4 октября 2019 г.
Описан описано здесь протокол для характеристики модулей биологически синергетических miRNAs и их сборки в короткие трансгены, что позволяет одновременно переэкспрессии для применения генной терапии.
Этот протокол позволяет одновременно модулировать многие микро РНК в эукариотических клетках и основан на очень простом и гибком методе, который сводит к минимуму шаги молекулярного клонирования. Этот метод имеет последствия для изучения микро РНК функциональных взаимодействий in vitro, но что более важно, он обеспечивает платформу для более эффективного использования микро РНК в терапии. Мы в основном разработали и использовали его в контексте рака мозга, но это относится к любым заболеваниям, где многочисленные изменения экспрессии генов участвуют.
Мы протестировали наши искусственные транс-гены в других моделях, таких как линии рака молочной железы и щитовидной железы, показывающие воспроизводимость этого метода. Базовые знания биоинформатики и биологии микроРНК полезны для этого протокола, но не необходимы. Подход к биоинформатике важен для определения соответствующих комбинаций микроРНК и TRK-11, в то время как знакомство с микро-РНК обработки measurably важно понять, как эти различные микро РНК могут быть собраны в искусственные кластеры ДНК, которые могут быть успешно обработаны после стабильной для конкретных клеток.
Чтобы покрыть блюдо, сначала растворите поли-D-лизин в воде в концентрации 100 микрограмм на миллилитр. Налейте раствор в блюдо в количестве одного миллилитра раствора на 25 квадратных сантиметров поверхности. Закружить блюдо, чтобы убедиться в охвате всего блюда.
Через шесть часов аспирировать раствор поли-Д-лизина и промыть дважды с помощью PBS. Плита человеческих нервных стволовых клеток в количестве 100 000 клеток на пять миллилитров среды, либо в среде стволовых клеток, астроцитарной дифференциации среды или нейрональной дифференциации среды. После покрытия клеток поместите блюдо в инкубатор при 37 градусах по Цельсию и пяти процентах углекислого газа в течение одной недели и приступайте к проведению анализа экспрессии микроРНК в соответствии с рукописью.
Для культуры GBM-34 глиобластома стволовых клеток, начать с одного раза десять пятых клеток и пять миллилитров нейробазальной среды в 25 квадратных сантиметров низкой колбы крепления. Поместите колбу в инкубатор при 37 градусах Цельсия и пятипроцентной двуокиси углерода. Через 48 часов после покрытия, добавить удвоение концентрации ДНК алкилативного агента темозоломида каждые семь дней.
Начните с добавления пяти микромолейных ТМЗ, дополненных пятью миллилитров среды в течение пяти дней. Через пять дней удалите среду и замените свежей средой без темозоломида, чтобы выжившие клетки могли восстановиться. Через 48 часов добавьте 10 микромоляров темозоломида и инкубировать еще на пять дней.
Повторите удвоение лечения темозоломидом до тех пор, пока не будет достигнута концентрация не менее 100 микромолеев и клетки не станут устойчивыми к препарату. После индукции резистентности, лежат клетки, использующие 1 миллилитр реагента лиза. Извлекайте общую РНК и анализируйте экспрессию конкретных микроРНК в соответствии с рукописью.
Для получения прогнозируемого целевого показателя каждой микроРНК, ранее определенной, используйте инструменты микроРНК, ориентированные на прогнозирование. С первой страницы TargetScan выберите микро РНК, представляющие интерес, из заранее заселенного меню drop down. Нажмите кнопку отправки.
Загрузите полученный список целей в качестве электронной таблицы по ссылке таблицы загрузки. Чтобы уменьшить вероятность ложноположить прогнозы, включите только цели в столбец сохраненных сайтов и анализ ниже по течению. Дополнительные программы микро-РНК прогнозирования получить дополнительную строгость и включают только цели, которые являются общими для всех алгоритмов.
Затем откройте ToppGene Suite 20. Для оценки обогащения путей, которые являются общими для каждой микро РНК, вставьте список целей, полученных в окне набора генов обучения. Нажмите на символ HGNC в качестве типа входа.
Нажмите представить и начать. Программа предоставляет таблицу вывода, показывающую наиболее значимые категории GO для введенного списка генов. Чтобы, наконец, установить вклад каждой микроРНК в регулирование общего пути или клеточного процесса, откройте функцию венн-диаграммы, представленную на веб-сайте Bioinformatics and Evolutionary Genomics.
Проверьте каждый полученный тарем против полного списка генов, участвующих в конкретном клеточном процессе. Если целевые РНК-мессенджеры для каждого микроРНК, представляющие интерес, находятся в соответствующих окнах, загрузите копию-вставьте список. Назовите каждый список с уникальным идентификатором.
Нажмите представить. Программа обеспечивает визуальный выход венн-диаграммы с числом генов в каждом секторе, а также полный список РНК-мессенджеров для каждого подмножества и пересечения комбинаций. Чтобы сгруппировать выбранные микроРНК в функциональный транс-ген, получите трансгенную эшафот на основе кластерного локуса miR-17-92.
Получить нуклеотидную последовательность из ансамблевого браузера генома. Выберите приблизительно 800 базовых парных основных последовательностей, охватывающих все шесть закодированных микро-РНК шпильки локуса и по крайней мере 200 нуклеотидных фланговых последовательностей как вверх по течению, так и вниз по течению от основной последовательности. Вставьте последовательность в любую программу редактирования слов.
Определите последовательность каждого из шести родных волос булавки, извлекая их в miR базы. Отметь каждую из этих последовательностей в пределах ранее идентифицированной последовательности ядра. Любые последовательности между каждой шпильки представляют последовательности спейсера.
Далее, получить шпильки последовательности микро РНК, предназначенных для чрезмерно выраженного в транс-гене из miR базы. Внимательно обратите внимание на конкретные нуклеотиды, которые находятся на участках расщепления микропроцессоров. Удалите родные последовательности шпильки из основной последовательности, за исключением трех-пяти нуклеотидов как на пяти, так и на вас концах каждой шпильки, которая будет служить в качестве приемора для новых шпильки.
Вставьте волосы последовательности желаемых микро РНК для замены ранее удаленных шпильки. Добавьте желаемые последовательности ограничений в обеих фланговых областях транс-гена, чтобы облегчить суб клонирование в векторы доставки по выбору. Убедитесь, что выбранные последовательности ограничений не присутствуют в самой последовательности.
Чтобы проверить двухмерную структуру транс-гена, скопировать полную трансгенную последовательность в программу прогнозирования структуры РНК RNA Webfold. Выберите стандартные настройки программы и нажмите продолжить. Проанализируйте графический выход, особенно на наличие четко определенных шпильки в присутствии двойных мель стволовых структур, которые, по крайней мере 11 нуклеотидов проксимальных микропроцессоров расщепления сайта.
Кроме того, ищите отсутствие точек ветвки в последовательности шпильки. На данный момент транс-ген готов к синтезу генов и клонирован в нужные векторы доставки. Этот метод позволил характеристики модуля из трех микро РНК, которые последовательно вниз регулируется в опухолях головного мозга, которые совместно выражены конкретно во время нейронной дифференциации.
Были подтверждены модели совместного выражения микро-модулей РНК во время генотоксического стресса, что свидетельствует о сильной синергетической активности между этими тремя микроРНК. Разработанный транс-ген может одновременно повторить экспрессию трех микроРНК в клетках глиобластомы, как в пробирке, так и в vivo, со значительным вмешательством в биологию опухоли и перспективной переводческой применимостью. Кроме того, трансгенный кластер был также функциональным в модели рака молочной железы.
Важнейшими требованиями этого протокола являются поддержание первоначального размера расщепления процессора в транс-гене. И убедитесь, что структура стволовой петли химерной микро РНК шпильки сохраняется. С помощью этого метода мы можем сконцентрировать несколько биологически активных генов микроРНК в очень короткие последовательности ДНК, которые могут быть буквально вписаны в любые векторы доставки для использования генной терапии.
Этот метод идеально подходит для изучения функционального взаимодействия между различными микро РНК и вмешиваться в сложные многофакторные клеточные пути, которые в противном случае потребует нескольких комбинаций наркотиков.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Данный протокол позволяет осуществлять одновременную модуляцию множества микроРНК в эукариотических клетках, предоставляя гибкий метод, который сводит к минимуму этапы молекулярного клонирования. Он имеет важное значение для изучения взаимодействий микроРНК и служит платформой для терапевтического применения, в частности, при раке головного мозга.
Данный метод позволяет осуществлять одновременную модуляцию нескольких микроРНК, что решает одну из ключевых проблем при воздействии на сложные многофакторные пути развития заболеваний, таких как глиобластома. Благодаря встраиванию функционально связанных микроРНК в искусственные полицистронные трансгены, создается масштабируемая платформа для разработки методов генной терапии. Этот подход повышает прогностическую достоверность валидации мишеней, позволяя координированно гиперэкспрессировать модули микроРНК, которые регулируют онкогенные репрессоры хроматина, что снижает механистическую неопределенность в доклинических исследованиях.
Данный метод вписывается в континуум открытий — от идентификации мишени через оптимизацию соединений-лидеров к доклинической валидации, что особенно актуально для заболеваний, вызванных дисрегуляцией генных сетей.