9 сентября 2020 г.
В этой статье представлены четыре наиболее распространенных метода визуализации положительных клеток BrdU для измерения взрослого нейрогенеза у крыс. Эта работа включает в себя инструкции по получению реагента, введению аналога тимидина, транскардиальной перфузии, препарату ткани, иммуногистохимической реакции пероксидазы, иммунофлуоресценции, усилению сигнала, контрокрашиванию, микроскопической визуализации и анализу клеток.
Это ключевой протокол в области нейрогенеза у взрослых. Здесь мы представляем подробное описание шагов, необходимых для достижения успешного окрашивания. Эта методика позволяет одновременно идентифицировать специфические белки, совместно экспрессируемые в делящихся клетках, сохраняя при этом целостность тканей.
Мы рекомендуем заранее проверить антитела к тканям и состояния. Важнейшими этапами являются пермеабилизация мембраны, тщательная денатурация ДНК и тестирование времени на этапах блокировки и промывания. Стандартизация метода является сложной задачей для новых лабораторий.
Для введения аналога тимидина BrdU необходимо обездвижить нижнюю часть брюшной полости, чтобы удержать экспериментальную крысу, и с помощью одномиллилитрового шприца, оснащенного иглой 23 калибра, внутрибрюшинно ввести животному свежеприготовленный раствор BrdU в дозе 50 мг на килограмм. В соответствующей экспериментальной конечной точке соберите мозг и заморозьте мозг, чтобы можно было получить корональные срезы толщиной 40 микрометров с помощью криостатного микротома, и поместите срезы в отдельные лунки 24-луночного клеточного культивального планшета в криозащитном растворе в порядке их сбора. Когда все срезы будут собраны, храните образцы при температуре минус 20 градусов Цельсия до нескольких месяцев.
Для оценки окрашивания BrdU, используя пероксидазную реакцию, с комплексом авидин-биотин-пероксидаза, переносят срезы из раствора криозащиты в 0,1 молярного PBS до тех пор, пока образцы не достигнут комнатной температуры, и промывают ткани три раза в течение 10 минут свежим 0,1 молярного PBS на промывку. После последнего промывки инкубирует срезы в растворе, блокирующем эндогенную пероксидазу, в течение 30 минут, при комнатной температуре, после чего следует три 10-минутных промывки в 0,1 моляра PBS. После последней промывки срезы инкубировать в течение 20 минут при температуре 37 градусов Цельсия в двух молярах соляной кислоты с последующим последующим однократным 10-минутным промыванием в 0,1 молярном боратном буфере.
После трех промывок в ледяном 0,1 моляре PBS образцы инкубируют в течение двух часов при комнатной температуре в блокирующем растворе PBS+, после чего проводят ночную инкубацию с первичным антителом мыши Anti-BrdU в PBS+ при четырех градусах Цельсия. После трех промывок PBS 0,1 моляра инкубируйте образцы в течение двух-четырех часов с соответствующим биотинилированным вторичным антителом мыши в PBS+ при комнатной температуре. После промывки обработайте срезы раствором ABC в течение одного часа при комнатной температуре, после чего последует три промывки PBS по 0,1 моляра.
После последней промывки переложите срезы в раствор субстрата DAB-пероксидазы на две-10 минут, пока срезы не станут темно-серыми. Если можно визуализировать положительные клетки, промойте образцы тремя 15-минутными промывками водопроводной водой, а затем тремя промывками PBS 0,1 моляра. После последней промывки с помощью мягкой щетки аккуратно закрепите ломтики на желатинизированных предметных стеклах, для сушки на воздухе в течение ночи при комнатной температуре.
На следующее утро используйте постоянный монтажный носитель, чтобы разместить крышки на образцах. Чтобы количественно определить BrdU-положительные клетки, сначала используйте 4-кратное увеличение на микроскопе, чтобы идентифицировать зубчатую извилину и тщательно искать ядра, меченные BrdU, в слое зернистых клеток вдоль оси Z. После выбора интервального участка для поиска клеток по всей зубчатой извилине подсчитайте все BrdU-положительные клетки.
Морфология меченого ядра может меняться в зависимости от того, сколько BrdU было включено в клетку. Медленно перемещайтесь по оси Z, чтобы количественно оценить все ядра по крайней мере из 10 секций на животное и не менее пяти животных на группу, которые составляют кластер. Для деконволюции изображения откройте 3D плагин функции распространения дифракционной точки, заполните все необходимые данные, нажмите OK и сохраните файл.
Затем откройте плагин DeconvolutionLab2 и перетащите совпадающее изображение Z-стека и PSF-файл в соответствующий слот окна. Выберите алгоритм деконволюции, количество итераций и нажмите кнопку «Выполнить». Чтобы объединить деконволютированные изображения в одно изображение Z-стека, выберите «Изображение и стек» и нажмите «Проект Z».
В меню типа проекции выберите «Максимальная интенсивность». Нажмите OK и сохраните файл. Чтобы создать изображение RGB, выберите «Изображение и цвет» и нажмите «Объединить каналы», чтобы задать нужное цветовое канал для соответствующего изображения в раскрывающемся меню.
Затем снимите галочку с опции Создать составной элемент. Нажмите OK и сохраните файл. Когда все изображения каналов будут созданы, откройте по крайней мере два файла изображений и выберите разные цветовые каналы для каждого файла изображения, чтобы создать изображение RBG.
На этих изображениях можно наблюдать репрезентативные срезы зубчатой извилины с мечеными BrdU клетками. Как видно на этих увеличенных изображениях срезов, меченые клетки демонстрируют интенсивное темное окрашивание. Следует отметить, что существуют значительные различия в количестве положительных клеток BrdU между контролируемыми крысами, которые не подвергались физической активности, и экспериментальной группой, которая подвергалась физической активности, что согласуется с другими опубликованными результатами, которые продемонстрировали, что физическая активность увеличивает клеточную пролиферацию во взрослой зубчатой извилине.
При использовании этого протокола используйте свежеприготовленные растворы и аккуратно обращайтесь с тканью. Гиппокамп подвержен отделению от остальных предметных стекол при обработке через него и может быть пропущен. Эта методика может быть адаптирована для оценки маркировки ДНК и индекса синтеза ДНК и исследований пролиферации клеток с двойным окрашиванием.
Мы надеемся, что эта работа была полезна научному сообществу и облегчила ответы на новые вопросы в изучении пролиферации клеток при использовании метода иммуногистохимии.
Данное исследование посвящено методам визуализации BrdU-положительных клеток для количественной оценки нейрогенеза у взрослых крыс. В статье подробно описаны протоколы приготовления реагентов, введения аналога тимидина, обработки тканей и микроскопической визуализации для оценки пролиферации клеток в зубчатой извилине.
Точный количественный анализ клеточной пролиферации и нейрогенеза имеет важнейшее значение для валидации мишеней при разработке препаратов для ЦНС, где снижение механистических рисков опирается на воспроизводимые биомаркеры регенеративного потенциала. Стандартизированная иммуногистохимия BrdU обеспечивает прогностическую достоверность доклинических моделей, предоставляя количественные гистологические данные, которые служат основанием для принятия решений о продолжении или прекращении разработки (go/no-go) на ранних этапах поиска. Данный метод позволяет решить критическую задачу при отборе проектов в портфеле, связывая функциональное взаимодействие с мишенью с измеримыми изменениями нейрогенеза в гиппокампе.
Данный метод интегрируется в общий процесс поиска новых препаратов — от проверки гипотез о мишенях до оптимизации соединений-лидеров, обеспечивая валидацию на основе гистологического анализа, что позволяет снизить механистические риски перед значительными инвестициями в перспективных кандидатов.