-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biochemistry
Как определить долю флуоресцентных белков Photoactivated навалом и в живых клеток
Как определить долю флуоресцентных белков Photoactivated навалом и в живых клеток
JoVE Journal
Biochemistry
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biochemistry
How to Quantify the Fraction of Photoactivated Fluorescent Proteins in Bulk and in Live Cells

Как определить долю флуоресцентных белков Photoactivated навалом и в живых клеток

Full Text
7,097 Views
11:03 min
January 7, 2019

DOI: 10.3791/58588-v

Vanessa Chen1, Malte Renz1

1Gynecologic Oncology Division,Stanford University School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol utilizing genetically coupled spectrally distinct photoactivatable and fluorescent proteins. These chimeras allow for the quantification of the photoactivation efficiency of the PA-FP fraction that becomes fluorescent, revealing that different photoactivation modes yield varying efficiencies.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Fluorescent Protein Technology
  • Photoactivation Techniques

Background

  • Fluorescent proteins are essential tools in biological research.
  • Photoactivatable fluorescent proteins enable spatiotemporal control of fluorescence.
  • Understanding photoactivation efficiency is crucial for accurate experimental outcomes.
  • Different activation methods can influence the performance of these proteins.

Purpose of Study

  • To develop a protocol for assessing photoactivation efficiency.
  • To compare the effects of various photoactivation modes.
  • To enhance the utility of fluorescent protein chimeras in research.

Methods Used

  • Genetic coupling of photoactivatable and fluorescent proteins.
  • Quantification of the photoactivated fraction.
  • Comparison of different photoactivation techniques.
  • Analysis of photoactivation efficiencies.

Main Results

  • Different modes of photoactivation resulted in varying efficiencies.
  • The protocol successfully quantified the photoactivation efficiency.
  • Fluorescent protein chimeras demonstrated significant potential for research applications.
  • Insights gained can inform future studies using photoactivatable proteins.

Conclusions

  • The study provides a valuable protocol for researchers.
  • Understanding photoactivation efficiency is critical for experimental design.
  • Future research can build on these findings to optimize fluorescent protein use.

Frequently Asked Questions

What are photoactivatable fluorescent proteins?
Photoactivatable fluorescent proteins are proteins that can be activated by light to emit fluorescence, allowing for precise control in biological experiments.
How does the protocol improve research?
The protocol allows researchers to quantify photoactivation efficiency, which is essential for accurate interpretation of experimental results.
What are the applications of this study?
This study can be applied in various fields of neuroscience and cell biology where fluorescent proteins are used for imaging and tracking cellular processes.
Why is photoactivation efficiency important?
Photoactivation efficiency affects the reliability of results in experiments involving fluorescent proteins, making it crucial for experimental accuracy.
Can different photoactivation methods be compared?
Yes, the study demonstrates that different photoactivation methods yield different efficiencies, allowing for comparative analysis.

Здесь мы представляем протокол, который включает в себя генетически спаренных спектрально собственный photoactivatable и флуоресцентных белков. Эти флуоресцентный белок химер количественной фракции ПА-FP, это photoactivated быть флуоресцентные, т.е., photoactivation эффективность. Протокол показывает, что различные виды photoactivation принести различные photoactivation эффективность.

Мы представляем здесь протокол, который включает в себя генетически соединенные спектрально различные фотоактивируемые и флуоресцентные белки. Эти внутренние правители позволяют количественно ПАФП фракции, которая фото активируется, чтобы быть флуоресцентным. До сих пор не было доступно никакого метода количественной оценки оптом в клетках жизни, сколько из PAFP выразил фото активируется для флуоресца. Представленная количественная оценка эффективности фотоактивации является примером для PA-GFP и PA Cherry в живых клетках, но она в принципе широко применима и может быть использована для любого фотоактивируемого флуоресцентного белка при любом экспериментальном состоянии. Всякий раз, когда работа с генетически закодированными флуоресцентными белками, абсолютное количество выраженных белков варьируется от клетки к клетке, и это неизвестно. Чтобы стандартизировать экспрессию между клетками, мы вводим внутренние линейки генетически соединенных спектрально различных флуоресцентных белков. Путем соедать генетическую информацию фотоактивируемого флуоресцентного протеина к spectrally отчетливым всегда на флуоресцентных правителях протеина внутренне созданы которые все еще будут выражены к неизвестному полному количеству но в сториченном известном относительном количестве одного к одному. Чтобы начать строительство плазмидов, как описано в сопроводительном текстовом протоколе. Кроме того, культура в стандартной клеточной линии в своей перспективе среды с использованием фенола красный бесплатная версия. Когда готовы начать эксперимент, урожай клеток с помощью трипсина без фенола красный, чтобы уменьшить фон флуоресценции. После сбора урожая заполните 2 мл пипетки с клеточной подвеской из культуры стеченных клеток, выращенных в колбе культуры Т 12,5 клеток. Добавьте по одной капле в каждую камеру восьми камерного стеклянного слайда. Инкубировать слайд в стандартных условиях культуры клеток в течение 24 часов. Далее трансфект клеток с использованием коммерческих реагентов в соответствии с протоколом дистрибьюторов. Transfect клетки с GFP Черри, PA-GFP Черри и GFPPA Черри химер. Затем верните клетки в инкубатор, чтобы обеспечить экспрессию белка, складывание и созревание. После в общей сложности 20 часов после трансфекции, перенести клетки на стадию конфокального флуоресцентного микроскопа, оснащенного увлажненной и нагретой экологической камерой, предварительно разогретой до 37

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биохимия выпуск 143 Photoactivatable флуоресцентные белки photoactivation эффективность исследования на основе интенсивности ансамбль ratiometric photoconvertible флуоресцентных белков GFP mCherry

Related Videos

Фотопревращения Очищенная флуоресцентных белков и двойного зонда Оптические Выделение в живых клетках

11:21

Фотопревращения Очищенная флуоресцентных белков и двойного зонда Оптические Выделение в живых клетках

Related Videos

12.6K Views

В естественных условиях Количественная оценка G белком рецептор взаимодействий с использованием спектрально Решено Двухфотонное микроскопии

14:26

В естественных условиях Количественная оценка G белком рецептор взаимодействий с использованием спектрально Решено Двухфотонное микроскопии

Related Videos

13.7K Views

Визуализация эндоплазматической сети субдоменов в культивируемых клетках

16:43

Визуализация эндоплазматической сети субдоменов в культивируемых клетках

Related Videos

13.8K Views

Визуализация взаимодействий белок-ДНК в живых бактериальных клеток с использованием отслеживания одиночных молекул фотоактивируемые

16:21

Визуализация взаимодействий белок-ДНК в живых бактериальных клеток с использованием отслеживания одиночных молекул фотоактивируемые

Related Videos

18.4K Views

Интернационализация и наблюдение флуоресцентных биомолекул в живых микроорганизмов с помощью электропорации

15:27

Интернационализация и наблюдение флуоресцентных биомолекул в живых микроорганизмов с помощью электропорации

Related Videos

17.6K Views

Количественные иммунофлюоресценции для измерения глобального локализованный перевод

09:13

Количественные иммунофлюоресценции для измерения глобального локализованный перевод

Related Videos

10.5K Views

Микроманипуляции методы, позволяя анализ морфогенетических динамики и оборот цитоскелета регуляторов

12:52

Микроманипуляции методы, позволяя анализ морфогенетических динамики и оборот цитоскелета регуляторов

Related Videos

10.5K Views

Количественная оценка Efferocytosis по микроскопии флуоресцирования одноклеточного

06:15

Количественная оценка Efferocytosis по микроскопии флуоресцирования одноклеточного

Related Videos

13.6K Views

Флуоресценции колебания спектроскопии Assay белок белковых взаимодействий в ячейке контакты

08:43

Флуоресценции колебания спектроскопии Assay белок белковых взаимодействий в ячейке контакты

Related Videos

12.1K Views

Визуализация белка киназы активность в голову фиксированной вести мышей, используя в Vivo двухфотонная флуоресценция Пожизненная микроскопия изображений

10:41

Визуализация белка киназы активность в голову фиксированной вести мышей, используя в Vivo двухфотонная флуоресценция Пожизненная микроскопия изображений

Related Videos

9.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code