-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Обнаружение низких копии число комплексных вирусной ДНК, образованный в Vitro инфекции г...
Обнаружение низких копии число комплексных вирусной ДНК, образованный в Vitro инфекции г...
JoVE Journal
Immunology and Infection
This content is Free Access.
JoVE Journal Immunology and Infection
Detection of Low Copy Number Integrated Viral DNA Formed by In Vitro Hepatitis B Infection

Обнаружение низких копии число комплексных вирусной ДНК, образованный в Vitro инфекции гепатита B

Full Text
18,817 Views
11:14 min
November 7, 2018

DOI: 10.3791/58202-v

Thomas Tu1,2, Stephan Urban1,3

1Department of Infectious Diseases, Molecular Virology,Heidelberg University Hospital, 2Gastroenterology and Liver Research Laboratory,Ingham Institute, 3German Center for Infection Research (DZIF)

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Мы опишем здесь в vitro поколение HBV ДНК через систему инфекции вирусом гепатита B и высокочувствительный обнаружения ее интеграции (1 – 2 экз.), с помощью обратной вложенных ПЦР.

Этот метод может быть использован для ответа на ключевые вопросы вирусологии гепатита В, такие как поиск клеточных или вирусологических факторов, влияющих на интеграцию ДНК ВПЧ. Эта методика имеет множество преимуществ. Это относительно дешево, и легко провести, анализ результатов прост, и это очень чувствительно, вплоть до отдельных копий.

Хотя этот метод может быть использован для получения информации об интеграции HBV, он также может быть использован для других вирусов, которые интегрируются в геном клетки-хозяина, такие как ВИЧ, HTLV-1, или ВПЧ. Чтобы заразить клетки, семя 200 000 клеток на миллилитр в двенадцати хорошо пластины, с 1 миллилитр D-mem. На следующий день используйте колонку гепарина, очищенную су-за-на-дин из HEP-AD 38, как инокулентную, чтобы заразить клетки по 1000 VGE на клетку, в 500 микролитров среды культуры.

Затем, культура клеток на 37 градусов по Цельсию. Затем, на следующий день, мыть клетки в два раза с одним миллилитр стерильных один раз PBS. Затем заменяем культурную среду каждые 2 дня, до сбора урожая.

На 3-й день после инфекции, лечить клетки с 5 микромоляных тенофовир дисопроксил и 10 микромолейных ламивудин ограничить производство ВГВ репликации промежуточных, которые усиливаются способны обратный ПЦР. На 5-й день, после инфекции, трипсинизировать некоторые клетки с 200 микролитров трипсина ЭДТА и повторно приостановить их в 2 миллилитров D-mem, содержащих 5 микромолярный тенофовир дисопроксил и 10 микромолярной ламивудин. Впоследствии перенесите клеточные суспензии на шесть пластин, чтобы вызвать один раунд митоза.

На 7-й день после инфекции, трипсинизировать расширенные клетки в 400 микролитров трипсина EDTA и приостановить смесь в 1 миллилетер D-mem. Затем перенесите подвеску в 1,5 миллилитровую трубку. Пеллет клеток центрифугации в 500 раз G, в течение пяти минут.

И удалить Су-за-на-дин стремление. Извлекайте ДНК из клеточной гранулы с помощью набора для извлечения ДНК, в соответствии с инструкцией производителя. Для инверсии ДНК выделите от 1,5 до 2,5 микрограммов общего экстракта ДНК в 200 микролитров ПЦР-трубку.

Далее добавьте соответствующее количество ограничения фермента мастер смеси, чтобы привести к 40 микролитер реакции объема, содержащий 1 раз реактора реакции буфера и 10 единиц NCO-1HF. Инкубировать реакцию фермента ограничения в машине PCR на 37 градусов celsius на один час, для оптимальной эффективности пищеварения. Затем инактивировать фермент ограничения, инкубируя его 80 градусов по Цельсию в течение 20 минут.

Перенесите всю реакцию фермента ограничения в 1,5 миллилитровую трубку. Впоследствии добавьте 400 микролитров буфера T4 dna ligase и 500 единиц лигозы ДНК T4 и тщательно перемешайте. Большой объем реакции стимулирует внутримолекулярную перевязку переваренных фрагментов ДНК.

Инкубировать реакцию перевязки при комнатной температуре в течение 2 часов, чтобы обеспечить полную перевязку. После 2 часов, Инактивировать T4 ДНК лигазы при 70 градусов по Цельсию в течение 20 минут. Затем добавьте 10 микролитров 10 додедекилового сульфата натрия, чтобы обеспечить полную инактивацию либазы T4.

Добавьте хлорид натрия в окончательную концентрацию 100 миллимоляров, и Декстран к окончательной концентрации 90 микрограмм на миллилитр. Смешайте пульс вихри, и кратко спина вниз реакции смеси. Далее добавьте 900 микролитров 100 этанола и перемешайте с помощью инверсии.

Осадок ДНК при отрицательном 20 градусов по Цельсию в одночасье. И гранулы осажденной ДНК центрифугации в 14000 раз G в течение 15 минут. После этого удалите Су-пер-на-на-дин стремление.

Вымойте гранулы с 500 микролитров 70 этанола. И центрифугирование при 14000 раз G в течение 15 минут. Затем удалите этанол путем аспирации и высушите гранулы ДНК при комнатной температуре в течение 20 минут.

Растворите гранулы в 20 микролитров воды и добавьте 20 микролитров ограничитерной ферментной смеси, чтобы привести к 40 микролитровому объему реакции, содержащем 1 раз буфер реакции пищеварения, 5 единиц BSIHK-1 и 5 единиц SPH-1HF. Гнездо, инкубировать реакцию фермента ограничения в тепловом блоке при температуре 37 градусов по Цельсию, в течение 1 часа. Кратко спина вниз реакции смеси, инкубировать ограничение ферментной реакции в тепловом блоке при температуре 65 градусов по Цельсию в течение 1 часа.

В этой процедуре удалите потенциальные ампликоны из многоразового кремниевого уплотнения коврика, используя раствор деградации ДНК. Промыть коврик тщательно с ДНК свободной воды и воздух высушить его при комнатной температуре. Далее, подготовить один миллилетер 1 раз PCR смесь, содержащая внешний вперед и обратной грунтовки в концентрации 0,5 микромоляра.

Добавить 170 микролитров, если 1 раз PCR смесь скважин A-1 и E-1, в 96 хорошо ПЦР пластины. Затем добавьте 120 микролитров смеси ПЦР в скважины B-1 и H-1. После этого добавьте 10 микролитров перевернутой ДНК в скважины А-1 и Е-1.

Смешайте реакцию в каждой хорошо, мягко pipetting каждый, около 10 раз с помощью P-1000 набор 100 микролитров. Серийно разбавляют образцы из скважин А-1 к Д-1, при соотношении 1:3, передавая по 60 микролитров на каждом шагу. Смешайте скважины на каждом шагу, аккуратно трубя их около 10 раз с помощью P-1000 набор 100 микролитров.

Избегайте формирования пузырьков, повторите процедуру для хорошо E-1, разбавляя до хорошо H-1. Впоследствии выделите 10 микролитров реакционной смеси, используя многоканальные пипетки, из скважин А-1, Н-1, в скважины А-2, Н2, А-3, Н-3 и так далее, пока не доберутся до скважин А-12, Н-12 из 96 скважин. Обложка ПЦР пластины с сухим кремниевым ковриком, и нажмите твердо.

Затем поместите пластину в машину ПЦР и запустите программу, указанную, прежде чем перевести пластину на комнатную температуру. После этого нагрейте булавки репликатора 96 штифта до красного цвета с горелкой Bunsen, затем охладив в течение по крайней мере 5 минут при комнатной температуре. Заполните скважины второй пластины ПЦР с 10 микролитров 1 раз PCR смеси, содержащие гель нагрузки готовы буфер, и внутренний вперед и 1 на 0,5 микромолара.

Аккуратно снимите кремниевый коврик с пластины ПЦР пластины 96 скважин с первого раунда ПЦР и избегайте перекрестного загрязнения между скважинами. Используйте охлажденный репликатор для передачи ПЦР-продуктов пластины 96 хорошо, от первого раунда ПЦР, к недавно выделенным 96 хорошо пластины. Выполнить вложенный ПЦР, используя условие, как указано.

Чтобы изолировать продукты ПЦР, проанализируйте их с помощью гель-электрофорез, используя пластину 96 хорошо, с 1,3 агарозного геля. Для 100 миллилитров геля агарозы, работать на 200 вольт в течение 10 до 15 минут. После этого, акциз ДНК полосы из гелей Агарозы, используя одноразовые соломинки питьевой.

Для каждого продукта ПЦР, место соломы и агарозы гель штепсельная вилка в 1,5 миллилитровую трубку, обрезать солому до размера с ножницами. После этого, извлечь Агароза подключается к каждой трубке, сжимая на конце фрагмента соломы. Затем добавьте 300 микролитров буфера извлечения геля и 5 микролитров стеклянных бусин для извлечения геля в каждую трубку.

Извлекайте продукты ПЦР в соответствии с инструкциями производителя для комплекта для извлечения геля и разбавляют ДНК из бисера 30 микролитров воды. Отправить очищенную ДНК для секвенирования Сэнгер, с вперед грунтовки используется во втором раунде вложенных ПЦР. Здесь показан пример электрофорез агарозного геля успешного обратного ПЦР до и после изоляции продукта ПЦР.

M представляет маркер ДНК последнего, каждый ряд из 12 представляет собой технические репликации при одном разбавлении на пластине ПЦР. В этом случае одиночные продукты ПЦР должны быть достигнуты за счет второго или третьего разбавления каждого образца 1:3. При этих разбавлениях примерно 50% продуктов будут представлять истинные соединения ДНК вирусных клеток.

В то время как другая половина представляет собой усиление промежуточных ДНК HBV. Этот метод позволил исследователям исследовать интеграцию ДНК ВПЧ в высоко контролируемых системах инфекции in vitro. Дополнительные методы, такие как биотематический анализ, могут быть использованы для ответа на дальнейшие вопросы.

Например, если интеграция ДНК ВПЧ происходит в определенных регионах клеточного генома. Не забывайте, что работа с вирусом гепатита В, может быть опасным и соответствующим инфекционного контроля, таких как био-кабинеты безопасности и предварительной вакцинации, всегда должны быть приняты при выполнении этих процедур.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Иммунология и инфекции выпуск 141 HBV ДНК интеграции Myrcludex B гепатоцеллюлярной карциномы двунитевая линейной ДНК обратная вложенные PCR вирус вход вирусный сохраняемости

Related Videos

Рекомбинантная вирусная репортерная система in vitro для выявления вирусной инфекции

03:56

Рекомбинантная вирусная репортерная система in vitro для выявления вирусной инфекции

Related Videos

657 Views

Протокол для анализа вируса гепатита С репликации

13:04

Протокол для анализа вируса гепатита С репликации

Related Videos

24.7K Views

Разработка системы Вирус Reporter гепатита B для мониторинга на ранних стадиях цикла репликации

09:35

Разработка системы Вирус Reporter гепатита B для мониторинга на ранних стадиях цикла репликации

Related Videos

13.9K Views

«Печени на чипе» культур первичных гепатоцитов и клеток Купфера для инфицирования вирусом гепатита B

10:25

«Печени на чипе» культур первичных гепатоцитов и клеток Купфера для инфицирования вирусом гепатита B

Related Videos

12.1K Views

Моделирование инфекции вируса гепатита В в клетках не хедпатического 293T-NE-3NRs

09:02

Моделирование инфекции вируса гепатита В в клетках не хедпатического 293T-NE-3NRs

Related Videos

7.9K Views

Компетентная модель гепатоцитов, исследующая проникновение вируса гепатита В через таурохолат натрия, котранспортирующий полипептид в качестве терапевтической мишени

11:34

Компетентная модель гепатоцитов, исследующая проникновение вируса гепатита В через таурохолат натрия, котранспортирующий полипептид в качестве терапевтической мишени

Related Videos

2.7K Views

Обнаружение и количественная оценка ДНК вируса гепатита В в режиме реального времени на основе полимеразной цепной реакции

04:11

Обнаружение и количественная оценка ДНК вируса гепатита В в режиме реального времени на основе полимеразной цепной реакции

Related Videos

4.6K Views

Подготовка вирусных ДНК из нуклеокапсидов

12:45

Подготовка вирусных ДНК из нуклеокапсидов

Related Videos

21.5K Views

Создание В пробирке Система по изучению внутриклеточных Поведение Candida glabrata В человека ТНР-1 макрофагов

13:47

Создание В пробирке Система по изучению внутриклеточных Поведение Candida glabrata В человека ТНР-1 макрофагов

Related Videos

12.2K Views

Развитие Лиофилизированный Loop опосредованных изотермических реагенты для амплификации для обнаружения Coxiella burnetii

07:27

Развитие Лиофилизированный Loop опосредованных изотермических реагенты для амплификации для обнаружения Coxiella burnetii

Related Videos

10.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code