-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Использование En Face иммунофлуоресценции окрашивания для наблюдения сосудистых эндотелиальных кл...
Использование En Face иммунофлуоресценции окрашивания для наблюдения сосудистых эндотелиальных кл...
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Using En Face Immunofluorescence Staining to Observe Vascular Endothelial Cells Directly

Использование En Face иммунофлуоресценции окрашивания для наблюдения сосудистых эндотелиальных клеток непосредственно

Full Text
16,793 Views
06:09 min
August 20, 2019

DOI: 10.3791/59325-v

Chang Li*1,2, Zhu Hui Liu*1,2, Jia Wei Chen1,2, Xin Yi Shu1,2, Ying Shen1, Feng Hua Ding1, Rui Yan Zhang1, Wei Feng Shen1, Lin Lu1, Xiao Qun Wang1

1Department of Cardiology, Ruijin Hospital,Shanghai Jiao Tong University School of Medicine, 2Institute of Cardiovascular Diseases,Shanghai Jiao Tong University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol for immunofluorescence staining to directly observe endothelial cells of the mouse aorta. The technique is effective for analyzing the cellular and molecular phenotype of these cells under different fluid shear stress conditions, particularly in relation to atherosclerosis development.

Key Study Components

Research Area

  • Endothelial cell biology
  • Atherosclerosis research
  • Immunofluorescence techniques

Background

  • Importance of endothelial cells in vascular biology
  • Role of shear stress in endothelial function
  • Connection between flow patterns and atherosclerosis development

Methods Used

  • Immunofluorescence staining protocol
  • Mouse model (C57BL/6)
  • Confocal microscopy for imaging

Main Results

  • Direct assessment of endothelial cells using fluorescent markers
  • Increased VCAM-1 expression in disturbed flow areas
  • Clear distinction between endothelial and smooth muscle cell nuclei morphology

Conclusions

  • This study provides a reliable method for examining endothelial cell responses to hemodynamic forces.
  • Findings are significant for understanding vascular biology and the mechanisms underlying atherosclerosis.

Frequently Asked Questions

What is the significance of the endothelial cells in the aorta?
Endothelial cells play a critical role in maintaining vascular health and are involved in the pathophysiology of atherosclerosis.
How does fluid shear stress affect endothelial cells?
Fluid shear stress influences endothelial cell morphology and function, impacting their response to inflammation and atherosclerosis.
What advantages does immunofluorescence staining offer?
Immunofluorescence staining provides a highly detailed visualization of cell surface markers and allows for direct assessment of cellular conditions.
How does this method help in atherosclerosis research?
It enables researchers to study the effects of different hemodynamic environments on endothelial cell behavior and phenotypic changes linked to atherosclerosis.
What are the key steps in the staining protocol?
Key steps include proper perfusion, blocking, and staining with fluorescently labeled antibodies, followed by imaging under a confocal microscope.
Can this technique be applied to other vascular studies?
Yes, with appropriate modifications, it can be adapted for studying vascular permeability and interactions with macromolecules.

Здесь мы представляем протокол для иммунофлуоресценции окрашивания наблюдать эндотелиальных клеток аорты мыши непосредственно. Этот метод полезен при изучении клеточного и молекулярного фенотипа эндотелиальных клеток в различных структурах потока и в развитии атеросклероза.

Этот протокол помогает людям анализировать эндотелиальной морфологии клеток, и выражение молекул в регионах, под различными жидкости стрижки стресса. Основным преимуществом этого метода является то, что он обеспечивает прямую оценку сосудистых эндотелиальных клеток при различном стрессе стрижки жидкости. При выполнении этой процедуры ключевыми шагами являются использование свежеприготовленного параформальдегида и выполнение хорошей перфузии.

Начните эту процедуру с анестезии 12-недельной мыши C57BL/6, как описано в текстовом протоколе. Подтвердите правильную анестезию, аккуратно щипав хвост. Лента лапы мыши к стопке бумажных полотенец, с клейкой лентой.

Поддерживайте кожу мыши типсами и вырежьте кожу ножницами от живота до верхней части грудной клетки. Откройте брюшную полость, ниже грудной клетки, острыми ножницами. Поднимите грудину типсами и разрежьте диафрагму.

Затем отрежьте грудную клетку, чтобы разоблачить грудную полость. Отрежьте вена кавы чуть выше печени с ножницами. Давление пронизывает артериальное дерево в течение пяти минут, с предварительно охлажденным нормальным солевым раствором, содержащим 40 единиц на миллилитр гепарина, через левый желудочек, пока легкие и печень не побледнели.

Затем пролизавиться с предварительно охлажденным 4%paraformaldehyde в PBS в течение четырех минут. Удалить все мышцы, органы и жир, пока аорта подвергается. Поместите мышь под рассечение микроскопа.

Используйте тонкие типсы и пару тонких ножниц, чтобы разоблачить аорту четко под рассекающим микроскопом, и удалить соединительной ткани вдоль аорты, как можно более чисто. Рассекают грудную аорту от сердца до целиакии ствола с помощью тонких ножниц. Поместите аорту в шестициметровую клеточную культуру с помощью PBS.

Разрежьте аорту продольно, сначала вдоль меньшей кривой, а затем используйте микросцисоры, чтобы разрезать три ветви аортальной арки, включая инноту, левую общую сонную артерию, и левую подклавианскую артерию вдоль большей кривой до тех пор, пока не будет выполнен прямой сегмент. Permeabilize аорты с 1%polyoxyethylene октил фенил эфир, в PBS в течение 10 минут. Затем блокируйте аорту с 10%нормальной сывороткой козы в трис-буферном солевом растворе, содержащем 2,5%полисорбат 20 в течение одного часа при комнатной температуре, в 12 хорошо клеточной культуре пластины.

Далее инкубировать аорту в блокирующий буфер, содержащий пять граммов на миллилитр кролика анти-VCAM1, и пять граммов на миллилитр крысы анти-VE-кадхерин, на ночь при четырех градусах по Цельсию. После полоскания образца три раза с стиральным раствором, применять флуоресценции конъюгированных вторичных антител в течение одного часа при комнатной температуре, сохраняя в темном месте. Промыть еще три раза в стиральном растворе.

Counterstain аорты с DAPI в течение 10 минут, сохраняя в темном месте. Затем промыть окрашенные аорты три раза в стиральный раствор. Поместите аорту на крышку скольжения с люменальной поверхности вниз, и переместить его медленно, чтобы антифада монтажа раствор, который ранее был сброшен на крышку скольжения.

Аккуратно растянуть аорту, чтобы сохранить образец плоским. Инвертировать крышку скольжения и положить его на стеклянную горку. Позаботьтесь, чтобы избежать пузырьков воздуха между образцом и стеклом.

Изучите аорту с помощью лазерного сканирующего конфокального микроскопа. Анализ интенсивности цвета различных каналов из нужной области на изображениях en face, с помощью программного обеспечения Image-Pro Plus. En лица иммунофторесценции окрашивания изображения сосудистых эндотелиальных клеток из мыши аорты показаны.

En лицо иммунофлуоресценции сосудистой клеточной адгезии белка один, и выражение с VE-кадерин в качестве эндотелиального маркера, показаны при различных моделей потока из разных областей мыши аорты. DAPI был также counterstained, чтобы показать ядра клеток для лучшей визуализации. При просмотре стеков под микроскопом эндотелиальные и гладкие мышечные клетки легко отличить по морфологии ядер клеток.

Ядра эндотелиальных клеток имеют овальную форму и больше, чем ядра клеток в форме шпинделя. Выражение ВКАМ-1 было более обильным в регионах с нарушенным потоком, при меньшей кривизны арки аорты, по сравнению с регионами под устойчивым потоком, при большей кривизны арки аорты и на грудной аорте. Здесь области меньшей кривизны аорты мыши обозначены как области d-потока, и большая кривизна и грудной клетки.

При правильной модификации этот метод может быть также применен к анализу проницаемости сосудов, а также к положению макромолекул в эндотелиальной инима клетке.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биология Выпуск 150 En лицо иммунофлуоресценция аорта эндотелиальной морфологии на месте атеросклероз

Related Videos

Изучение актинового цитоскелета в клетках эндотелия Живая выражая GFP-актин

08:37

Изучение актинового цитоскелета в клетках эндотелия Живая выражая GFP-актин

Related Videos

27.7K Views

Анализ цитоскелета и организации фокальной адгезии: иммунофлуоресцентный метод изучения клеточной адгезии и распространения на субстратах

03:25

Анализ цитоскелета и организации фокальной адгезии: иммунофлуоресцентный метод изучения клеточной адгезии и распространения на субстратах

Related Videos

2.2K Views

Иммунофлуоресцентное окрашивание инфицированной фиброваскулярной ткани пациента, полученной от геля

04:31

Иммунофлуоресцентное окрашивание инфицированной фиброваскулярной ткани пациента, полученной от геля

Related Videos

561 Views

Флуоресцентная локализация белков плотного соединения и стрессовых волокон в эндотелиальных клетках

04:15

Флуоресцентная локализация белков плотного соединения и стрессовых волокон в эндотелиальных клетках

Related Videos

593 Views

Всего горе иммунофлуоресцентного окрашивания новорожденных Retina мыши по расследованию ангиогенеза В естественных условиях

08:47

Всего горе иммунофлуоресцентного окрашивания новорожденных Retina мыши по расследованию ангиогенеза В естественных условиях

Related Videos

47.2K Views

В пробирке методом наблюдать Е-селектин-опосредованных взаимодействий между простаты циркулирующих опухолевых клеток, взятых от пациентов и эндотелиальных клетках человека

11:56

В пробирке методом наблюдать Е-селектин-опосредованных взаимодействий между простаты циркулирующих опухолевых клеток, взятых от пациентов и эндотелиальных клетках человека

Related Videos

9.4K Views

В режиме реального времени изображений эндотелиальных межклеточных соединений Во нейтрофилов Трансмиграция в физиологических Flow

11:26

В режиме реального времени изображений эндотелиальных межклеточных соединений Во нейтрофилов Трансмиграция в физиологических Flow

Related Videos

20K Views

En Face Detection оксида азота и супероксид в эндотелиальный слой малонарушенных артериях

08:58

En Face Detection оксида азота и супероксид в эндотелиальный слой малонарушенных артериях

Related Videos

10K Views

В Vivo Изучение человеческого взаимодействия Эндотелиальная-перицитов Использование гелевой матрицы штепсельной вилки пробирного мыши

08:16

В Vivo Изучение человеческого взаимодействия Эндотелиальная-перицитов Использование гелевой матрицы штепсельной вилки пробирного мыши

Related Videos

10.1K Views

Прижизненной микроскопии опухольассоциированных сосудистую использования передовых спинной складки окно камеры на трансгенные флуоресцентных мышей

08:52

Прижизненной микроскопии опухольассоциированных сосудистую использования передовых спинной складки окно камеры на трансгенные флуоресцентных мышей

Related Videos

14.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code