-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Изолировать миофибрили от биопсии скелетных мышц и определения контрактильной функции с помощью н...
Изолировать миофибрили от биопсии скелетных мышц и определения контрактильной функции с помощью н...
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Isolating Myofibrils from Skeletal Muscle Biopsies and Determining Contractile Function with a Nano-Newton Resolution Force Transducer

Изолировать миофибрили от биопсии скелетных мышц и определения контрактильной функции с помощью нано-ньютоновского разрешения силы трансдуцера

Full Text
7,327 Views
07:55 min
May 7, 2020

DOI: 10.3791/61002-v

Martijn van de Locht1, Josine M. de Winter1, Dilson E. Rassier2, Michiel H.B. Helmes1,3, Coen A.C. Ottenheijm1

1Department of Physiology,Amsterdam UMC, 2Department of Kinesiology and Physical Education, Faculty of Education,McGill University, 3IONOptix BV

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Здесь представлен протокол для оценки контрактильные свойства полосатых мышечных миофибриллей с нано-ньютоновым разрешением. Протокол использует установку с интерферометрией на основе, оптический зонд силы. Эта установка генерирует данные с высоким соотношением сигнала к шуму и позволяет оценить контрактильной кинетики миофибрил.

Transcript

Оценка контрактивных свойств миофибрил, изолированных от полосатых мышц, может быть использована для определения того, является ли саркомерная дисфункция основной причиной мышечной слабости из-за мутаций в саркомерных белках. Этот метод может быть использован для получения данных с очень высоким соотношением сигнала к шуму с разрешением нанонютон. Этот протокол также подходит для измерения контрактности в промеабилизированных кардиомиоцитов.

Имейте в виду, что сила превлододер очень хрупкая. Поэтому при удалении клея из монтажной иглы или при склеивания миофибриля, вы должны иметь твердую руку, много практики, и много терпения. Перед монтажом ткани поместите стержень гомогенизатора в трубку, содержащую мышечную ткань.

Сохраняя трубку на льду, вращаем ротор в течение 15 секунд на скорости пять. В конце гомогенизации перенесите 50 микролитров полученной подвески миофибриля и 250 микролитров расслабляющего раствора на поли-HEMA покрытием слайда в тканевой ванне. Накройте ванну крышкой, чтобы защитить смесь от пыли и ждать от 5 до 10 минут, чтобы миофибриль упасть на дно капли.

Во время погружения миофибрилов, тепло Shellac этанола клей при температуре 65 градусов по Цельсию в течение 30 до 60 секунд, прежде чем добавить около шести микролитров клея на неокрашенные стеклянные слайды. Неоднократно окуните кончик каждой монтажной иглы в клей до тех пор, пока не будет виден слой клея. Затем используйте микро-манипуляторы для перемещения зонда и пьезо вертикально, чтобы освободить место для ванны ткани на стадии микроскопа и удалить стеклянную горку, содержащую клей.

После монтажа миофибриль, чтобы измерить длину саркомера, перемести пьезо и/или силовой зонд, чтобы установить начальную длину саркомера миофибриля до 2,5 микрометров. Используя функцию сосуда программного обеспечения системного контроллера, измерьте длину и ширину миофибриля. Используйте стадию микроскопа, чтобы распоить миофибриль в центре видео изображения и растянуть прямоугольник с одной стороны миофибриля на другую, заботясь о том, чтобы включить темный край клеевых капель.

Чтобы начать запись данных, нажмите кнопку "Начать". Через пять секунд нажмите паузу. Длина будет записана.

Чтобы измерить ширину, поверните камеру на 90 градусов, чтобы посмотреть контраст края самого миофибриля. Отрегулируйте прямоугольник и нажмите кнопку, чтобы начать запись данных. Через пять секунд нажмите паузу.

Ширина будет записана. Чтобы распоить стекло theta, используйте окуляр и манипулятор, чтобы тщательно переместить стекло theta к миофибрилу. Выровняйте верхний канал theta стекла с миофибрилем и выполнить быстрый шаг, чтобы проверить положение.

Включите фоновый расслабляющий поток, чтобы проверить выравнивание теты стекла и использовать рычаг клапана Luer, чтобы включить приток камеры потока. Затем, чтобы начать осушеть камеру потока и предотвратить переполнение камеры потока, установите клапан насоса оттока для клапана ванны два, микро-ступенчатый режим до микро, поршень цели до 48000, и скорость поршеня до 38 до 40. Чтобы измерить скорость редевелопмента напряжения, рассчитайте движение пьезо, необходимое для ослабления миофибриля на 15% и введите это значение в сигнальный генератор.

Нажмите резюме, чтобы продолжить запись данных и открыть клапаны один и шесть, чтобы начать потоки расслабляющий раствор и различные концентрации кальция через стекло теты соответственно. Выберите диапазон сброса на интерферометре, чтобы сбросить диапазон интерферометра так, чтобы базовая сила была равна нулю вольт. Когда след силы стабилен, выполните theta стекло быстро шаг с размером шага 100 микрометров.

Когда сила плато будет достигнута, выполнить сокращение повторно растянуть с пьезо. Будет записан след релаксации активации. Нажмите паузу.

Для выполнения шаг-мудрый стрейч, нажмите кнопку запуска и сбросить диапазон интерферометра так, что базовая сила равна нулю вольт. Выполните шаг-мудрый стрейч с генератором сигнала. Когда участок закончен, используйте пьезо, чтобы сократить миофибриль до вялой длины.

Затем нажмите паузу и остановитесь и сохраните данные. Здесь показаны следы силы активного силового эксперимента с миофибрилью, изолированной от здоровых человеческих четырехглавых мышц. Миофибриль активировался пять раз с растворами с различной концентрацией кальция, со средней максимальной силой всех миофибриллей около 123 миллиневтонов на квадратный миллиметр.

Конструкция кривой концентрации силы кальция из сил плато, достигнутых во время каждой активации в каждой из пяти кривых кальция, позволяет вычислить концентрацию кальция на уровне 50% от максимальной силы производства. Как показано в этом репрезентативном анализе, миофибрили можно лечить несколькими соединениями в одном эксперименте, чтобы ответить на дополнительные вопросы о типе миофибриля. Активная сила и длина саркомера также могут быть измерены, чтобы позволить расчет темпов реконструкции, активации и релаксации.

Крутой подъем, показанный в пунктирной красной коробке, вызван как вязкостью, так и эластичностью. Плато напоминает только эластичный компонент. Поскольку вязкость сопротивляется деформации линейно, сила упала после того, как напряжение было удалено.

При позиционировании theta стекла, убедитесь, что вы выровнять его должным образом с myofibril. В противном случае, решение активации может прийти между оптическим волокном и кантилевером силового зонда, и это приводит к тому, что артефакты происходят в ваших данных. Кроме того, миофибриль не может активировать должным образом.

Этот метод перфузии также подходит для определения типа мышечного волокна миофибриля. Например, вы можете сначала пронизать миофибриль с нормальным раствором кальция с последующим перфузией того же раствора, но затем добавить специфическое форс-повышательное соединение типа мышечного волокна.

Explore More Videos

Биология Выпуск 159 скелетная мышца саркомерная кинетике механика миофибриля контрактность кальций кантилевер нано-ньютон силовой зонд

Related Videos

Ex Vivo оценке сократимости, утомляемость и аНегпапз в изолированных скелетных мышц

14:02

Ex Vivo оценке сократимости, утомляемость и аНегпапз в изолированных скелетных мышц

Related Videos

24.2K Views

Изометрические и эксцентричный оценке формирования сил скелетных мышц, изолированных от мышиной модели мышечной дистрофии

14:10

Изометрические и эксцентричный оценке формирования сил скелетных мышц, изолированных от мышиной модели мышечной дистрофии

Related Videos

33.4K Views

Выделение и культура Индивидуальные мышечных волокон и их сателлитные клетки от взрослых скелетных мышц

11:57

Выделение и культура Индивидуальные мышечных волокон и их сателлитные клетки от взрослых скелетных мышц

Related Videos

64.2K Views

Использование микромасштабных кремниевые зонды для оценки Сотовый сократительной функции In Vitro

10:53

Использование микромасштабных кремниевые зонды для оценки Сотовый сократительной функции In Vitro

Related Videos

10.4K Views

Измерение максимальной Изометрические усилие, создаваемое проницаемыми скелетных мышечных волокон

11:30

Измерение максимальной Изометрические усилие, создаваемое проницаемыми скелетных мышечных волокон

Related Videos

25.8K Views

In Vitro Оценка сердечной функции с использованием кожистого кардиомиоцита

08:19

In Vitro Оценка сердечной функции с использованием кожистого кардиомиоцита

Related Videos

6.7K Views

Оценка функциональных показателей здоровья скелетных мышц в микротизносах скелетных мышц человека

09:30

Оценка функциональных показателей здоровья скелетных мышц в микротизносах скелетных мышц человека

Related Videos

4.4K Views

Рассечение волокон одиночных скелетных мышц для иммунофлуоресцентного и морфометрического анализа цельномышечных соединений

08:41

Рассечение волокон одиночных скелетных мышц для иммунофлуоресцентного и морфометрического анализа цельномышечных соединений

Related Videos

9.5K Views

Одновременная томографическая визуализация Брайтфилда, флуоресценции и оптической когерентности сократителения сердечных трабекул Ex Vivo

12:54

Одновременная томографическая визуализация Брайтфилда, флуоресценции и оптической когерентности сократителения сердечных трабекул Ex Vivo

Related Videos

3.5K Views

Высокопроизводительные сократительные измерения интактных мышечных волокон мыши, встроенных в гидрогель, с использованием оптической системы

07:35

Высокопроизводительные сократительные измерения интактных мышечных волокон мыши, встроенных в гидрогель, с использованием оптической системы

Related Videos

1.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code