14 декабря 2020 г.
Антимикробные изменения архитектуры биопленки Pseudomonas aeruginosa различаются среди клинических изолятов, культивируемых у пациентов с муковисцидозом и хронической легочной инфекцией. После конфокальной микроскопии программное обеспечение COMSTAT может быть использовано для количественной оценки вариаций в архитектуре биопленки (например, площади поверхности, толщины, биомассы) для отдельных изолятов с целью оценки эффективности противоинфекционных агентов.
Значение этого протокола заключается в том, что он предлагает простую и воспроизводимую основу для количественного определения биопленочных структур in vitro в различных антимикробных условиях. Основное преимущество этого метода заключается в том, что он помогает устранить субъективные вариации, связанные с ручным управлением COMSTAT, что в конечном итоге способствует стандартизации и прозрачности экспериментов в исследовательских центрах. Для получения изображений культур Pseudomonas aeruginosa поместите планшет на предметный столик конфокального микроскопа, оснащенного соответствующими длинами волн лазерного возбуждения и наборами фильтров.
Используйте 20–25-кратный водно-иммерсионный объектив, чтобы получить не менее шести многослойных изображений z-стека от субстрата до вершины каждого сегмента биопленки с шагом 0,3 микрометра. Затем сохраните изображения в формате OME-TIFF для анализа COMSTAT. Когда все изображения будут получены, откройте пакет COMSTAT2 в ImageJ и создайте исходную папку на рабочем столе.
Добавьте один OME-TIFF в папку и откройте OME-TIFF из исходной папки. Удалите все пустые слои, не содержащие биомассы. Выберите «Файл», «Импорт» и «Последовательность изображений», чтобы импортировать файл в ImageJ.
Найдите и выделите исходную папку, не открывая ее, и нажмите «Выбрать». Появится окно с опциями последовательности, нажмите OK. Выберите «Изображение», «Трансформация» и «Отразить Z», чтобы изменить ориентацию биопленки так, чтобы субстрат находился на вершине стопки. Чтобы определить свойства изображения, выберите «Изображение и свойства», появится окно источника.
Укажите единицу длины в микронах, задайте глубину воксела как 0,3 и нажмите OK. Выберите «Изображение», «Настройка» и «Порог». Чтобы настроить порог изображения в окне порога, расположите нижний ползунок справа, чтобы вручную установить максимальное пороговое значение, и используйте верхний ползунок, чтобы установить минимальный порог. Затем с помощью ползунка в окне изображения прокрутите каждый слой, чтобы убедиться, что фоновый шум достаточно удален по всему стеку, и выберите «Установить», чтобы зафиксировать нижнее пороговое значение.
В окне установки пороговых уровней нажмите кнопку ОК, а также аналогичным образом установите и зафиксировайте максимальное пороговое значение. Выберите Применить, нажмите OK в появившемся окне преобразования стека в двоичный файл и выйдите из окна пороговых значений. Выберите «Подключаемые модули», «Биоформаты» и «Экспортер биоформатов», чтобы сохранить файл с новым именем в исходной папке.
Появится окно с несколькими файлами Bio-Formats Exporter, нажмите OK. Появится окно параметров экспортера биоформатов, снова нажмите OK. Чтобы запустить COMSTAT, выберите плагины и COMSTAT2, появится окно «О программе», выберите OK.In окне «Наблюдаемые директории», выберите «Добавить», найдите и выделите исходную папку, выделите и нажмите «Выбрать». Появится окно «Изображения в каталогах», в котором перечислены OME-TIFF для анализа.
В окне COMSTAT2.1 снимите флажки «Автоматическое пороговое значение», «Метод Оцу» и «Фильтрация подключенного объема», чтобы убедиться, что программное обеспечение использует предустановленные пороговые значения для отдельных OME-TIFF. В окне COMSTAT2.1 выберите «Биомасса», «Распределение толщины» и «Площадь поверхности» и нажмите «Перейти», чтобы запустить программу. Выходные данные будут отображаться в окне журнала.
Измерения будут автоматически сохранены в виде файлов TXT в исходной папке. В этом репрезентативном анализе был использован изолят Pseudomonas aeruginosa, культивируемый у инфицированного пациента с муковисцидозом, чтобы продемонстрировать сильные стороны этого подхода, неточно количественно оценивая антимикробные индуцированные изменения в архитектуре биопленки in vitro. Визуализация живых клеток также позволяет визуализировать изменения в структуре биопленки Pseudomonas aeruginosa до и после биопленочного специфического моноклонального лечения и лечения тобрамицином.
Анализ данных COMSTAT выявил существенные различия между обработанными структурами биопленки по сравнению с контрольными культурами. В культурах, обработанных тобрамицином, наблюдалось явное уменьшение средней толщины и биомассы. Однако в присутствии антител биопленка P.aeruginosa была устойчива к этим структурным изменениям, вызванным тобрамицином.
При исследовании поверхностного и биообъемного соотношения наблюдалось значительное снижение присутствия антител как в биопленках, подвергшихся воздействию тобрамицина, так и в неэкспонированных, что указывает на образование агрегатов в культурах, обработанных антителами. Эта процедура может быть выполнена для количественной оценки или сравнения эффектов различных противомикробных препаратов, используемых для разрушения биопленочных матриц. Используя этот метод в качестве общей основы, исследователи могут изучить различные способы уточнения протокола, включив в него новые математические модели и алгоритмические плагины в ImageJ, чтобы лучше отображать гетерогенность биопленки.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании представлена воспроизводимая методика количественного анализа структуры биопленок Pseudomonas aeruginosa при различных условиях воздействия антимикробных препаратов. Протокол направлен на стандартизацию оценки архитектуры биопленки для повышения прозрачности данных в различных исследовательских центрах.
Стандартизированная количественная оценка воздействия антимикробных средств на архитектуру биопленок способствует валидации мишеней при разработке противоинфекционных препаратов. Объективные метрики биопленок позволяют снизить риски при изучении механизмов действия терапевтических кандидатов, связывая воздействие соединения со структурными изменениями. Такой подход повышает прогностическую достоверность доклинического скрининга за счет снижения вариабельности оценки фенотипа биопленок в разных лабораториях.
Данный метод вписывается в континуум поиска новых лекарственных средств — от валидации мишени до оптимизации соединений-лидеров, обеспечивая количественное фенотипирование биопленок для анализа взаимосвязи «структура — активность».