October 20th, 2020
Мы предоставляем подробный протокол для выращивания, микроинъекции яиц и для эффективного спаривания firebrat Thermobia domestica для генерации и поддержания штаммов мутантов после редактирования генома.
Поскольку Thermobia domestica является базальным насекомым, генетические исследования этого вида прольют свет на механизмы, лежащие в основе эволюции ключевых инноваций у насекомых, таких как моторный полет и метаморфозы. Этот протокол охватывает основные методы от поддержания культуры до микроинъекции яйцеклеток для реализации Thermobia в качестве лабораторной модели вида. Этот метод также может быть использован для применения других генетических инструментов, таких как нокдаун генов, опосредованный RNI, и трансгенез у термоб.
Поддерживайте популяции диких типов и мутантов в большом пластиковом контейнере с обычным искусственным кормом для рыб, водой в пластиковых стаканчиках с вентиляционным отверстием сверху, сложенной бумагой для укрытия насекомых и слоеной ватой для откладывания яиц. Храните все культуры T.domestica в инкубаторах с температурой 37 градусов Цельсия и установите относительную влажность внутри каждого контейнера на уровне от 60 до 80%.Чтобы подготовить яйцесборные колонии, пересадите около 20 самцов и 20 самок в контейнер среднего размера с едой, запасом воды, сложенной бумагой и небольшим куском слоеного хлопка для откладывания яиц. Создайте несколько колоний, чтобы получить большое количество стадийных эмбрионов за короткий промежуток времени.
В день инъекции замените вату внутри контейнеров на новую вату. Через восемь часов соберите яйцеклетки из слоистого хлопка, отделив слои с помощью щипцов. Выровняйте яйца на двустороннем скотче с помощью влажной малярной кисти, соблюдая расстояние между яйцами в два миллиметра.
Все яйца должны быть ориентированы таким образом, чтобы продольная ось яйца была обращена к стороне инъекции. Аккуратно придавите яйца кистью для крепкого удержания во время инъекции. Загрузите два микролитра раствора гРНК CAS9 в стеклянный капилляр для инъекций с помощью микрозагрузчика.
Перед инъекцией убедитесь, что в растворе нет пузырьков воздуха. При необходимости постучите по игле, чтобы удалить пузырьки. Оптимизируйте форму кончика иглы, слегка сломав его щипцами, чтобы предотвратить засорение и добиться большей прочности во время серии инъекций.
Введите иглу в середину продольной оси яйца и введите небольшое количество раствора. Регулируйте конфигурацию электронного микроинъектора во время инъекции в зависимости от формы кончика иглы. Храните введенные яйца в контейнере соответствующего размера с относительной влажностью от 60 до 80% при температуре 37 градусов Цельсия.
Периодически проверяйте введенные яйца и отбраковывайте поврежденные яйца, чтобы избежать роста грибков. Если на яйце растет слишком много грибка, очистите поверхность яйца 70% этанолом. Перед вылуплением окуните предметное стекло с введенными яйцами в тальк для покрытия поверхности двусторонним скотчем.
Это предотвратит укладку вылупившихся нимф. Переложите стеклянные стекла с порошковым покрытием в контейнер среднего размера с едой, водой и сложенной бумагой. Изолируйте нимфы G1 в 24 луночные пластины с помощью аспиратора или кисти.
Поддерживайте запас искусственного регулярного корма для рыб. Поместите 24 луночные пластины в большую емкость с запасом воды для влажности от 60 до 80% Зажмите церкус у нимфы или взрослой особи с помощью щипцов и соберите их в 0,2 миллилитровую пробирку, содержащую 50 микролитров этанола. Собранные образцы храните при температуре минус 20 градусов Цельсия для длительного хранения.
Поместите пробирки с образцами с открытыми крышками на термоблок на 15 минут при температуре 70 градусов Цельсия, чтобы выпарить этанол. Инъекция комплекса рибонуклеопротеинов гРНК CAS9 в эмбрионы в течение первых восьми часов после откладки яиц приводит к образованию инделов в целевом сайте гРНК. Это приводит к биаллельным мутациям в некоторых клетках инъецируемого поколения и обычно получают мутантные мозаичные фенотипы.
Когда этот протокол был использован для введения гРНК, которая была разработана для нацеливания на белый ген, у 32,6% нимф G0 наблюдалась частичная потеря пигментации в сложных глазах и дорсальных областях. Оценка трансформации зародышевой линии взрослых G0 и мутировавших G1 индивидуумов проводилась с помощью геномной ПЦР с последующим анализом гетеродуплексной подвижности. В образцах G1 четко различимы дифференциальные полосы между диким типом и мутировавшими образцами.
Редактирование генома в Thermobia обеспечивает надежный подход к анализу генетических механизмов, лежащих в основе преждевременных признаков насекомых. Это помогает раскрыть секреты их выдающегося успеха и нашего успеха.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Эта статья представляет полный протокол разведения и микроинъекции яиц термобии Thermobia domestica, облегчающий создание и поддержание мутантных штаммов через редактирование генома. Описанные методы увеличат использование Thermobia как лабораторной модельной вида для генетических исследований.
Genome editing in Thermobia domestica enables functional genetic interrogation in a basal insect model, supporting evolutionary and developmental biology pipelines. The protocol's robust microinjection and colony management steps facilitate reproducible generation of mutant strains, expanding the toolkit for non-traditional model systems. This capability strengthens early discovery and target validation for insect biology and comparative genomics portfolios.
This protocol integrates into the discovery continuum from early genetic manipulation to phenotypic screening and comparative analysis in insect models.