-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Функциональная оценка обонятельных путей в жизни Xenopus головастиками
Функциональная оценка обонятельных путей в жизни Xenopus головастиками
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Functional Evaluation of Olfactory Pathways in Living Xenopus Tadpoles

Функциональная оценка обонятельных путей в жизни Xenopus головастиками

Full Text
7,256 Views
07:33 min
December 11, 2018

DOI: 10.3791/58028-v

Beatrice Terni*1,2,3, Paolo Pacciolla*1,2,3, Margalida Perelló1,2,3, Artur Llobet1,2,3

1Laboratory of Neurobiology, Neuroscience Program, Bellvitge Biomedical Research Institute (IDIBELL),L'Hospitalet de Llobregat, 2Department of Pathology and Experimental Therapy, School of Medicine, University of Barcelona,L'Hospitalet de Llobregat, 3Institute of Neurosciences, University of Barcelona,L'Hospitalet de Llobregat

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a methodological framework for investigating the olfactory processing in Xenopus tadpoles, a valuable model for in vivo studies of neurobiology. The study includes protocols for assessing olfactory pathways in normal and injured conditions, providing insights into the functional dynamics of the nervous system.

Key Study Components

Area of Science

  • Neurobiology
  • Olfactory processing
  • In vivo imaging

Background

  • Xenopus tadpoles provide a unique model to study the nervous system.
  • The ability to visualize and manipulate biological responses in live specimens is crucial for understanding neuronal functions.
  • Olfactory pathways play a significant role in behavioral responses to stimuli.
  • Investigating these pathways can reveal insights into synaptic alterations and injury responses.

Purpose of Study

  • To describe methodologies for evaluating olfactory information processing in live Xenopus tadpoles.
  • To establish approaches for studying presynaptic terminal functions in vivo.
  • To assess behavioral responses under normal and injured scenarios.

Methods Used

  • In vivo imaging of Xenopus tadpoles was employed to visualize olfactory processing.
  • Tadpoles were subjected to nerve transection and fluorescence imaging techniques.
  • Protocols included anesthetization, dye injection, and behavioral tracking.
  • These methods enabled real-time observation of olfactory-guided behavior.
  • Recovery from anesthesia and maintenance of tadpole viability were essential aspects of the experimental design.

Main Results

  • Successful visualization of fluorescence in the olfactory bulb was achieved following dye injection.
  • Behavioral experiments indicated that tadpoles demonstrated positive tropism towards odorant solutions.
  • Quantitative analysis of motion confirmed the ability of tadpoles to detect olfactory stimuli based on proximity and response times.
  • Reproducible responses to olfactory stimuli suggest robust methodologies for exploring synaptic changes post-injury.

Conclusions

  • This study establishes techniques for investigating olfactory information processing in Xenopus tadpoles.
  • The methodologies pave the way for future neurobiological research, especially in contexts of injury and recovery.
  • Findings may enhance the understanding of neuronal mechanisms and neural plasticity.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using Xenopus tadpoles for neurobiological studies?
Xenopus tadpoles offer a transparent body plan and accessible nervous system, allowing real-time visualizations and manipulations of neuronal activity.
How is the nerve transection procedure implemented?
The procedure involves anesthetizing the tadpole, positioning it under a microscope, and carefully transecting the olfactory nerves to suppress odorant information.
What types of data or outcomes are obtained from this method?
This method allows for the quantification of behavioral responses, such as positive tropism towards odorants and visualization of neural pathways through imaging techniques.
How can the method be adapted for other sensory systems?
While focused on olfaction, similar imaging and behavioral testing protocols can be adapted for other sensory modalities in Xenopus or potentially other transparent models.
Are there any limitations to using this model?
Potential limitations include the specificity of findings to the xenopus model and the challenges in translating results to more complex vertebrate systems.
What insights does this study provide about synaptic properties after injury?
The methodologies allow researchers to explore synaptic alterations and recovery mechanisms following nerve transection, contributing to understanding of injury responses.

Xenopus головастиков предлагают уникальную платформу для изучения функции нервной системы в естественных условиях. Мы описываем методологий для оценки обработка обонятельной информации в живых личинок Xenopus в нормальных условиях воспитания или после травмы.

Этот метод может быть полезен для ответа на ключевые вопросы в нейробиологических областях, таких как, как функции пресинаптических терминалов in vivo. Основным преимуществом этого набора методов является то, что мы показываем бесплатные подходы к ослов функции обонятельных путей с использованием tadpoles Xenopus в качестве модели животных. Демонстрацией этой процедуры будет я, Беатрис Терни и Паоло Паччолла.

Начните процедуру трансекции, смачивая два куска целлюлозной качественной фильтровальной бумаги в 0,02%MS2 22 обезболивающее решение, и поместив их под вскрытый прицел. Затем выберите головастика из бака и погрузите его в блюдо из обезболивающего раствора. Головастик должен прекратить плавание в течение двух-четырех минут.

Проверьте наличие надлежащей анестезии при отсутствии реакции на механические стимулы, применяемые на уровне хвоста с помощью пинцета. Поместите обезболивающее головастика на фильтровальную бумагу под прицел. Распоить животное с его спинной стороны лицом вверх, чтобы структуры мозга могут быть визуализированы.

Для поведенческих экспериментов, использовать вени ножницы для трансектирования обоих нервов, чтобы подавить всю информацию одорантов, прибывающих в обонятельной лампы. Загрузите польированную стеклянную пипетку с двумя микролитров кальция зеленый один декстрин раствор, и поместите его в микроинъектор. Поместите обезболивающее под рассеченный микроскоп на фильтровальную бумагу, затем перемести кончик пипетки в основную полость носовой капсулы и доставите от 0,15 до 0,3 микролитров красителя.

Оставьте головастика на месте на две-три минуты. Используя трубку Pasteur, капайте 0.02%MS2 22 раствор на более coddle части животного, чтобы избежать высыхания. Перенесите животное в восстановительный резервуар, где головастик должен восстановить нормальное плавание в течение 10 минут или около того.

Наблюдайте за флуоресцентностью на уровне гломерулярного слоя обонятельной луковицы на следующий день после инъекции. Подготовка анестезированной головастика для визуализации, сначала удалив кожу над обонятельной луковицы. Используйте ножницы вени, чтобы сделать боковой разрез на коже головастика на краю центральной нервной системы на уровне обонятельной луковицы.

Избегайте расширения разреза на тектум, который может быть легко идентифицирован по расположению зрительного нерва. Держите животное влажным, применяя капли 0,02%MS2 22 раствор с помощью пастер пипетки затем ущипнуть вырезать кожу с помощью пинцета и потяните его за нервную систему. Проверить успешное удаление при отсутствии меланоцитов над обонятельной луковицей.

Поместите головастика в колодец клеточной гвардии покрытием блюдо. Распоистите стеклянную крышку, покрытую высокой вакуумной смазкой, чтобы покрыть верхнюю часть тектума до конца хвоста. Убедитесь, что обонятельные лампы и placodes остаются подвержены внеклеточной среде.

Заполните блюдо питри раствором Xenopus Ringer, содержащим 100 микромоляных тубулярин для предотвращения мышечных сокращений. Поместите блюдо, держащее головастика под вертикальным микроскопом. Соедините резервуар, содержащий раствор Xenopus Ringer, с блюдом с использованием полиэтиленовой трубки для непрерывного изобилия раствора Xenopus Ringer.

Начните перелив решения Xenopus Ringer. Поддерживать уровень раствора в блюде постоянно на протяжении всего эксперимента. Непрерывно оценить головастика жизнеспособности путем наблюдения кровообращения через сосуды.

Начните живую визуализацию с помощью низкой цели увеличения, чтобы визуализировать головастика. Перемещение оси микроманипулятора, чтобы поместить капилляр доставки раствора запаха на верхней части одной носовой капсулы, образуя 90 градусов угол с обонятельным нервом. Найти обонятельную лампу расположен ipsilaterally к носовой капсулы.

Переключитесь на цель воды с высоким увеличением с большой рабочей дистанцией. Проверить выбросы флорескции I.Glomerular структур должно быть очевидно. Начните с пипетки 20 миллилитров свежего аминокислотного раствора в повышенный резервуар.

Затем возьмите шесть продуктов питания лишенных головастиков из их жилья бак, и поместите их в два литра чистой воды головастика, чтобы свести к минимуму воздействие одорантов. Поместите модифицированное шесть хорошо блюдо на белый светодиодный трансиллюминатор. Заполните каждый колодец 10 миллилитров головастика воды.

Поместите один головастик за колодец, а затем оставить на отдых, по крайней мере три минуты. Начните приобретение изображений и приобретайте фильмы, содержащие базальные, стимулирующие и восстановительные периоды. Привлекательный ответ может быть обнаружен как движение к сопла доставки раствор аминокислот.

Верните животных в свой резервуар после визуализации. Отслеживание позиций головастика в пределах 35 миллиметров на 35 миллиметров, или эквивалентного размера в пикселях, позволяет количественно оценить обонятельное поведение. Пунктирная линия представляет проксимальную область к входу раствора запаха.

Отдельные участки головастикных движений строятся с использованием координат X Y, полученных с помощью анализа изображений. Извлеченные участки подвижности должны точно воспроизводить видео изображения. Область интереса радиусом 8,75 миллиметра, сосредоточенная на входе раствора, используется для классификации близости животных к источнику запаха.

Больше времени, проведенное в непосредственной близости от сопла запаха указывает на положительный тропизм. Время, проведенное головастиков вблизи сопла в определенные периоды, например, 15-секундные интервалы, позволяет определить способность обнаруживать аминокислотные растворы. Общее поведение популяции головастиков можно получить путем построения распределения отдельных данных.

Положительный тропизм может быть обнаружен, когда аминокислотный раствор готовится на одном миллимолярне или 160 микромолях. Звери не реагируют на применение воды. После этой процедуры, другие методы, такие как гистологические методы или электрофизиология, могут быть выполнены, чтобы ответить на дополнительные вопросы, такие как изменение синаптических свойств после травмы.

После своего развития, этот метод проложил путь для исследователей в области нейробиологии, чтобы исследовать обработку обонятельной информации в головастик Xenopus.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Нейробиологии выпуск 142 головастиков Xenopus laevis Xenopus tropicalis кальция синапса нейрон обонятельного рецептора Пресинаптический терминал

Related Videos

Простой Поведенческая Анализ для тестирования зрительной функции в Xenopus Laevis

08:34

Простой Поведенческая Анализ для тестирования зрительной функции в Xenopus Laevis

Related Videos

10.2K Views

Экс Vivo Препараты неповрежденной вомероназального органа и аксессуаров обонятельная луковица

08:59

Экс Vivo Препараты неповрежденной вомероназального органа и аксессуаров обонятельная луковица

Related Videos

11.4K Views

Обонятельная система как модель для изучения характера роста аксонов и морфология В Vivo

08:29

Обонятельная система как модель для изучения характера роста аксонов и морфология В Vivo

Related Videos

11.3K Views

Перфорированные патч-зажим записи из мышей Обонятельные сенсорные нейроны в неповрежденном нейроэпителии: Функциональный анализ нейронов выражая идентифицированного одоранта рецептор

10:16

Перфорированные патч-зажим записи из мышей Обонятельные сенсорные нейроны в неповрежденном нейроэпителии: Функциональный анализ нейронов выражая идентифицированного одоранта рецептор

Related Videos

27.3K Views

Запись температурное нейронную активность посредством мониторинга изменений кальция в обонятельной луковицы Xenopus Laevis

11:08

Запись температурное нейронную активность посредством мониторинга изменений кальция в обонятельной луковицы Xenopus Laevis

Related Videos

7.6K Views

Отслеживание дрозофилы личиночной поведение в ответ на Optogenetic стимуляции обонятельных нейронов

06:49

Отслеживание дрозофилы личиночной поведение в ответ на Optogenetic стимуляции обонятельных нейронов

Related Videos

7.8K Views

Препараты и протоколы для всей ячейки патч зажим записи Xenopus laevis тектальный нейронов

05:25

Препараты и протоколы для всей ячейки патч зажим записи Xenopus laevis тектальный нейронов

Related Videos

10K Views

Микроинъекция ДНК в глазные будни в Xenopus laevis Эмбрионы и изображения GFP Экспрессинг Оптические аксональные беседки в Intact, живые Ксенопус Tadpoles

06:32

Микроинъекция ДНК в глазные будни в Xenopus laevis Эмбрионы и изображения GFP Экспрессинг Оптические аксональные беседки в Intact, живые Ксенопус Tadpoles

Related Videos

6.6K Views

Эксплантная система для покадровых исследований обонятельной кольцевой сборки у дрозофилы

07:06

Эксплантная система для покадровых исследований обонятельной кольцевой сборки у дрозофилы

Related Videos

2.5K Views

Зависимое от опыта ремоделирование синаптической связи обонятельных сенсорных нейронов ювенильного мозга в раннем критическом периоде жизни

07:13

Зависимое от опыта ремоделирование синаптической связи обонятельных сенсорных нейронов ювенильного мозга в раннем критическом периоде жизни

Related Videos

1.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code