9 сентября 2020 г.
Модели метастазирования в кости не развивают метастазы равномерно или со 100% частотой. Прямая внутрикостная инъекция опухолевых клеток может привести к эмболизации легкого. Мы представляем нашу методику моделирования первичных опухолей костей и метастазов в кости с использованием имплантации солидного опухолевого трансплантата в кость, что приводит к воспроизводимому приживлению и росту.
Это исследование обеспечивает гибкость при создании первичных опухолей костей или метастазов в кости путем размещения солидных опухолевых трансплантатов в кости. Эта методика является отходом от введения суспензий опухолевых клеток в кость. Этот метод преодолевает ограничение инъекций суспензии опухолевых клеток в легкие эмболов.
Еще одним преимуществом является создание более однородной модели по сравнению со спонтанным метастазированием в кости или после внутрисосудистого введения клеток. На основе имплантации трансплантата солидной опухоли существуют возможности, выходящие за рамки человеческих или мышиных моделей, но использование ксенотрансплантатов, полученных от пациента, может привести к терапии, адаптированной к конкретным пациентам. Основное внимание уделяется исследованиям рака, таким как микроокружение опухоли, метастазирование, разработка лекарств, генетика рака и прецизионная медицина.
Визуальная демонстрация является ключом к демонстрации ключевых этапов создания подкожной опухоли, рассечения и создания опухолевого трансплантата, а также хирургической имплантации в большеберцовую кость. Для подкожной индукции опухоли собирают интересующую клеточную линию с использованием соответствующего раствора для диссоциации клеток и ресуспендируют клетки в соотношении один-два раза от 10 до пятой клетки до 100-150 микролитров стерильной концентрации PBS. Поместите клетки на лед.
Очистите открытые участки кожи 70% этанолом и загрузите клетки в туберкулиновый шприц, оснащенный иглой 27 калибра. Затем введите клетку подкожно в область продезинфицированной кожи, которая не будет затронута движением лопаток. Используйте штангенциркуль для контроля размера подкожной опухоли, покрывающей дорсальную грудную клетку или брюшную полость, и измеряйте массу тела животного еженедельно, чтобы убедиться, что опухоль не изъязвлена или что мышь не соответствует критериям раннего удаления, установленным Комитетом по уходу за животными и их использованию.
Когда опухоль достигает 15 миллиметров в любом размере, используйте 70% этанол для стерилизации кожи и используйте 15 скальпеля для разреза кожи, лежащей над опухолью. С помощью стерильных хирургических ножниц резко рассеките опухоль из окружающих прикрепленных мягких тканей и поместите опухоль в одну лунку шестилуночного планшета, содержащего полную питательную среду. С помощью скальпеля измельчите опухоль на фрагменты соответствующего размера и поместите фрагменты в новую емкость со стерильной питательной средой при комнатной температуре.
Для криоконсервации объедините несколько фрагментов в одном криовиале в полную питательную среду с добавлением 20% фетальной бычьей сыворотки и 10% диметилсульфоксида и используйте коммерческую систему криоконсервации при температуре минус 80 градусов Цельсия для постепенной заморозки ткани перед долгосрочным хранением в жидком азоте. Чтобы сохранить фрагменты опухоли для последующего анализа, но не для будущей имплантации, заморозьте образцы методом погружения в жидкий азот и храните замороженные фрагменты опухоли в течение длительного времени при температуре минус 80 градусов Цельсия. Для подкожной имплантации фрагментов опухоли сначала доведите суспензию опухолевых фрагментов до комнатной температуры.
Затем подтвердите отсутствие реакции на педальный рефлекс у мыши-реципиента, находящейся под наркозом, и подкожно введите анальгезию. Чтобы свести к минимуму потенциальную травму кожи, используйте крем для депиляции для удаления волос на правом коленном суставе и проксимальном отделе большеберцовой кости подключенной задней конечности. Очистите открытые участки кожи 70% этанолом, а затем чередуйте скрабы с хлоргексидином и солевым раствором.
При сгибании и разгибании сустава визуализируйте проксимальный отдел большеберцовой кости как область, расположенную дистальнее коленного сустава, и используйте лезвие 15 скальпеля для создания трех-четырехмиллиметрового разреза на уровне проксимального отдела большеберцовой кости на медиальной поверхности конечности через кожу и подкожную клетчатку, чтобы обнажить медиальную кору проксимального отдела большеберцовой кости. Чтобы создать небольшое отверстие в медиальной коре проксимального отдела большеберцовой кости, используйте кончик иглы 25 калибра, чтобы слегка надавить, вращая кончик примерно на два миллиметра дистальнее коленного сустава и на равном расстоянии между черепной и каудальной корой большеберцовой кости. Когда отверстие будет создано, используйте стерильные щипцы или иглу 27-30 калибра, чтобы ввести минимум 0,5 кубических миллиметровых фрагментов опухоли в медуллярную полость проксимального отдела большеберцовой кости, и используйте иглу 27-30 калибра для манипулирования фрагментами опухоли в медуллярном канале.
Поместив все фрагменты, противопоставьте края кожи соответствующим материалом и верните животное в клетку с наблюдением до амбулаторного состояния. Затем оцените рост опухоли большеберцовой кости неинвазивным способом с помощью еженедельной цифровой рентгенографии, биолюминесценции или флуоресцентной визуализации и используйте штангенциркуль для измерения конечности в месте имплантации. Успешное приживление может быть задокументировано с помощью передовой визуализации.
В этом репрезентативном анализе кортикальный дефект, созданный для имплантации опухолевого трансплантата, был виден в проксимальном отделе большеберцовой кости через неделю после имплантации. Ко второй неделе можно было наблюдать видимый остеолиз и ремоделирование кости рядом с кортикальным дефектом. Со второй по пятую недели происходило дополнительное прогрессирующее разрушение кости и образование новой кости, связанное с приживлением и ростом опухоли.
Следует соблюдать осторожность при создании небольшого отверстия в проксимальном отделе большеберцовой кости. Полагайтесь на вращение наконечника с мягким или минимальным давлением, позволяющим кончику иглы выполнять свою работу. После этой процедуры может быть выполнено размещение опухолевого трансплантата в других участках кости, размещение органоидов или опухолевых клеток во внеклеточном матриксе в костном дефекте или молекулярный и гистологический анализ в дополнение к визуализации.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании представлен новый метод моделирования первичных опухолей кости и метастазов в костях путем имплантации графта солидной опухоли в костную ткань. Этот метод обеспечивает создание более однородной модели по сравнению с традиционными инъекциями суспензии опухолевых клеток, которые могут привести к таким осложнениям, как эмболия легких.
Моделирование первичных опухолей кости и метастазов в костях остается критической проблемой при поиске новых онкологических препаратов из-за плохой воспроизводимости и высокой вариабельности существующих моделей. Имплантация графта солидной опухоли в кость представляет собой более однородный и надежный подход, который снижает риск таких осложнений, как эмболия опухолевыми клетками, тем самым повышая прогностическую значимость доклинических исследований. Этот метод способствует снижению рисков при изучении механизмов заболевания, обеспечивая воспроизводимое приживление графта, остеолиз и моделирование метастазов, что необходимо для оценки терапевтических кандидатов при заболеваниях костей.
Метод имплантации трансплантатов солидных опухолей вписывается в континуум исследований от валидации мишени и идентификации ведущих соединений до доклинических испытаний эффективности, в частности, для средств, модифицирующих костную ткань, и ингибиторов метастазирования.