-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
In vivo Оценка слизистой очистки у мышей
In vivo Оценка слизистой очистки у мышей
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
In vivo Evaluation of Mucociliary Clearance in Mice

In vivo Оценка слизистой очистки у мышей

Full Text
4,609 Views
06:35 min
December 18, 2020

DOI: 10.3791/61929-v

Kyle S. Feldman1, Maliha Zahid1

1Department of Developmental Biology,University of Pittsburgh School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

В этой публикации мы описываем протоколы для оценки слизистой оболочки дыхательных путей (MCC) у мышей in vivo с использованием радионуклидной визуализации с двойным модальности. Этот протокол предназначен для единой фотонной эмиссионной компьютерной томографии (SPECT) и протокола приобретения компьютерной томографии (КТ) с использованием коллиматоров мыши всего тела (MWB) в двойной системе SPECT/CT.

Transcript

Наш протокол позволяет точно измерить мукоцилиарный клиренс на животной модели с использованием радионуклидов, которые отслеживаются с помощью ОФЭКТ и компьютерной томографии с помощью двух модальностей для точной локализации и измерения клиренса дыхательных путей. Этот метод представляет собой воспроизводимый метод измерения MCC, который может быть применен к различным моделям животных и болезней благодаря использованию двойной ОФЭКТ/КТ. После подтверждения отсутствия реакции на педальный рефлекс оснастите стойку носовым конусом для поддержания анестезии и подвесьте обезболенную мышь за передние резцы на интубационной стойке под углом 45 градусов.

Подключает один конец оптоволоконного провода 50 микрон к источнику света и накручивает канюлю 20 калибра на провод. Используйте тупые щипцы, чтобы вытащить язык, и осветите направляющий провод, чтобы визуализировать голосовые связки. Пропустите направляющую проволоку через голосовые связки так, чтобы она находилась сразу за голосовыми связками, упирающимися в верхнюю трахею, и сдвиньте канюлю в один дюйм вперед вдоль проволоки, пока она не станет достаточно глубокой, чтобы ступица упиралась в резцы животного.

Снимите провод, оставив канюлю на месте, и пальцем кратковременно закупорьте канюлю, чтобы проверить изменения в дыхании. Затем добавьте 10 микролитров свежеприготовленного 0,2 милликюри 99m коллоида серы технеция в канюлю и дайте мыши самопроизвольно вдыхать радионуклид в легкие в течение одной-двух минут. Для ОФЭКТ/КТ визуализации, после удаления канюли, используйте ленту, чтобы прикрепить мышь к 25-миллиметровой палитре с помощью носового обтекателя, и прикрепите 200 микролитровую ПЦР-пробирку, содержащую 0,05 милликюри радиоактивного фантома, под нижнюю часть брюшной полости мыши ниже легких.

Поместите мышь в систему ОФЭКТ/КТ. Выберите рабочий процесс обработки изображений и нажмите кнопку Настройка. Настройте расположение детекторов на мыши и запустите рабочий процесс визуализации.

По завершению рабочего процесса перенесите мышь в новую клетку с мониторингом и неограниченным доступом к еде и воде и наклейкой радиационной безопасности на шесть часов между сканированиями. После получения изображения сделайте гистограмму изображений ОФЭКТ с использованием заводских стандартных настроек для коллоида серы технеция 99 м и используйте алгоритм MAP3D и реконструкцию функции распределения точки для реконструкции 3D-изображений стека. Восстановите КТ-изображения с помощью алгоритма Фельдкампа и фильтра Шеппа-Логана и откройте изображения КТ и ОФЭКТ на Фиджи.

Используйте инструмент reslice для создания изображений коронального обзора из осевых изображений по умолчанию и выполните проекцию z-stack sum на изображение SPECT, чтобы добавить данные о количестве из каждого среза. Создайте одно изображение для упрощения анализа. Используя пробирку Phantom Eppendorf в качестве эталона, изменяйте размер и регистрируйте изображения КТ и ОФЭКТ.

Используйте автоматический пороговый режим для бинаризации КТ-изображения, инвертирования стека и выполнения проекции суммы z-стека для создания контура легких для анализа. Поворачивайте изображения КТ и ОФЭКТ и используйте инструменты канала, чтобы объединить их в одно изображение. Затем нарисуйте интересующую область вокруг правого легкого, чтобы определить мукоцилиарный клиренс.

После получения и обработки изображений изображения КТ и ОФЭКТ могут быть локализованы с использованием фантомной трубки в качестве ориентира. Маски легких могут быть сгенерированы на основе КТ-изображения и использованы для рисования областей интереса вокруг легких для их анализа в разные моменты времени. В этом анализе в общей сложности восемь мышей были просканированы два раза в разные дни в идентичных экспериментальных условиях, чтобы проверить воспроизводимость протокола.

Парный анализ Т-критерия не показал существенной разницы между повторными сканированиями. Еще две мыши также были просканированы три раза в разные дни в идентичных экспериментальных условиях. Односторонний анализ ANOVA показал значительное совпадение между повторными сканированиями.

Здесь можно наблюдать репрезентативные изображения двух из отсканированных мышей. Очень важно уметь визуализировать дыхательные пути. А чтобы убедиться в успешности интубации, при необходимости удалите канюлю и повторно интубируйте во избежание ошибочной интубации пищевода.

Этот протокол может быть применен к моделям заболеваний для оценки влияния различных препаратов на клиренс дыхательных путей и для помощи в разработке новой лекарственной терапии.

Explore More Videos

Биология Выпуск 166 Мукоцилиарный клиренс пестрые реснички дыхательная функция in vivo

Related Videos

Реверсивные, неинвазивный метод для измерения сопротивления дыхательных путей и бронхоальвеолярного лаважа выборки жидкости у мышей

09:58

Реверсивные, неинвазивный метод для измерения сопротивления дыхательных путей и бронхоальвеолярного лаважа выборки жидкости у мышей

Related Videos

22.9K Views

Оценка системы механики дыхания у мышей использованием вынужденных колебаний Техника

13:10

Оценка системы механики дыхания у мышей использованием вынужденных колебаний Техника

Related Videos

57.8K Views

Интубации трахеи у мышей Через Прямая Ларингоскопия Использование Otoscope

06:58

Интубации трахеи у мышей Через Прямая Ларингоскопия Использование Otoscope

Related Videos

32.3K Views

Ex Метод естественных условиях для высокого разрешения подвижность ресничек у грызунов эпителия дыхательных путей

08:25

Ex Метод естественных условиях для высокого разрешения подвижность ресничек у грызунов эпителия дыхательных путей

Related Videos

21.3K Views

Использование ротоглотки интратрахеального PAMP администрации и бронхоальвеолярного лаважа для оценки иммунного ответа хозяина у мышей

12:27

Использование ротоглотки интратрахеального PAMP администрации и бронхоальвеолярного лаважа для оценки иммунного ответа хозяина у мышей

Related Videos

17K Views

Изучение микробных сообществ В Vivo: Модель узла опосредованного взаимодействия между Candida Albicans И Синегнойной палочки В Airways

06:43

Изучение микробных сообществ В Vivo: Модель узла опосредованного взаимодействия между Candida Albicans И Синегнойной палочки В Airways

Related Videos

9.1K Views

Оценка функции внешнего дыхания в сознательных мышей, двухкамерный плетизмографии

08:58

Оценка функции внешнего дыхания в сознательных мышей, двухкамерный плетизмографии

Related Videos

43.6K Views

Носовые разности потенциалов для количественного определения транс эпителиальных ионный транспорт в мышей

08:55

Носовые разности потенциалов для количественного определения транс эпителиальных ионный транспорт в мышей

Related Videos

8K Views

Альвеолярных макрофагов фагоцитоза и распродажа бактерий в мышей

11:20

Альвеолярных макрофагов фагоцитоза и распродажа бактерий в мышей

Related Videos

11.6K Views

Методы выявления кашля и воспаления дыхательных путей у мышей

04:33

Методы выявления кашля и воспаления дыхательных путей у мышей

Related Videos

914 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code