RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/60485-v
Ida Alexandersson1, Matthew J. Harms1, Jeremie Boucher1,2,3
1Bioscience Metabolism, Research and Early Development, Cardiovascular, Renal and Metabolism (CVRM), BioPharmaceuticals R&D,AstraZeneca, 2The Lundberg Laboratory for Diabetes Research,University of Gothenburg, 3Wallenberg Centre for Molecular and Translational Medicine,University of Gothenburg
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
In the study of adipose biology, maintaining mature adipocytes in culture remains a critical challenge. This research presents a novel method, Membrane Mature Adipocyte Aggregate Culture (MAAC), specifically for isolating and cultivating mature human adipocytes, facilitating the exploration of cell interactions related to diabetes and obesity.
Мембрана зрелой адипоцита агрегированной культуры (MAAC) является новым методом для культуры зрелых человеческих адипоцитов. Здесь мы подробно, как изолировать адипоциты от человеческого жирового и как создать MAAC.
Одна из проблем в области жировой биологии заключается в поддержании зрелых адипоцитов в культуре. Мы разработали новый метод, который позволяет изучать долгосрочные адипоциты на протяжении больших изменений. Наша методика культуры адипоцитов позволяет изучать клеточные взаимодействия и, как мы надеемся, будет полезна для разработки новых методов лечения диабета и ожирения.
Важно внимательно следить за протоколом, так как есть некоторые важные шаги, которые сильно влияют на качество генов и жизнеспособность зрелых адипоцитов. Например, перед покрытием убедитесь, что все свободные липиды и мыть буфер был удален в противном случае липоциты могут сорвать, когда вставки перевернуты. Получив образец подкожной жировой ткани человека, поместите ткань в стерильный биологический шкаф безопасности в 15-сантиметровую чашку Петри.
Небольшой объем средних 199 к блюду. Используйте пинцет, чтобы захватить большие фиброзные сосуды в ткани и использовать заднюю часть кончика закрытой пары ножниц, чтобы аккуратно отказаться от жировой вдоль сосуда, чтобы освободить адипоцитов. Когда все клетки были собраны отказаться от больших кусков фиброзной ткани и взвесить обрезанный жир.
Для дальнейшего освобождения клеток от жировой ткани, передачи 10 граммов жировой ткани в новую 15-сантиметровую чашку Петри и использовать изогнутые ножницы, чтобы тщательно фарш жира, пока он не станет гладкой однородной смеси без больших кусочков жировой. Когда весь жир был обработан, используйте ложку, чтобы передать 10 миллилитров рубленой ткани в отдельные 50 миллилитров труб и добавить 30 миллилитров буфера пищеварения в каждой трубке. Затем поместите трубки в трясущимся инкубатором при 37 градусах Цельсия и 150 вращениях в минуту в течение 30-35 минут.
Пищеварение завершается, когда жировой раствор однороден, абрикосового цвета и отсутствует крупными кусочками. В конце пищеварения, декант усваивается жировой раствор в 250 микрометровый фильтр сетки внутри воронки, установленных в стерильной однолитровой колбе. Когда весь объем адипоцитов суспензии был ускользает, нежный сжать сетчатый фильтр, чтобы увеличить выход адипоцитов и мыть фильтр с 50 до 100 миллилитров мытья буфера, прежде чем сжать фильтр снова.
Перенесите изолированный раствор адипоцитов в разделительную воронку и добавьте буфер для мытья до тех пор, пока воронка не будет почти полностью заполнена. Аккуратно инвертировать воронку несколько раз, чтобы смешать адипоцит подвески с буфером и пусть подвеска стоять в течение двух-трех минут, пока не будет четкого разделения слоев. Когда слои отделятся, откройте сопло на воронке и медленно ускользнете от нижнего раствора в стерильную колбу.
Когда все коллагеназы были удалены, собирать очищенные зрелые жировые растворы в 50 миллилитров конических труб и слегка упаковать клетки центрифугации. Затем используйте 10 миллилитровый шприц, оснащенный иглой 18 калибра, чтобы удалить оставшийся буфер мытья под подвеской адипоцитов и использовать пипетку, чтобы удалить свободный липидный слой, плавающий над зрелыми адипоцитами. Для посева зрелых адипоцитов поместите проницаемый мембранный компонент с ног на голову на стерильную поверхность и аккуратно инвертировать трубки упакованных адипоцитов несколько раз, чтобы обеспечить равномерное распределение клеток.
Используя широкий наконечник пипетки скважины, добавьте 30 микролитров упакованных зрелых адипоцитов на каждую мембрану. Инвертировать панель вставки одним плавным движением так, чтобы посеянные адипоциты были на дне вставок. Поместите панель вставок в пластину из 24 хорошо, содержащую от 500 до 1000 микролитров полной 37 градусов по Цельсию среды на колодец.
Затем накройте тарелку и аккуратно поместите тарелку в инкубатор культуры тканей. Каждые семь дней культуры, заменить среду через вырез отверстие в каждой вставке. После одной недели культуры, зрелые адипоциты агрегаты изолированы от подкожной жировой ткани поддерживать характерные неилокулярные липидные капли морфологии наблюдается только в зрелых адипоцитов.
Лечение агонистами PPAR-GAMMA pioglitazone и rosiglitazone приводит к увеличению экспрессии в отзывчивых генах PPAR-GAMMA, в то время как лечение глюкокортикоидным рецептором агониста дексаметазона не влияет на эти гены. Аналогичным образом, агонист глюкокортикоидных рецепторов надежно управляет экспрессией генов-мишеней глюкокортикоидных рецепторов, в то время как агонисты PPAR-GAMMA не имеют существенного влияния на эти гены. Кроме того, семидневное лечение агонистами PPAR-GAMMA надежно индуцирует экспрессию генов конкретного гена коричневого жира, UCP1.
Наша новая модель адипоцитов in vitro может быть использована для функциональных исследований в зрелых адипоцитах, включая поглощение глюкозы, липогенез и липолиз. С помощью этой новой техники культуры адипоцитов мы смогли показать, что зрелые белые адипоциты человека могут трансдифференцированы в коричневые адипоциты.
Related Videos
07:35
Related Videos
12.5K Views
08:14
Related Videos
6.8K Views
09:04
Related Videos
10K Views
08:31
Related Videos
6.5K Views
06:17
Related Videos
6.3K Views
09:00
Related Videos
13.8K Views
09:48
Related Videos
3.6K Views
06:56
Related Videos
3.2K Views
06:35
Related Videos
1.7K Views
05:34
Related Videos
3.2K Views