ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

S.A.A. финансируется Американской академией пластической и реконструктивной хирургии Лесли Бернштейн Гранты программы.

Все мероприятия проводились в строгом соответствии с руководящими принципами Национальных институтов здравоохранения (НИЗ). Экспериментальный протокол был одобрен Комитетом по институциональному уходу и использованию животных Мичиганского университета (IACUC) до его внедрения. Десятинедельная взрослая самка крыс Спраг-Доули была использована.
1. До начала оперативного дня
<ol><li>Обеспечить надлежащий запас стерилизованных хирургических инструментов, обезболивающих препаратов, обезболивающих препаратов и кислорода до операционного дня. Для полного списка, пожалуйста, смотрите таблицу материалов.</li>
</ol>2. Предоперационная установка
<ol><li>Обеспечьте адекватное рабочее пространство, включая помещение, по крайней мере, для двух человек (хирурга и ассистента). ПРИМЕЧАНИЕ: Существует необходимость в специальном операционном столе, место для установки анестезии машины, а также адекватное пространство для хранения стерилизованных и резервных поставок.</li>
	<li>Калибровать операционный микроскоп для использования во время процедур. Убедитесь, что хирург имеет возможность регулировать ручки микроскопа и кнопки масштабирования/фокусировки, поместив стерилизованный чехол над ручками/кнопками ПРИМЕЧАНИЕ: Мы использовали стерилизованную алюминиевую фольгу над ручками/кнопками.</li>
</ol>3. Анестезия и подготовка
<ol><li>Поместите животное в анестезии камеры и вызвать общую анестезию через 1,8% изофлуран и 0,9 л / мин кислорода.<ol>
<li>Подтвердите адекватную плоскость анестезии с помощью оценки спонтанного дыхания и оценки сознания путем оценки гримасы животного ответ на щепотку ног.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Нанесите смазку для глаз на двусторонней основе, чтобы защититься от раздражения роговицы или сухости.</li>
	<li>Бритье оперативного сайта (ы) с бритвой или автоматическим клипера.<ol>
<li>Установить метод для идентификации крыс ы в это время, или через метку уха или ярлык хвоста/маркировки.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Администрирование подкожной инъекции 0,05 мг/кг бупренорфина вдоль спины животного для профилактики от послеоперационной боли.</li>
</ol>4. Хирургический подход и модели травматизма
<ol><li>Перенесите животное на операционный стол и продолжайте газопоток через носекон. Убедитесь, что согревающий колодки расположен под животным и стерильное поле для поддержания температуры тела.</li>
	<li>Место стерилизованные марли (свернутые и закрепленные с лентой) для использования в качестве рулона шеи для крысы; это обеспечит более широкое воздействие хирургического поля. Обратите внимание, что соответствующее позиционирование животного имеет первостепенное значение для эффективной идентификации и вскрытия нерва.</li>
	<li>Подготовьте кожу лица животного к процедуре. Используйте хлоргексидин или раствор на основе йода для очистки хирургического участка 3x, чередуя с 70% этанола, чтобы обеспечить дезинфекцию.</li>
	<li>Планируйте и отмечаем хирургический разрез при желании. Манипулируйте ipsilateral ухом в передне-задней направлении, чтобы определить естественное складывание постурикулярной кожи.</li>
	<li>Мода 4-5 мм разрез в постурикулярной складке с помощью острых ножниц радужной оболочки или число 15 лезвие. Это может быть расширено позже в процедуре по мере необходимости.</li>
	<li>Грубо вскрыть через немедленной подкожной фасции и место микро-Weitlaner ретрактор для повышения воздействия. Обратите внимание, что в этой области могут быть кровеносные сосуды малого калибра; их лучше избегать, втягивая превосходно или неполноценно через втягивающий веллер Weitlaner.</li>
	<li>Определите переднюю дигастрическую мышцу, когда она движется в направлении низшего к началу к его вставке вдоль основания черепа.<ol>
<li>Распространение мягко через мышечный живот вдоль его вставки точки выявить сухожилия переднего дигастрического живота. Обратите внимание, что сухожилие появляется как пленочный белый процесс, исданный из мышцы с твердой вставкой на основание черепа.</li>
	</ol></li>
	<li>После идентификации передней дигастрической мышцы и ее сухожилия, отрегулируйте втягивающий вейтланер для дальнейшего упора мышечного живота. Обратите внимание, что впоследствии подвергается области трехмерного пространства, где основной ствол лицевого нерва лежит. ПРИМЕЧАНИЕ: Эта область ограничена превосходно и медиально основанием черепа, боковой передней дигастрической мышцей, posteromedially ушным каналом, и неполноценно структурами шеи, включая поверхностную височную артерию.</li>
	<li>После адекватного воздействия, определить основной ствол лицевого нерва, как он путешествует неполноценно из-под сухожилия дигастрической мышцы, где он выходит из поломастоидных из основания черепа. Обратите внимание, что нерв появляется как жемчужно-белый шнур, заключенный в околоушно-кассетную фасцию животного. Практика осторожность при дальнейшем разоблачении нерва, по следующим причинам.<ol>
<li>Избегайте агрессивного вскрытия, или перпендикулярных спредов, чтобы защититься от растяжения опосредованного нейропраксии травмы.</li>
		<li>Избегайте агрессивных задних и средненаправленных вскрытия, чтобы защититься от нарушения тонких тканей, лежащих в ушном канале, поскольку это может ввести флору среднего уха в хирургическое поле.</li>
		<li>Избегайте повреждения поверхностной височной артерии через широкое медиальное и неполноценно направленное вскрытие. Обратите внимание, что травма будет определена оживленным, пульсирующим кровотечением.<ol>
<li>Если артерия повреждена, примените быстрое давление с хлопчатобумажным аппликатором или стерильной марлей через щипцы. Гемостатические агенты или жидкий фибрин герметик могут быть размещены в непосредственной близости. Имейте в виду, что животное может потребовать подкожной инъекции 0,9% стерильного солей для стабилизации жидкости.</li>
		</ol>
</li>
	</ol></li>
	<li>Отслеживайте основной ствол дистантно, рассекая вдоль нерва в нижнем направлении, дистически от выхода из стилломастоидных фораменов.<ol>
<li>Расширьте первоначальный разрез, чтобы обеспечить полное воздействие нерва и его ветвей. Позаботьтесь, чтобы избежать нарушения мотодельтационной железы, как это может привести к послеоперационной sialocele.</li>
	</ol></li>
	<li>Индуцировать желаемые модели травмы следующим образом.<ol>
<li>Для травмы давки, используйте гладкой поверхности девицы щипцы прочно плотно захватить нерв и сжать его9. Применяйте постоянное и воспроизводимое давление на нерв в течение 30 с, чтобы обеспечить соответствующую травму давки.</li>
		<li>Для простого transection, понять фасции над нервом, или немедленного эпиневриума, с тонкозубыми щипцы, и использовать острые микроскисаторы, чтобы очистить трансект нерв в нужной точке с одного разреза. Позаботьтесь, чтобы избежать избыточной тяги на нерве с щипками.</li>
		<li>Для модели нервного разрыва создайте желаемый нервный разрыв, используя аналогичный метод к простой травме транскеции. Используйте стерилизованный вал хлопчатобумажного аппликатора, вырезанного до желаемого нервного разрыва длины-интраоперативно, чтобы обеспечить сходство картины травмы между животными.</li>
	</ol></li>
</ol>5. Закрытие ран
<ol><li>Орошать рану стерильным солевым раствором и сушить стерильной марлей.</li>
	<li>Приблизите края кожи в простой, подкатной моды с усваиваемыми швами, или использовать клей кожи или раны клипы, которые также приемлемы для замыкания раны. Поместите похоронен стежка, принимая глубокий к поверхностному укусодного края кожи, а затем последующий поверхностный к глубокому укусу противоположного края кожи.</li>
</ol>6. Послеоперационное восстановление
<ol><li>Администрирование подкожной инъекции нестероидных противовоспалительных анальгетиков (таких как 0,05 мг/кг бупренорфина и 0,5 мг/кг карпрофена) для послеоперационного контроля боли. Поместите инъекцию вдоль спины животного.</li>
	<li>Прекратите введение анестезирующегося агента и дайте животному вдыхать кислород еще 1 мин.</li>
	<li>Поместите животное в разогретую (через тепловую лампу), асептик, лишенный постельного материала, чтобы избежать случайного приема. Обратите внимание, что животное, как правило, демонстрируют признаки восстановления в течение 1-2 мин и может появиться дезориентированы, с задержкой восстановления функции задних ног.</li>
	<li>Вернуть животных в клетки в соответствующем корпусе и ввести послеоперационные анальгетики в послеоперационный день #1 для обеспечения дальнейшей профилактики от боли.</li>
	<li>Мониторинг животных 2x в день, чтобы оценить признаки недоедания, раздражение роговицы, или хирургической инфекции сайта, и поддерживать соответствующие хирургические журналы.<ol>
<li>Администрирование 0,9% стерильного солевой растворвини в подкожной моды, если есть значительная потеря веса.</li>
		<li>Нанесите смазочку глазной мази ежедневно до тех пор, пока не будет восстановлен рефлекс мигать животного.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

Авторам нечего раскрывать.

Модель травмы черепно-волосного нерва крысы стала наиболее универсальной системой для оценки нейротрофических факторов из-за его хирургической доступности, ветвления, и физиологическое значение27,29,33,34,35,36. Сочетание видеодемонстрации и применения трансгенных данных животных открывает новые возможности для научного изуче...

Травма черепного нерва в области головы и шеи может быть вторичной по отношению к врожденной, инфекционной, идиопатической, ятрогенной, травматической, неврологической, онкологической или системной этиологии1. Черепной нерв VII, или лицевого нерва, обычно страдают. Частота дисфункции лицевого нерва может быть значительным, так как она затрагивает от 20 до 30 на 100 000 человек каждый год2. Основными моторными ветвями лицевого нерва являются височные, зигоматические, буккальные, маргинальные челюстно-лицевой и шейной ветви; в зависимости от отрасли участие, последствия могут включать в себя устные некомпетентности или слюни, сухость роговицы, обструкция поля вторичной к птоз, дизартрия, или лицевой асимметрии2,3. Долгосрочная заболеваемость включает в себя явление синкинеза, или непроизвольное движение одной группы мышц лица, с попыткой добровольного сокращения различных лицевой группы мышц. Глазно-устный синкинез является наиболее распространенным из аномальных регенерации, как сиквел травмы лицевого нерва и вызывает функциональные нарушения, смущение, снижение самооценки, и низкое качество жизни3. Повреждение отдельных филиалов диктует функции, которые избирательно скомпрометированы.
Клиническое лечение травмы лицевого нерва не очень хорошо стандартизированы и нуждается в дальнейших исследованиях для улучшения результатов. Стероиды могут облегчить острый отек лицевого нерва, в то время как Ботокс полезен для временной синкинетической движения; но, основные реконструктивные варианты в вооружение практикующего включают хирургическое вмешательство через ремонт нерва, замена, или реанимации3,44,5,6. В зависимости от типа травмы лицевого нерва, полученных, хирург лицевого нерва может использовать ряд вариантов. Для простой траневкии, реанастомоз нерва полезен, в то время как ремонт кабеля-трансплантата лучше подходит для дефекта нерва; для восстановления функции, хирург может выбрать либо статические или динамические процедуры реанимации лица. Во многих случаях травмы лицевого нерва и последующего ремонта, даже в руках опытных хирургов лицевого нерва, лучший результат по-прежнему приводит к постоянной асимметрии лица и функциональный компромисс7.
Эти неоптимальные результаты стимулировали обширные исследования по регенерации лицевого нерва. Широкие темы, представляющие интерес включают совершенствование и инновации методов восстановления нервов, определение влияния различных факторов регенерации нерва, а также оценки потенциала конкретных нервных ингибиторов, чтобы помочь бороться с долгосрочным исходом синкинеза8,9,10,11. В то время как модели in vitro могут быть использованы для оценки некоторых характеристик про-рост или ингибирующих факторов, истинные трансляционные исследования по этому вопросу лучше всего осуществляется с помощью переводных моделей животных.
Решение о том, какую модель животных использовать может быть сложной задачей, так как исследователи использовали как крупных животных, таких как овцы и маленькие модели животных, таких как мыши12,13. В то время как большие модели животных предлагают идеальную анатомическую визуализацию, их использование требует специализированного оборудования и персонала, не всегда и нелегко доступного. Кроме того, результаты исследования для демонстрации эффекта могут быть весьма затратно-запретительными и потенциально не входят в осуществимую сферу действия многих научных центров. Таким образом, наиболее часто используется модель малого животного. Модель мыши может быть использована для оценки ряда исходов, связанных с хирургией лицевого нерва; однако, ограниченная длина нерва может ограничить способность ученого моделировать определенные закономерности, такие как травма большого разрыва14.
Таким образом, прототип крысы murine стал моделью рабочей лошадки, с помощью которой ученый может выполнять инновационные хирургические процедуры или использовать ингибирующие или про-факторы роста и оценить эффект по широкому кругу параметров исхода. Анатомия крысиного лицевого нерва предсказуемо и легко подходит в воспроизводимым образом. Его больший масштаб, по сравнению с моделью мыши, позволяет моделирование широкого спектра хирургических дефектов, начиная от простой трансрезекции до 5 мм зазоры15,16. Это дополнительно позволяет применять комплексные вмешательства на месте дефекта, в том числе актуальное размещение фактора, внутриневерные инъекции фактора, а также размещение изотранстатов или мостов17,,18,,19,20,21,22,23.
Послушный характер крысы, ее надежная анатомия, и его склонность к эффективной регенерации нерва позволяет для сбора многих показателей исхода в ответ на вышеупомянутые хирургические модели травмы24. Через крысиную модель, лицевой нерв ученый способен оценить электрофизиологические реакции на травмы, нервии и мышцы гистологических исходов через иммуногистохимии, функциональные результаты через отслеживание движения вибриссальной площадки и оценки закрытия глаз, и микро- и макроскопические изменения через флуоресцентные или конфокальная микроскопия, среди других,2911,,2822,23,25,,27.26 Таким образом, следующий протокол будет излагать хирургический подход к крысиной лицевого нерва и травмы моделей, которые могут быть вызваны.

<table><tbody><tr><td>1,8% изофлуран</td><td>VetOne</td><td>13985-030-40</td><td></td></tr><tr><td>11-0 нейлоновые микронити</td><td>AROSuture</td><td>TK-117038</td><td></td></tr><tr><td>4-0 моноакриловый шовный материал</td><td>VWR</td><td>75982-084</td><td></td></tr><tr><td>Бупренорфин SR</td><td>ZooPharm</td><td>MIF 900-006</td><td></td></tr><tr><td>Карпрофен</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>MFCD00079028</td><td></td></tr><tr><td>Chlorhexidine</td><td>VWR</td><td></td><td></td>IC19135805</tr><tr><td>Щипцы Jeweller</td><td>VWR</td><td>21909-458</td><td></td></tr><tr><td>Micro Weitlaner ретрактор</td><td>VWR</td><td>82030-146</td><td></td></tr><tr><td>Микроножницы</td><td>VWR</td><td>100492-348</td><td></td></tr><tr><td>Мини ножницы для тенотомии</td><td>VWR</td><td>89023-522</td><td></td></tr><tr><td>No 15 лезвие скальпеля</td><td>VWR</td><td>102097-834</td><td></td></tr><tr><td>Операционный микроскоп</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Вазелинный гель для глаз</td><td>Pharmaderm</td><td>B002LUWBEK</td><td></td></tr><tr><td>Стерильная вода</td><td>VWR</td><td>89125-834</td><td></td></tr><tr><td>Тканевый клей</td><td>Vetbond, 3M</td><td>NC9259532</td><td></td></tr><tr><td>Прокладка для провода воды</td><td>Aqua Relief System</td><td>ARS2000B</td><td></td></tr><tr><td>Бупивакаин</td><td></td><td></td><td>Применение в качестве местного анальгетика</td></tr></tbody></table>

Лицевая хирургия нерва в модели крыс для изучения аксоналинизм и регенерации

Facial Nerve Surgery in the Rat Model to Study Axonal Inhibition and Regeneration

Этот протокол описывает последовательные и воспроизводимые методы для изучения аксональной регенерации и торможения в модели травмы черепно-полихого черепно-лицкрысиного нерва. Лицевой нерв можно манипулировать по всей длине, от внутричерепного сегмента до вневременного хода. Есть три основных типа травмы нерва, используемых для экспериментального исследования регенеративных свойств: нервной давки, transection, и нервный разрыв. Диапазон возможных вмешательств огромен, включая хирургические манипуляции с нервом, доставку нейроактивных реагентов или клеток, а также центральные или конечные манипуляции. Преимущества этой модели для изучения регенерации нервов включают простоту, воспроизводимость, межвидовую консистенцию, надежные показатели выживаемости крысы и увеличенный анатомический размер по сравнению с моделями мурин. Его ограничения включают в себя более ограниченные генетические манипуляции по сравнению с моделью мыши и превосходной регенеративной способности крысы, так что лицевой нерв ученый должен тщательно оценить временные моменты для восстановления и следует ли переводить результаты на более высоких животных и человеческих исследований. Крысиная модель для повреждения лицевого нерва позволяет для функциональных, электрофизиологических и гистоморфометрических параметров для интерпретации и сравнения регенерации нерва. Таким образом, он может похвастаться огромным потенциалом для содействия пониманию и лечению разрушительных последствий травмы лицевого нерва у пациентов.

После первоначальной хирургической процедуры, Есть два основных типа исходных измерений: серийные измерения в живых животных и измерения, которые требуют жертвования животного. Примеры серийных измерений включают электрофизиологические анализы, такие как комплексное мышечное действие потенциал измерения30, оценки движения лицевой мышцы с помощью лазерной помощи или видеосъемки означает9, или даже повторяющиеся живые изображения отрастания ли...

Этот протокол описывает воспроизводимый подход к хирургии лицевого нерва в модели крысы, включая описания различных индуцирующих моделей травмы.

This protocol describes consistent and reproducible methods to study axonal regeneration and inhibition in a rat facial nerve injury model. The facial ...

Этот протокол может помочь ученым изучить результаты после травмы лицевого нерва и методы для улучшения регенерации по многим различным параметрам. Основным преимуществом этой техники является то, что анатомия крысы позволяет легко получить доступ к лицевому нерву, и его большой масштаб позволяет нам изучить все соответствующие модели травмы. Применение этого метода распространяется на реабилитацию пациентов после травмы лицевого нерва.В качестве регенеративного потенциала крыса обеспечивает воспроизводимую и краткую экспериментальную модель. И этот метод может обеспечить понимание хирургической и медицинской терапии для лицевого нерва парез или паралич. И это переводится на другие модели головы и шеи или других периферических нервов.Работа под микроскопом с помощью обеих рук может быть сложной задачей. Я рекомендую практиковать использование бинокулярной версии под микроскопом, прежде чем пытаться вскрытия лицевого нерва. После подтверждения отсутствия реакции на щепотку ноги, нанесите мазь на глаза крысы и побрить хирургическую область.Установить метод идентификации крыс и поместить рулон марли под шею. Дезинфицировать открытые кожи с тремя чередующихся хлоргексидина и 70% этанол скрабы и поместить крысу под стерео микроскопом. Манипулируйте ипсилатеральным ухом в передне-заднем направлении, чтобы определить естественную складывание послеоперационной кожи.Используйте лезвие номер 15, чтобы сделать разрез длиной от двух до трех миллиметров в послеоперационной складке. Планирование и размещение разреза являются наиболее важными шагами для обеспечения надежной идентификации лицевого нерва при минимизации размера раны. Тупо вскрыть через немедленно подкожной фасции и место микро-Weitlaner ретрактор для повышения воздействия тканей.Определите переднюю digastric мышцу по мере того как она перемещает в более низко-к-превосходном направлении к своей вставке вдоль основания черепа. Распространение мягко через мышечный живот вдоль точки вставки мышцы, чтобы выявить сухожилие передней digastric живота. Сухожилие будет отображаться как фильмивный белый процесс, исходящий из мышцы с твердой вставкой на основание черепа.После выявления передней дигострической мышцы и сухожилия, отрегулируйте ретрактор Weitlaner для дальнейшего втягивать мышечный живот. Открытой областью является трехмерное пространство, в котором находится основной ствол лицевого нерва. Рассекаете вдоль нерва в низшем направлении distally от выхода стиломастоида foramen.Чтобы вызвать давку травмы картины, использовать гладкой поверхности forceи ювелира твердо схватить и сжать нерв применения постоянного и воспроизводимого давления в течение 30 секунд, чтобы обеспечить соответствующую травму раздавить. Для простой трансекции, понять немедленное эпиневризии overlying нерва с тонкозубыми типсами, и использовать острые микросциссоры, чтобы чисто трансектировать нерв в нужной точке с одного разреза. Для модели разрыва нерва, используйте регулируемые calipers для того чтобы установить пожеланную длину зазора нерва нерва для того чтобы обеспечить подобные картины ушиба между животными и transect нерв как как раз продемонстрировано.После того, как экспериментальная травма была доставлена, орошать рану стерильным солевым раствором и высушить ткань стерильной марлей. перед закрытием разреза кожи в соответствии с институциональными руководящими принципами. Здесь показана живая визуализация основного ствола лицевого нерва с травмой раздавить примерно два-три миллиметра дистал к точке ветви первого PES у взрослой трансгенной крысы Thy1-GFP.Оценка постепенного возвращения флуоресценции в течение одной, двух, трех и четырех недель после травмы может быть использована в качестве маркера для мониторинга регенерации нервов у этих трансгенных животных. Гистоморфометрический анализ может быть использован для получения поперечных изображений маргинального мидибулярного деления, позволяющего количественно оценить аксональный диаметр, количество мусора, нервное волокно, процент нервных и плотность измерений. Важно часто корректировать размещение ретрактора по мере необходимости, чтобы убедиться, что соответствующие анатомические нервы видны при определении лицевого нерва.После этой процедуры соответствующие нервы и мышцы могут быть собраны для иммуногистохимического анализа для оценки степени регенерации по сравнению с другими экспериментальными группами. После его развития, этот метод проложил путь для исследователей в изучении функциональных результатов после травмы лицевого нерва. В частности, как подать в действие явление синкинеза.

facial-nerve-surgery-rat-model-to-study-axonal-inhibition

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Нейронауки

Это видео демонстрирует хирургический протокол на модели крысы, подробно описывая этапы от подготовки к анестезии до индукции повреждения лицевого нерва. Этот протокол полезен для изучения регенерации нервов и хирургических техник в медицинских исследованиях.

Индуцирование повреждения лицевого нерва у модели крысы

В этом видео демонстрируется индукция орофациальной нейропатической боли у крысы путем перевязки инфраорбитального нерва. Это приводит к повреждению нервов и воспалению, вызывая аномальную болевую сигнализацию и имитируя хронические болевые состояния, которые могут быть использованы для изучения анализа орофациальной боли.

Индуцирование орофациальной нейропатической боли у модели крысы с помощью перевязки инфраорбитального нерва

Источник: Deseure, K., et al. Хроническая констрикционная травма подглазничного нерва крысы (IoN-CCI) для изучения нейропатической боли тройничного нерва. J. Vis. Exp. (2015). В этом видео демонстрируется метод индуцирования нейропатической боли на модели крысы путем сужения подглазничного нерва. После обнажения подглазничного нерва и связывания лигатур для его сужения, иммунный ответ в месте повреждения увеличивает возбудимость соседних нейронов, которые передают болевые сигналы в мозг.

Индукция нейропатической боли у крысы путем сужения подглазничного нерва

Источник: Олмстед, Д. Н., et al., Аксотомия лицевого нерва у мышей: модель для изучения реакции мотонейронов на травму. J. Vis. Exp. (2015). В этом видео показана процедура сдавливания лицевого нерва у мыши, при которой тупое вскрытие через ключевые ориентиры обнажает ствол лицевого нерва в шиломалоидном отверстии. Затем щипцы используются для сжатия нервного ствола, вызывая повреждение аксонов и нарушая передачу нейронного сигнала.

Выполнение соксосящей аксотомии на лицевом нерве у модели мыши

Источник: Cheah, M., et al. Инъекция ганглия дорсального корешка и травма дробления дорсального корешка как модель сенсорной регенерации аксонов. J. Vis. Exp. (2017). В этом видео показана пошаговая процедура введения вирусной суспензии в ганглии дорсальных корешков (DRGs) и индуцирования контролируемого повреждения аксонов путем дробления дорсального корешка у крысы под наркозом. Протокол включает в себя воздействие DRG, доставку вирусного вектора, способствующего росту, для облегчения...

Моделирование регенерации сенсорных аксонов у крысы с помощью инъекции ганглия дорсального корешка и травмы дробления дорсального корешка

Обонятельная оболочечная клетки (ОИК) являются клетки нервного гребня, которые позволяют рост первичных обонятельных нейронов. Это специфическое свойство можно использовать для клеточной трансплантации. Мы представляем здесь модель клеточной трансплантации, основанный на использовании ОИК в гортани модели нерва травмы.

Трансплантация Обонятельная оболочечная клеток для оценки функционального восстановления после периферической нервной травмы

Мы представляем хирургический протокол, подробно описывающий, как выполнить разрезание или раздавливание аксотомии лицевого нерва у мыши. Аксотомия лицевого нерва может быть использована для изучения физиологической реакции на повреждение нерва и тестирования терапевтических методов.

Лицевого нерва аксотомии у мышей: модель для изучения двигательных нейронов ответ на повреждение

Этот протокол представляет использование инъекции ганглия дорсального корешка (DRG) с вирусным вектором и сопутствующей травмой дробления дорсального корешка у взрослой крысы в качестве модели для изучения сенсорной регенерации аксонов. Эта модель подходит для исследования использования генной терапии для стимулирования регенерации сенсорных аксонов.

Спинальный ганглий Injection и дорсальных корешков размозжение как модель для регенерации Сенсорное Axon

Здесь мы представляем протокол, который сочетает в себе электропорацию in vivo и денервацию мышцы, поднимающей длинный краниальный клапан (LAL). Эта процедура позволяет изучить потенциальную роль мышечных белков в регенерации нервно-мышечного синапса.

Комбинированная электропорация in vivo и кратковременная реиннервация скелетной мышцы Cranial levator auris longus

Этот протокол показывает, как ретроградно этикетке ганглиозных клеток сетчатки, и как впоследствии сделать оптический травмы сокрушить силы, чтобы проанализировать сетчатки выживания клеток ганглия и апоптоза. Это экспериментальная модель болезни для различных типов невропатия зрительного нерва, в том числе глаукомы.

Зрительный нерв размозжение мышиной моделью для изучения сетчатки выживания клеток ганглия

Изучите хирургию лицевого нерва в модели крыс для исследования аксонального повреждения и регенерации. Этот воспроизводимый протокол позволяет оценивать терапевтические подходы при парезе или параличе лицевого нерва.

Лицевая хирургия нерва в модели крыс для изучения аксоналинизм и регенерации

Больше видео