-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Cancer Research
Создание желудка рака пациента полученных Ксенотрансплантат Модели и первичные линии клеток
Создание желудка рака пациента полученных Ксенотрансплантат Модели и первичные линии клеток
JoVE Journal
Cancer Research
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Cancer Research
Establishment of Gastric Cancer Patient-derived Xenograft Models and Primary Cell Lines

Создание желудка рака пациента полученных Ксенотрансплантат Модели и первичные линии клеток

Full Text
10,689 Views
08:42 min
July 19, 2019

DOI: 10.3791/59871-v

Jia-huan Lu*1, Yun Wang*1, Qi Meng*1, Zhao-lei Zeng1

1State Key Laboratory of Oncology in South China, Collaborative Innovation Center for Cancer Medicine,Sun Yat-sen University Cancer Center

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Текущий протокол описывает методы для создания пациента полученных ксенотрансплантата (PDX) модели и первичных линий раковых клеток из хирургических образцов рака желудка. Методы являются полезным инструментом для разработки лекарственных средств и исследований биологии рака.

Модели ксенотрансплантата, полученные пациентом, и линии первичных клеток становятся неотъемлемой частью разработки лекарственных препаратов, а также инициирования и прогрессирования исследований в области биологии опухолей. Модели ксенотрансплантата, полученные пациентом, сохраняют гистологический вид раковых клеток, сохраняют внутриопухолевую неоднородность и лучше отражают соответствующие человеческие компоненты микроокноронности опухоли. Его модели для более точных представлений рака человека, то традиционные линии раковых клеток и имеют потенциал для улучшения доклинковой оценки новых противораковых методов лечения.

Кроме того, эти модели могут быть полезны при сравнении молекулярных характеристик или опухолевых подписей между различными подгруппами онкологических больных. NSG мышей рекомендуется в качестве иммунодефицитной модели мыши. Из-за тяжелого иммунодефицита мышей, стерильность должна поддерживаться во всех экспериментах.

В стерильных условиях используйте типсы и ножницы, чтобы тщательно вскрыть опухолевые ткани и обрезать их на несколько мелких кусочков. После анестезии мыши используйте стерильные ножницы, чтобы сделать разрез на один сантиметр на обоих спинных флангах. Используйте стерильные типсы, чтобы нарушить подкожной ткани.

Затем зарезать кусок опухолевой ткани, и поместить его в глубокий участок. Закройте область имплантата подкожным швом хирургическими швами. Стерилизовать рану йодом.

После этого аккуратно поместите мышей в пустую клетку, сохраняя при этом стерна лежа. Обратите пристальное внимание на мышей, как они должны проснуться и начать ходить примерно через три-четыре минуты. Поместите мышей, перенес которые перенесли операцию в новой клетке, отделенной от тех, кто не подвергается операции.

Оцените размер опухоли путем пальпации места имплантации и измеряйте их с помощью калипера Vernier два раза в неделю. После усыплять мышей, используйте стерильные типсы и ножницы, чтобы медленно изолировать опухоль от мышей. Вымойте опухолевые ткани в DPBS в 10-сантиметровой тарелке.

Вы force и ножницы, чтобы вскрыть и удалить некротические области, жировой ткани, сгустки крови и соединительной ткани. Затем используйте форму, чтобы сократить опухолевые ткани до максимальной толщины одного миллиметра. Вымойте ломтики опухоли с DPBS в 10 сантиметров блюдо.

Чтобы начать процесс витрификации, используйте типсы для передачи ломтиков в трубку V1 и инкубировать при четырех градусах по Цельсию в течение четырех минут. Ролл и инвертировать трубку кратко и инкубировать при четырех градусах по Цельсию в течение еще четырех минут. Затем налейте раствор V1 и нарежьте в 10-сантиметровую тарелку и используйте типсы для переноса ломтиков в трубку V2. Инкубировать при четырех градусах по Цельсию в течение четырех минут.

Ролл и инвертировать трубку кратко и инкубировать его при четырех градусах по Цельсию в течение еще четырех минут. После этого налейте раствор V2 и ломтики в 10-сантиметровую тарелку. Перенесите ломтики в трубку V3 и инкубировать при четырех градусах по Цельсию в течение пяти минут.

Ролл и инвертировать трубку кратко и инкубировать при четырех градусах по Цельсию в течение еще пяти минут. Убедитесь, что все ломтики опускаются на дно трубки. Если несколько ломтиков остаются плавающими, рулон и инвертировать трубку кратко и инкубировать при четырех градусах по Цельсию, пока все ломтики раковина полностью.

Затем налейте раствор V3 и нарежьте в 10-сантиметровую тарелку. Вырезать держатели ткани до надлежащей длины и поместить их на стерильную марлю. Перенесите ломтики на держатели.

Оберните держатели марлей. Используя типсы, поместите держатели в жидкий азот и дайте им инкубировать в течение пяти минут. После этого наклеить криогенные флаконы с информацией о тканях.

Перенесите держатели с ломтиками тканей во флаконы, которые будут храниться в жидком азоте. Во-первых, переутомить образцы рака желудка из повторно отобранных образцов или собранных тканей PDX. Поместите ткани на лед и перенесите их в 10-сантиметровое стерильное культурное блюдо.

Используйте типсы и ножницы для удаления некротических областей, жировой ткани, сгустков крови и соединительной ткани. Вымойте опухолевые ткани один раз с DPBS содержащие пенициллин и стрептомицин в 10 сантиметров блюдо. Затем разрежьте опухоль на кусочки на крышке блюда.

Максимальная толщина каждого куска должна быть один миллиметр. Перенесите кусочки в 50-миллилитровую центрифугу, содержащую семь миллилитров коллагеназы типа 1 и трипсина. Vortex смесь кратко.

Инкубировать в водяной бане при 37 градусах по Цельсию в течение 30 до 40 минут, убедившись, что вихрь смеси каждые пять минут. После этого добавьте равный объем rpMI-1640 среды, дополненной 10%FBS и вихрем смеси тщательно. Перенесите эту смесь в новую 50-миллилитровую центрифугу путем медленной фильтрации через 40-миллиметровый фильтр.

Центрифугировать фильтраты со скоростью от 113 до 163 раз г в течение пяти-семи минут при комнатной температуре. Аккуратно удалите этот супернатант. Вымойте гранулы с пятью миллилитров PBS и тщательно удалить супернатант.

Если гранулы красные, он содержит эритроциты. Аккуратно повторно подперст гранулы с 500 микролитров буфера лиза красных кровяных телец и инкубировать при комнатной температуре в течение пяти минут. Затем добавьте пять миллилитров PBS.

Центрифуга на скорости от 113 до 163 раз г в течение пяти-семи минут при комнатной температуре. Аккуратно удалите супернатант и повторно нанесите гранулы со средой культуры и перенесите смесь в стерильное 10-сантиметровое блюдо. Инкубировать культуру на 37 градусов по Цельсию с 5%углекислого газа, убедившись, что заменить среды с сывороткой, содержащей среды каждые два-три дня.

В этом исследовании, рак желудка PDX модели и первичных клеточных линий установлены. Опухоли первого поколения, как видно, растут медленнее, чем в более поздних поколениях, принимая три недели или больше, чтобы достичь соответствующего размера. Успешность формирования подкожной опухоли первого поколения составляет более 80%Идентификация раковых клеток из моделей PDX подтверждается моделями PDX путем окрашивания H и E.

Успешное образование опухоли из криоконсервированных опухолевых тканей, как видно, составляет примерно 95%Опухолевые клетки могут быть легко распознаются различиями в морфологии. Первичные клетки под микроскопом самостоятельно аутентичены двумя патологоанатомами. Для дальнейшего подтверждения, Н И Е окрашивание используется для наблюдения морфологии раковых клеток после фиксации.

Скорость успешной изоляции первичных клеточных линий составляет около 40%Эти модели, как было показано, прогностические клинических исходов и используются для доклинической оценки наркотиков маркерной идентификации, биологических исследований и персонализированных стратегий медицины.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Исследования рака Выпуск 149 первичная линия опухолевых клеток ксенотрансплантат пациента рак желудка неоднородность терапевтическая стратегия криоконсервация тканей

Related Videos

Маркировку рака молочной железы на пациента получены ксенотрансплантатов с прослеживаемы Репортеров для опухолевого роста и метастазирования исследований

09:53

Маркировку рака молочной железы на пациента получены ксенотрансплантатов с прослеживаемы Репортеров для опухолевого роста и метастазирования исследований

Related Videos

12.7K Views

Мыши и человека, полученных первичных желудка эпителиальных монослойном культивировании для изучения регенерации

11:48

Мыши и человека, полученных первичных желудка эпителиальных монослойном культивировании для изучения регенерации

Related Videos

10.9K Views

Пациент полученных ортотопические ксенотрансплантат Модели для человека Уротелиальной карциномы клеток и колоректального рака опухоли роста и спонтанного метастаза

09:28

Пациент полученных ортотопические ксенотрансплантат Модели для человека Уротелиальной карциномы клеток и колоректального рака опухоли роста и спонтанного метастаза

Related Videos

10.8K Views

Тестирование целевых методов лечения рака с использованием структурных анализа изменения ДНК и пациентов, полученных Xenografts

10:27

Тестирование целевых методов лечения рака с использованием структурных анализа изменения ДНК и пациентов, полученных Xenografts

Related Videos

7.8K Views

Создание соответствующих пар моделей IN vivo/In vitro, полученных от пациента, органоидов PDX и PDX для исследований фармакологии рака

04:49

Создание соответствующих пар моделей IN vivo/In vitro, полученных от пациента, органоидов PDX и PDX для исследований фармакологии рака

Related Videos

7K Views

Создание и использование моделей ксенотрансплантатов, полученных от пациентов, для метастазирования в центральную нервную систему

06:52

Создание и использование моделей ксенотрансплантатов, полученных от пациентов, для метастазирования в центральную нервную систему

Related Videos

2.8K Views

Создание и характеристика моделей ксенотрансплантатов анапластической карциномы щитовидной железы и плоскоклеточного рака головы и шеи

06:08

Создание и характеристика моделей ксенотрансплантатов анапластической карциномы щитовидной железы и плоскоклеточного рака головы и шеи

Related Videos

2.3K Views

Ортотопическая имплантация раковых клеток, полученных от пациентов, у мышей повторяет прогрессирующий колоректальный рак

06:49

Ортотопическая имплантация раковых клеток, полученных от пациентов, у мышей повторяет прогрессирующий колоректальный рак

Related Videos

2.7K Views

Установление и характеристика органоидов желудка, полученных от пациентов, из биопсии доброкачественного тела желудка и антрального эпителия

08:45

Установление и характеристика органоидов желудка, полученных от пациентов, из биопсии доброкачественного тела желудка и антрального эпителия

Related Videos

2K Views

Создание основной культуры саркомы мягких тканей, пациент производные

07:55

Создание основной культуры саркомы мягких тканей, пациент производные

Related Videos

14.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code