-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Genetics
Одной капли цифровой полимеразной цепной реакции для комплексного и одновременного обнаружения му...
Одной капли цифровой полимеразной цепной реакции для комплексного и одновременного обнаружения му...
JoVE Journal
Genetics
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Genetics
Single Droplet Digital Polymerase Chain Reaction for Comprehensive and Simultaneous Detection of Mutations in Hotspot Regions

Одной капли цифровой полимеразной цепной реакции для комплексного и одновременного обнаружения мутаций в регионах Hotspot

Full Text
13,759 Views
08:23 min
September 25, 2018

DOI: 10.3791/58051-v

Charles Decraene1,2, Amanda Bortolini Silveira1, Marc Michel1, François-Clément Bidard1,3,4, Jean-Yves Pierga1,3,5, Marc-Henri Stern1,6, Charlotte Proudhon1

1Circulating Tumor Biomarkers Laboratory, SiRIC, Translational Research Department,Institut Curie, PSL Research University, 2CNRS UMR144,Institut Curie, PSL Research University, 3Department of Medical Oncology,Institut Curie, PSL Research University, 4University Versailles Saint-Quentin-en-Yvelines, 5University Paris Descartes, 6Inserm U830,Institut Curie, PSL Research University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Здесь мы представляем протокол точно определить несколько генетические изменения целевого региона в одном реакции с использованием высадки ddPCR и уникальный Пара зондов гидролиза.

Transcript

Этот метод может быть использован в качестве диагностического инструмента для рака для анализа циркулирующих ДНК опухоли. Этот метод вызывает многочисленные генетические изменения в регионах кластерных мутаций в одной реакции. Это помогает сохранить драгоценные образцы пациента.

Этот метод может дать представление о нагрузке опухоли на ее мутационный профиль. Теперь он также может быть применен к молекулярному анализу в качестве альтернативы qPCR для получения абсолютной количественной оценки последовательности целевых нуклеиновой кислоты. Соберите образцы крови в семими миллилитровых трубках ЭДТА.

Две трубки рекомендуется собрать около четырех миллилитров плазмы. Центрифуга образцов крови в течение 10 минут в 820 раз тяжести в течение трех часов после притяжения крови, чтобы отделить красные кровяные тельца, белые кровяные тельца и плазмы. Время между отбором проб и центрифугированием имеет решающее значение для получения высококачественной Т-клеточной ДНК, не загрязненной ДНК, высасывленной из белых кровяных телец.

После центрифугации используйте серологическую пипетку для сбора супернатанта, не касаясь слоя белых кровяных телец. Около двух миллилитров плазмы, как правило, восстанавливаются на EDTA трубки. После переноса плазмы в две миллилитровые трубки, центрифуга алициты при 16000 раз тяжести в течение 10 минут при 15 градусах по Цельсию, чтобы удалить клеточный мусор.

Тщательно соберите плазму, не нарушая гранулы и перенесите на две миллилитровые криогенные трубки. Хранить при отрицательном 80 градусов по Цельсию до необходимости. Начните с добавления 400 микролитров протеиназы K в 50-миллилитровую трубку.

Затем добавьте четыре миллилитров плазмы и 3,2 миллилитров буфера лиза ACL, содержащего один микрограмм несущей РНК из комплекта экстракции. Закройте трубку и перемешайте вихрем в течение 30 секунд, чтобы получить однородный раствор. Затем инкубировать при 60 градусах по Цельсию в течение 30 минут.

После инкубации добавьте 7,2 миллилитров буферного ACB в лизат для оптимизации связывания циркулирующих нуклеиновых кислот с кремнеземной мембраной. Смешайте вихрем в течение 15 до 30 секунд. Затем инкубировать трубку на льду в течение пяти минут.

Прикрепите колонку и 20 миллилитровый удлинитель на вакуумный насос. Закройте неиспользованные части, чтобы вакуумное стремление. После краткого центрифугирования трубки, осторожно ввести смесь в трубку удлинитель.

Затем включите вакуумный насос и позвольте лисировать быть обращено через столбцы полностью. Удалите и отбросьте расширитетель трубки. Затем примените к столбец 600 микролитров буфера ACW1.

Когда буфер ACW1 протянут через столбец, добавьте 750 микролитров буфера ACW2 и, наконец, 750 микролитров от 96 до 100% этанола. Затем поместите столбец в чистую двухмилилитровую трубку сбора и центрифугу на полной скорости в течение трех минут, чтобы устранить этанол. После размещения колонки в новую двухми миллилитровую трубку сбора, откройте крышку, а затем инкубировать при 56 градусов по Цельсию в течение 10 минут, чтобы полностью высушить мембрану.

После инкубации поместите столбец в чистую 1,5 миллилитровую низкосвязательную трубку. Аккуратно нанесите 36 микролитров воды без RNase с 0,04% азида натрия. Затем закройте крышку и инкубировать при комнатной температуре в течение трех минут.

Центрифуга на полной скорости снова в течение одной минуты, чтобы elute нуклеиновых кислот. Затем, хранить при отрицательном 20 градусов по Цельсию, пока это необходимо. Начните с оттаивания и эквилибации компонентов реакции к комнатной температуре в чистом вытяжке ПЦР.

Затем приготовьте 20-х раз смесь грунтовки и зондов в RNase и Dnase свободной дистиллированной воды с каждой грунтовки на 18 микромолящих концентрации и каждый зонд в пяти микромоляных концентрации. Для всех отдельных реакций ПЦР подготовьйте смесь образца, объединив 10 микролитров в два раза ddPCR Supermix, один микролитр 20 раз грунтовки и зонды смеси, и до 10 нанограммов образца ДНК в 20 микролитров дистиллированной воды. Vortex реакционной смеси тщательно, чтобы обеспечить однородность.

И кратко центрифуги для сбора содержимого в нижней части трубки перед дозированием. Вставьте картридж ddPCR в держатель и загрузите 20 микролитров смеси реакции образца в средние скважины картриджа для производства капель. Добавьте 70 микролитров масла генератора капель в нижние скважины.

Вставьте картридж с прокладкой в генератор капель. Капли будут производиться в верхних скважинах картриджа. Медленно и осторожно аспирировать 40 микролитров капель из картриджей и обойтись в 96-хорошо ПЦР пластины.

Печать окончательной пластины ПЦР с алюминиевой фольгой с помощью герметителя пластины сразу после передачи капель, чтобы избежать испарения. Кратко центрифуга пластины для сбора содержимого на дне скважин. Запустите обычное усиление ПЦР на тепловом циклере.

Когда пробег будет завершен, кратко центрифуга пластины для сбора содержимого на дне скважин. После усиления ПЦР используйте считыватель капель для подсчета положительных ПЦР и отрицательных капель ПЦР в соответствии с инструкциями производителя. Ниже приведены репрезентативные результаты, полученные в ходе оптимизации анализа DdPCR.

На этом снимке показано обнаружение ДНК мутантов и ДНК дикого типа в реакции, содержащей 100%мутантную ДНК, 5%мутантную ДНК и 100% ДНК дикого типа. На этом снимке показаны примеры образцов плазмы, проанализированных с помощью анализов KRAS и EGFR, показывающих обнаружение одного нуклеотида и множественные замены в экзоне два KRAS и удаление в EGFR exon 19. При попытке этой процедуры, важно действовать осторожно на каждом шагу с особым вниманием на поколение капель, что является критическим шагом этого метода.

После своего развития, этот метод проложил путь для исследователя и клинициста в области исследований рака для оптимизации анализа мутации опухоли с помощью жидкой биопсии.

Explore More Videos

Генетика выпуск 139 высадки ddPCR Hotspot мутации рак циркулирующих опухоли ДНК диагностика

Related Videos

Капельная цифровая полимеразная цепная реакция: метод генерации нанокапельных ПЦР-реакций для выявления редких опухолевых мутаций

04:07

Капельная цифровая полимеразная цепная реакция: метод генерации нанокапельных ПЦР-реакций для выявления редких опухолевых мутаций

Related Videos

2.6K Views

Цифровая капельная полимеразная цепная реакция для обнаружения мутаций индела в генах-мишенях

04:34

Цифровая капельная полимеразная цепная реакция для обнаружения мутаций индела в генах-мишенях

Related Videos

1.5K Views

Дуплексная цифровая ПЦР для одновременного количественного определения двойных генетических маркеров

08:45

Дуплексная цифровая ПЦР для одновременного количественного определения двойных генетических маркеров

Related Videos

991 Views

ПЦР плавления с высоким разрешением для определения вариаций последовательностей в мутантных последовательностях ДНК

04:09

ПЦР плавления с высоким разрешением для определения вариаций последовательностей в мутантных последовательностях ДНК

Related Videos

637 Views

Цифровая ПЦР на основе чипа в пробирке для количественного определения однонуклеотидных вариантов

04:32

Цифровая ПЦР на основе чипа в пробирке для количественного определения однонуклеотидных вариантов

Related Videos

630 Views

Дикого типа Блокирование ПЦР в сочетании с прямым секвенированием как высоко чувствительный метод обнаружения низкочастотных соматические мутации

10:41

Дикого типа Блокирование ПЦР в сочетании с прямым секвенированием как высоко чувствительный метод обнаружения низкочастотных соматические мутации

Related Videos

12.2K Views

Assay цифровой полимеразной цепной реакции для генетической вариации в спорадических семейное аденоматозное Polyposis пациента, используя формат чип в трубе

05:58

Assay цифровой полимеразной цепной реакции для генетической вариации в спорадических семейное аденоматозное Polyposis пациента, используя формат чип в трубе

Related Videos

11.3K Views

Обнаружение и мониторинг опухолев, связанных с циркуляцией ДНК в биожидкости пациентов

06:53

Обнаружение и мониторинг опухолев, связанных с циркуляцией ДНК в биожидкости пациентов

Related Videos

9K Views

Цифровая капельная ПЦР для выявления мутаций Indels в генетически модифицированных популяциях анофелиновых комаров

05:51

Цифровая капельная ПЦР для выявления мутаций Indels в генетически модифицированных популяциях анофелиновых комаров

Related Videos

3.8K Views

ПЦР с блокированием дикого типа в сочетании с секвенированием по Сэнгеру для выявления низкочастотных соматических мутаций

07:17

ПЦР с блокированием дикого типа в сочетании с секвенированием по Сэнгеру для выявления низкочастотных соматических мутаций

Related Videos

1.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code