-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Genetics
Опухолевая сфера произвлечения и лечения из первичных опухолевых клеток, изолированных от мыши Rh...
Опухолевая сфера произвлечения и лечения из первичных опухолевых клеток, изолированных от мыши Rh...
JoVE Journal
Genetics
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Genetics
Tumorsphere Derivation and Treatment from Primary Tumor Cells Isolated from Mouse Rhabdomyosarcomas

Опухолевая сфера произвлечения и лечения из первичных опухолевых клеток, изолированных от мыши Rhabdomyosarcomas

Full Text
7,609 Views
09:21 min
September 13, 2019

DOI: 10.3791/59897-v

Francesca Boscolo Sesillo1,2,3, Alessandra Sacco2

1Graduate School of Biomedical Sciences,Sanford Burnham Prebys Medical Discovery Institute, 2Development, Aging and Regeneration Program,Sanford Burnham Prebys Medical Discovery Institute, 3Department of Obstetrics, Gynecology, and Reproductive Sciences, Division of Female Pelvic Medicine and Reconstructive Surgery,University California San Diego

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Этот протокол описывает воспроизводимый метод для изоляции мышей рабдомиосаркомы первичных клеток, формирования опухолевой сферы и лечения, и аллотрансплантата трансплантации, начиная с опухолевых культур.

Рабдомиосаркома является редкой формой сарком мягких тканей, характеризующейся гистологически морфологией тканей и экспрессией миогенных маркеров. Однако, учитывая существование различных подтипов этих опухолей и неоднородность стимулов, способствующих его образованию, идентификация клетки происхождения была очень сложной задачей. Здесь мы описываем воспроизводимые и надежные методы идентификации клетки происхождения рабдомиосарком, начиная со свежеурожайных опухолевых тканей мышей, и этот анализ является анализом формирования опухолевой системы.

Основными преимуществами анализа формирования опухолевой системы является то, что она опирается на клеточные свойства, которые, как известно, присутствуют в опухолевых клетках, а также может быть использована для расширения и обогащения специфической клеточной популяции. Кроме того, его сфероидная структура имитирует опухоль окружающей среды, таким образом, они могут быть использованы в качестве наркотиков скрининга исследований. Этот метод имеет потенциал для применения к другим типа опухолей, поскольку он не требует предварительного знания молекулярных маркеров, но это может потребовать оптимизации культурных условий.

Tumorsphere может занять некоторое время, чтобы сформировать, особенно при попытке определить редкую популяцию клеток в вашей опухоли. Таким образом, не предлагается смотреть на вашу субкультуру пластины каждый день, так как это может негативно повлиять на результаты ваших экспериментов. Начните с разогрева 10-сантиметровой пластины с пятью миллилитров изоляционных средств массовой информации в инкубаторе при 37 градусах по Цельсию.

Взвесь от 500 до 1000 миллиграммов опухолевой ткани и поместите ее в тарелку. Принесите пластину с опухолевой тканью в стерильный вытяжку культуры и фарш его с лезвием бритвы. Для оптимального пищеварения убедитесь, что размеры фарша являются однородными.

Перенесите рубленую ткань и средства изоляции клеток в 15-миллилитровую центрифугу. Вымойте пластину еще четыре миллилитров средств массовой информации и добавить, что в трубку. Добавьте 700 единиц на миллилитр раствора коллагеназы в трубку и инкубировать его в трясущимся водяной бане при 37 градусах по Цельсию в течение 1 1/2 часов.

После инкубации, спина вниз ткани в 300 раз г в течение пяти минут при комнатной температуре. Аспирировать супернатант, не нарушая гранулы, а затем повторно гранулы в 10 миллилитров второго раствора пищеварения и инкубировать в тряске водяной бане в течение еще 30 минут. После второго пищеварения, пипетка подвески клетки вверх и вниз и передать его через 70-микрометровый нейлоновый фильтр на 50-миллилитровой центрифуги трубки.

Затем промыть фильтр с 10 миллилитров клеточной изоляции средств массовой информации и спина вниз ткани в 300 раз г в течение пяти минут. Аспирировать супернатант и повторно помыть гранулы в 20 миллилитров опухолевых клеток. Перенесите подвеску на 15-сантиметровую культурную пластину и поместите клетки в инкубатор по Цельсию на 37 градусов по Цельсию на ночь.

На следующий день, изменить средства массовой информации для удаления мусора и мертвых клеток, которые могут негативно повлиять на выживание клеток. На данный момент, оценить слияние клеток и позволить клеткам расти в инкубаторе, пока он не достигнет 90%Мониторинг клеток каждый день и изменить средства массовой информации каждые два дня. Для получения опухолевых культур используйте клетки в Passage P1 или P2, чтобы избежать отбора клеток через несколько проходов.

Вымойте клеточное блюдо с PBS, а затем покрыть их раствором отряда. Поместите их в инкубатор на 5-10 минут, а затем подтвердите отрешенность, глядя на пластину под ярким микроскопом. После того, как клетки отсоединились, добавить опухолевые клетки к пластине и передать клеточной подвески в центрифугу трубки.

Спин клетки вниз на 300 раз г в течение пяти минут, удалить супернатант, и повторного перерасхода клеток в опухолевой сети. После повторного перерасхода клеток, подсчитайте их с помощью Trypan blue и вычислите концентрацию клеток. Плита надлежащее количество клеток в 96-ну низкой крепления пластины и поместить клетки в инкубатор до конца эксперимента, заботясь, чтобы не беспокоить пластины, если пополнение средств массовой информации.

После завершения эксперимента, определить tumorspheres вручную под ярким микроскопом или с помощью программного обеспечения Celigo. Количество и размер опухолевыхсфер могут быть оценены в результате этого анализа. Для подготовки опухолевыхсфер для трансплантации алотрансплантата, объединить все опухолевыесферы, полученные из определенного типа клеток или лечения.

Центрифуга опухолевыхсфер и тщательно удалить супернатант с помощью одномиллиметровой пипетки следуют 200-микролитр пипетки, а затем мыть их с 10 миллилитров стерильных PBS. Спин tumorspheres вниз снова и аспирировать PBS. Добавьте 500 микролитров в один миллилитр клеточного раствора отряда поверх гранул опухолевой сферы и инкубировать клетки в тряске водяной бани при 37 градусах по Цельсию.

Проверяйте прогрессирование пищеварения каждые 10 минут. Весь процесс занимает до 30 минут. Если переваривания опухолевой сферы в трясущимся водяной бане недостаточно для получения одноклеточного раствора, то предлагается механическое нарушение через трубы вверх и вниз.

Отметим, что после вращения опухолевыхсфер не образуются стабильные гранулы, поэтому аспирировать супернатант следует осторожно с помощью одноми миллилитровой пипетки и 200-микролитровых пипеток. Как только одноклеточный раствор получен, добавьте объем средств массовой информации опухолевых клеток и вращайте его вниз при 300 раз g в течение пяти минут при 4 градусах Цельсия. После этой центрифугации все последующие шаги должны быть выполнены на льду.

Resuspend клетки в холодных средствах клетки тумора и подсчитывают живые клетки используя исключение голубого Trypan. Определите правильное количество клеток для алотрансплантата и разбавьте его в 50 микролитров холодного опухолевых клеток. Поместите наконечник пипетки в холодных опухолевых клеточных сми, чтобы охладить его, а затем использовать его, чтобы взять 50 микролитров холодного раствора ECM и добавить его в трубку с клетками, убедившись, что не удалить трубку ECM из льда во время этого процесса.

Поддерживайте клетки на льду до трансплантации и поместите на лед ограниченный 0,5-миллилитровый инсулиновый шприц с 29-го калибра иглы. После подтверждения того, что мышь была надлежащим образом анестезирована, побрить правую сторону животного, аспирировать клеточный раствор в охлажденный шприц, и вводить клетки подкожно в бритой области. Если инъекция выполняется правильно, под кожей сформируются видимые шишки.

Этот протокол может быть использован для надежной формы опухолевыхсфер для идентификации редких популяций клеток, которые отвечают за развитие саркомы мягких тканей. Фундаментальной частью этого анализа является дискриминация между опухолевыми и клеточными кластерами, которые демонстрируют явные морфологические различия. Чтобы определить оптимальную концентрацию, при которой белок интереса вызывает воздействие на опухолевые клетки, необходимо оценить уровень экспрессии целей белка ниже по течению.

Три из проверенных генов показали дозозависимый ответ на рекомбинантное лечение белка, а один нет. Для установления эффективного протокола были проанализированы эффекты трансфекции на врожденные опухолевые клетки; было протестировано два различных количества реагента и оценена эффективность с помощью плазмиды GFP-репортера. Снижение количества реагентов привело к повышению эффективности трансфекции.

Для выполнения трансфекции на ячейках подвески должен был быть внедрен двухшаговой протокол. Трансфекция была проведена на адепт-клеток и 24 часов спустя они были отделены и потрошены в подвеске; после семи дней, контролируемые опухолевыесферы выражали GFP. После получения, лечения и трансплантации опухолей можно сравнить эффект этого различного лечения при росте опухоли in vivo.

Эти методы позволят ученым ответить на все еще стоящие вопросы клетки происхождения рабдомиосарком и в то же время засовытить основу для скрининга наркотиков.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Генетика Выпуск 151 опухолевые сферы рабдомиосаркома скелетная мышца первичные клетки рекомбинантная белковая обработка плазмидная трансфекция

Related Videos

Изоляция, обогащению и техническому обслуживанию ячеек медуллобластомой Стволовой

06:32

Изоляция, обогащению и техническому обслуживанию ячеек медуллобластомой Стволовой

Related Videos

16.8K Views

Создание и распространение опухолей человека Ретинобластома в иммунодефицитных мышей

07:55

Создание и распространение опухолей человека Ретинобластома в иммунодефицитных мышей

Related Videos

12.2K Views

Выделение и расширения человеческих клеток глиобластомы мозга Опухоль Использование Neurosphere Пробирной

09:24

Выделение и расширения человеческих клеток глиобластомы мозга Опухоль Использование Neurosphere Пробирной

Related Videos

30.5K Views

Создание рака стволовых клеточных культур от человека обычного остеосаркомы

09:25

Создание рака стволовых клеточных культур от человека обычного остеосаркомы

Related Videos

19.7K Views

Создание основной культуры саркомы мягких тканей, пациент производные

07:55

Создание основной культуры саркомы мягких тканей, пациент производные

Related Videos

15.2K Views

Изоляция и характеристика опухолевых клеток от саркомы пациента полученных Xenografts

07:18

Изоляция и характеристика опухолевых клеток от саркомы пациента полученных Xenografts

Related Videos

7.4K Views

Получение Рак стволовых клеток Сферы от гинекологических и опухолей рака молочной железы

07:01

Получение Рак стволовых клеток Сферы от гинекологических и опухолей рака молочной железы

Related Videos

10.8K Views

Мышь Модель неполно резекированных мягкая ткань саркома для тестирования (Neo) адъювантной терапии

07:15

Мышь Модель неполно резекированных мягкая ткань саркома для тестирования (Neo) адъювантной терапии

Related Videos

10.3K Views

Моделирование первичных опухолей костей и метастазов в кости с имплантацией солидного опухолевого трансплантата в кость

06:53

Моделирование первичных опухолей костей и метастазов в кости с имплантацией солидного опухолевого трансплантата в кость

Related Videos

3.3K Views

Гипертермия, генерируемая высокоинтенсивным сфокусированным ультразвуком под магнитно-резонансным контролем: возможный метод лечения на модели рабдомиосаркомы у мышей

13:41

Гипертермия, генерируемая высокоинтенсивным сфокусированным ультразвуком под магнитно-резонансным контролем: возможный метод лечения на модели рабдомиосаркомы у мышей

Related Videos

2.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code