15 февраля 2019 г.
Цель настоящего Протокола заключается в демонстрации как побудить кластерных устьиц в семядоли Arabidopsis thaliana саженцев погружения лечение с раствором сахара содержащих средних и как соблюдать внутриклеточных структур, таких как хлоропласты и микротрубочек в кластерных гвардии ячейки, используя Конфокальная лазерная микроскопия.
Этот метод ответил на ключевой вопрос биологии развития растений. То есть, в чем важность пространственного распределения стоматы? Наша индукционная система кластерной стоматы с использованием раствора сахарозы довольно проста и непосредственно применима к трансгенным или мутантным линиям арабидопсиса талиана.
Для начала добавьте в стакан 1,1 грамма средних солей Мурашиге-Скуг и 15 граммов сахарозы. Добавьте в стакан 490 миллилитров дистиллированной воды и смешайте с баром для перемешивания. Используйте гидроксид калия для регулировки рН до 5,8.
Затем разбавить раствор 500 миллилитров дистиллированной воды и передать разбавленный раствор в средней бутылке. После этого, автоклав решения. Подготовь решение для стерилизации в соответствии с текстовым протоколом.
Затем, работая в асептических условиях, поместите около 50 трансгенных семян A.thaliana с флуоресцентным маркером в 1,5 миллилитровую трубку. Затем добавьте один миллилитр 70% этанола в трубку и перемешайте трубку пять раз. После того, как семена утонут на дно трубки, аккуратно удалите этанол с помощью микропипюты.
Добавьте один миллилитр раствора стерилизации в семена и инвертировать трубку пять раз, чтобы смешать. Аккуратно удалите раствор стерилизации из семян с помощью микропипеда. Затем добавьте один миллилитр стерильной воды.
Добавьте 1,5 миллилитров раствора Murashige-Skoog к каждому колодец из 24 пластин. Затем добавьте два стерилизованных семян к каждому хорошо. Используя два слоя парафильма, приклейте крышку к пластине.
Затем перенесите пластину в камеру роста, чтобы инкубировать в течение 14 дней. Во-первых, перенесите 30 микролитров раствора Мурашиге-Скуг из 24 хорошо пластины в центр стеклянной горки. Используя рассечение ножницами, удалите котилендон из 14-дневного рассады.
Поплавок cotyledon со стороной наблюдения лицом вверх на падение Murashige-Skoog решения. Подготовь котилендон в соответствии с методами, ранее описанными в журнале визуализированых экспериментов. Установите образец на сцене конфокального лазерного микроскопа.
Наконец, используйте яркое освещение поля для выбора кластерных охранных ячеек для наблюдения. В этом протоколе стоматальная кластеризация была индуцирована в саженцах A.thaliana. Кластерные клетки-охранники, выращенные в сахарозе, содержащей средние хлоропласты, чем клетки-охранники, выращенные в условиях, свободных от сахарозы.
Расширение хлоропластов было подтверждено хлоропластом стромы маркером и хлорофиллом аутофторесцентных средств, что свидетельствует о том, что лечение сахарозой привело к накоплению крахмала зерна в хлоропластах. Кроме того, конфокальные наблюдения GFP tub-6 показали, что корковые микротрубочные трубы были радиально ориентированы в обработанных сахарозой клетках, как и в клетках, свободных от сахарозы. На самом деле мы обнаружили этот метод случайно.
После находки мы изучили экологическую реакцию кластерной стоматы. Мы считаем, что наша система может помочь изучить значение распределения стоматы.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном протоколе демонстрируется способ индуцирования кластеризации устьиц в семядолях проростков Arabidopsis thaliana с использованием среды, содержащей сахар. Также описывается метод наблюдения за внутриклеточными структурами, такими как хлоропласты и микротрубочки в замыкающих клетках, с помощью конфокальной лазерной микроскопии.
Понимание пространственного распределения устьиц позволяет создавать прогностические модели эффективности использования воды и фотосинтетической способности растений, что имеет важное значение для оптимизации урожайности сельскохозяйственных культур и повышения их стрессоустойчивости в рамках сельскохозяйственных биотехнологий. Данная система индукции позволяет проводить механистический анализ биологии замыкающих клеток без генетической модификации, что способствует валидации мишеней в сигнальных путях растений. Описанный метод представляет собой масштабируемую и воспроизводимую платформу для оценки влияния соединений на паттерны распределения и функции устьиц в процессах поиска и разработки новых препаратов.
Данный метод подходит для рабочих процессов на ранних этапах поиска, где фенотипический скрининг и валидация мишени предшествуют идентификации ведущих соединений, что особенно актуально для конвейеров разработки агрохимикатов и признаков растений.