и интенсивность света для каждого периода фотографии. Затем нажмите OK. Далее сохраните протокол наблюдения.
Сначала поместите планшет с экспериментальной рыбой в камеру регистрации поведения. Затем откройте ранее разработанный протокол отслеживания. В просмотрщике видеослежения убедитесь, что все личинки видны, что в каждой лунке присутствует только одна личинка и что лунки выровнены с определенными зонами наблюдения.
Далее нажмите на кнопку «Экспериментировать» и выполните задание. Укажите название и место сохранения данных. И нажмите на значок нескольких живых изображений, чтобы выделить все предопределенные области просмотра.
Наконец, закройте панель записывающей камеры и нажмите фон, а затем запустите на мониторе компьютера. После 96 часов воздействия кофеина у личинок толстоголового гольяна фотомоторная реакция была изменена кофеином в более низких концентрациях, чем у рыбок данио. Тем не менее, у рыбок данио было затронуто заметно большее количество конечных точек фотомотора.
Кроме того, светлая и темная локомоторная активность была проанализирована по трем пороговым значениям скорости для расстояния перемещения, количества движений и продолжительности движений. У обоих видов кофеин подавлял активность во всех значимых локомоторных конечных точках. При выполнении этой процедуры важно помнить о том, что поведенческие анализы должны быть связаны с узким определенным временным окном.
Потому что время суток может влиять на поведение личинок рыб. Следуя этой процедуре, методы могут быть применены к стандартизированным рекомендациям по другим химическим веществам, чтобы ответить на дополнительные вопросы, связанные с поведением рыб. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее представление о том, как наблюдать за поведением и фотомоторными реакциями моделей личинок рыб при проведении биотестов на токсичность с помощью стандартизированных рекомендаций, имеющих отношение к экологическим и биомедицинским наукам.
Не забывайте, что работа с определенными химическими веществами может быть опасной, поэтому обязательно надевайте соответствующие средства индивидуальной защиты при выполнении этого протокола.
В данной статье представлен протокол для исследования локомоторной активности и фотомоторных реакций личинок данио и минога с тонкой головой с помощью автоматизированного программного обеспечения для отслеживания. Метод направлен на улучшение токсикологических биотестов, обеспечивая представление о химической биоактивности, что продемонстрировано на примере использования кофеина в качестве модельного нейростимулирующего средства.
This protocol enables rapid behavioral profiling of larval fish to assess neuroactive compound effects, supporting early-stage target validation in neuropharmacology. By quantifying photomotor and locomotor responses, it provides mechanistic insights that aid in de-risking CNS-active compounds before mammalian testing. The comparative sensitivity between zebrafish and fathead minnows offers a translational advantage for species-specific behavioral screening in environmental and biomedical contexts.
The method fits within early discovery workflows, supporting hypothesis testing and lead identification through behavioral phenotyping of larval fish exposed to neuroactive compounds.