11 января 2019 г.
Этот протокол направлен на обеспечение подробные экспериментальные шаги для лечения холодной плазмы атмосферного нервных стволовых клеток и обнаружение иммунофлюоресценции для дифференциации повышение.
Этот метод имеет потенциал для повышения дифференциации нервных стволовых клеток в пробирке и внести свой вклад в лечение неврологических заболеваний, таких как болезнь Паркинсона. Основными преимуществами этой методики является то, что холодная атмосферная плазма может быть применена в один шаг для безопасной направленной дифференциации нервных стволовых клеток для трансплантации тканей. Холодная атмосферная плазма может повысить дифференциацию нервных стволовых клеток в течение короткого периода лечения.
И с необходимостью большего повреждения клеток, обеспечивая желаемые клетки для трансплантации. Начните с посева около пяти раз десять до пятого murine нервных стволовых клеток в 25 сантиметров квадратной колбы. Содержит пять миллилитров полного DMEM в течение двух-трех дней при 37 градусах по Цельсию и пяти процентах углекислого газа.
Когда клетки достигают 85 процентов слияния, мыть культуру с одним миллилитров PBS. Перед лечением, с одним миллилитром 25 процентов трипсина в течение одной минуты. Когда клетки отсоединились, остановите реакцию одним миллилитром среды культуры.
И пипетка несколько раз для создания одной клеточной подвески. После подсчета, разбавить клетки в два раза десять до четвертой клетки на миллилитр концентрации. Семя один миллилитр стволовых клеток на один поли-D-лизин покрытием покрытия скольжения на скважину в девяти скважинах 12 пластины клеточной культуры.
Проверьте плотность клеток под микроскопом. И вернуть клетки в инкубатор на 12 часов. Когда клетки прикрепили, мыть крышку скользит два раза с одним миллилитром PBS на стирку, и лечить клетки с дифференциацией среды в течение 48 часов.
Для приобретения струи сначала подключите выходной провод питания к плазменовому реактивному устройству. И кончик высоковольтного зонда с выходной проволокой для обнаружения напряжения. Затем подключите другой конец высоковольтного зонда к осциллоскопу, чтобы зафиксировать информацию от выходного напряжения.
Проверьте всю схему, чтобы убедиться, что источник питания, осциллоскоп и высоковольтный зонд все заземлены. И проверьте газовую линию, чтобы убедиться, что газовая трубка подключена к плазменному реактивному устройству. Затем откройте гелий и кислородные газовые клапаны и установите поток газа на один литр до 01 литра в минуту соотношение гелия к кислороду.
Проверьте схему снова и нажмите кнопку вывода для создания плазменной струи. Для плазмы лечения нервных стволовых клеток установите расстояние между соплом шприца и первым колодецом клеток до 15 миллиметров. Замените супернатанты в культурах нервных стволовых клеток 800 микролитров свежей дифференциации среды.
И поместите пластину под плазменные струи. Убедившись, что сопло шприца фиксируется над центром каждой хорошо. Создайте три скважины с плазмой в течение 60 секунд за обработку и три скважины с одним процентом гелия и кислородного газа в течение 60 секунд за обработку.
Оставляя три колодца необработанными, как контроль. Затем замените супернатанты на один миллилитр свежей дифференциации среды. И вернуть клетки в инкубатор на шесть дней.
Проверьте статус дифференциации различных групп ежедневно, под перевернутым фазово-контрастным световым микроскопом. После лечения, дайте клеткам полностью эквилибрировать в состоянии среды в течение примерно одного часа, прежде чем заменить супернатант со свежей дифференциации среды. Для иммунофлуоресценции анализа, исправить культур с 500 микролитров четыре процента параформальдегида на колодец в течение 20 минут при комнатной температуре.
Затем три нежные пять минут полоскания, с одним миллилитров PBS за стирку. Далее, permeabilize фиксированных образцов с 2 процентов Triton X-100 в PBS в течение 10 минут при комнатной температуре. Затем нежное полоскания, как попродемонстрировано.
После последней стирки, блокировать любые неспецифические связывания с одним миллилитр 10 процентов козьей сыворотки в PBS на образец в течение одного часа при комнатной температуре. В конце инкубации, этикетки клеток в каждом хорошо с 300 микролитров первичного антитела интерес ночь на четыре градуса по Цельсию. Затем три моет в PBS, как попродемонстрировано.
После последнего мытья, этикетка клеток с 300 микролитров соответствующих вторичных антител. Инкубировать в течение двух часов при комнатной температуре, защищенной от света. Затем аккуратно промойте клетки одним миллилитром PBS на колодец в течение десяти минут при комнатной температуре.
Изображение клеток на флуоресцентном микроскопе, оснащенном соответствующими фильтрами. Плазма обработанных нервных стволовых клеток демонстрируют ускоренную скорость дифференциации, и более высокий коэффициент дифференциации по сравнению с необработанным контролем, и газовый поток обработанных стволовых клеток. После плазменной обработки Нестин уменьшается.
Бета-Тубулин III значительно увеличивается. И O4 немного увеличивается, по сравнению с контролем обработанных и газовый поток обработанных стволовых клеток. Кроме того, после 60 секунд лечения плазмы наблюдается надежное выражение зрелых нейронов, холинергических нейронов и маркеров моторных нейронов.
С очень мало ГАМК и серотонергических нейронов, и не дофаминергических нейронов обнаружены. При попытке этих процедур, важно помнить, лечить клетки с надлежащей дозировкой плазмы, потому что длительный и интенсивный период лечения плазмы вызовет апоптоз клеток или некроз. Не забудьте также предварительно проверить жизнеспособность ячейки перед применением вниз по течению.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном протоколе описаны экспериментальные этапы воздействия холодной атмосферной плазмы на нейральные стволовые клетки с целью стимуляции их дифференцировки. Этот метод может быть применен при лечении неврологических заболеваний, таких как болезнь Паркинсона.
Холодная атмосферная плазма (ХАП) обеспечивает быструю одноэтапную дифференцировку нейральных стволовых клеток in vitro, предлагая масштабируемый подход к созданию популяций нейронов, которые имеют значение для моделирования неврологических заболеваний и регенеративных исследований. Этот метод позволяет устранить основной проблемный этап в получении зрелых, функционально специфицированных нейронов для доклинических исследований и потенциальных протоколов клеточной терапии. Оптимизированный рабочий процесс данного метода повышает предсказуемость результатов определения судьбы клеток и расширяет возможности портфеля исследований и разработок, сфокусированных на нейродегенерации.
Дифференцировка нейральных стволовых клеток, опосредованная CAP, находится на стыке ранних этапов открытия и разработки доклинических моделей, связывая этапы получения клеток и их функциональной валидации.