-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Immunology and Infection
Современное согревающее/удерживающее устройство для эффективных инъекций хвостовых вен в модели г...
Современное согревающее/удерживающее устройство для эффективных инъекций хвостовых вен в модели г...
JoVE Journal
Immunology and Infection
This content is Free Access.
JoVE Journal Immunology and Infection
A Contemporary Warming/Restraining Device for Efficient Tail Vein Injections in a Murine Fungal Sepsis Model

Современное согревающее/удерживающее устройство для эффективных инъекций хвостовых вен в модели грибкового сепсиса мышей

Full Text
17,254 Views
06:02 min
November 6, 2020

DOI: 10.3791/61961-v

Junko Yano1, Elizabeth A. Lilly2, Mairi C. Noverr2, Paul L. Fidel1

1Center for Oral and Craniofacial Biology,Louisiana State University Health-School of Dentistry, 2Department of Microbiology and Immunology,Tulane University School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Здесь мы представляем эффективный и действенный метод инъекций вен хвоста грызуна с использованием уникально разработанного согревающего / сдерживающего устройства. Оптимизируя инициирование сосудорасширяющих и сдерживающих процессов, этот протокол позволяет точно и своевременно внутривенно вливать большие группы животных с минимальным дистрессом.

Нагревательное и удерживающее устройство предлагает оптимизированную технику для успешного проведения внутривенных инъекций в хвостовую вену, обеспечивает нагрев в контролируемой среде и эффективное обращение для проведения внутривенной инъекции в хвостовую вену. Прежде чем приступать к этой технике, важно ознакомиться с протоколом и попрактиковаться с инъекциями физраствора. Визуальная демонстрация дает возможность показать советы и предостережения, которые помогут в проведении процедуры.

Дзюнко Яно, постдок в моей лаборатории, настроит оборудование, а я продемонстрирую процедуру. Чтобы инициализировать устройство подогревателя, установите его на чистую плоскую столешницу и включите его, убедившись, что индикатор мощности термостата горит зеленым цветом. Затем поместите подстилочный материал внутрь камеры для нагрева, чтобы помещение оставалось сухим и сохраняло тепло.

Для настройки удерживающего устройства поместите удерживающий блок рядом с устройством подогрева и определите подходящие размеры конуса для животного. Вручную отрегулируйте ширину основания гибкого алюминиевого конуса, чтобы обеспечить достаточную фиксацию животного. В качестве альтернативы замените конус на специально подобранные модели, чтобы разместить животных разных размеров.

Установите термостат на нужную температуру с помощью диска управления, убедившись, что индикатор обогревателя горит красным цветом и что лампочка горит. Внимательно следите за отображением внутренней температуры, когда лампочка включена. Он активируется автоматически после достижения целевой температуры.

Расположите высоту конуса удерживающей платформы до оптимального для пользователя уровня с помощью ручки регулировки высоты. Как только целевая температура будет достигнута, осторожно перенесите животных из клетки в камеру подогрева. В камере подогрева можно безопасно содержать от четырех до шести мышей или одну крысу в течение максимум 20-30 минут.

Термической обработки в течение 5-10 минут достаточно, чтобы вызвать вазодилатацию и улучшить видимость хвостовых вен. Следите за животным на предмет любых признаков острого теплового стресса, таких как учащенное дыхание, вялость или прыжковое поведение при бегстве. Извлеките животное из камеры, подняв его за основание хвоста, и поместите его на конусное отверстие удерживающего блока.

Пока животное хватается передними лапами за дальний край конуса, осторожно оттяните хвост назад и пропустите хвост через открытую щель. Закрепите любую из задних ног, выступающих из конуса, так, чтобы боковая вена была видна в положении «12 часов». Возьмитесь за хвост на середину или 2/3 длины недоминантной рукой между большим и указательным пальцами, слегка натягивая боковую вену для поддержания положения хвоста и расширения сосудов.

Протрите кожу места инъекции марлевой губкой или тампоном, смоченным в 70% спирте. Держите шприц доминирующей рукой и расположите иглу параллельно хвосту. Введите иглу в направлении кровотока под углом от 10 до 25 градусов и продвигайтесь дальше в просвет вены, проникая на два-четыре миллиметра.

Медленно вводите раствор. В случае резистентности или появления белых волдырей над местом инъекции извлеките иглу и попробуйте сделать вторую инъекцию в место, расположенное выше первоначального места установки иглы. Если инъекция в одну латеральную вену не увенчалась успехом, переместите животное на противоположную сторону и сделайте больше попыток на контралатеральную вену.

Извлеките иглу и сильно надавите большим пальцем на место инъекции, чтобы предотвратить обратный ток введенного раствора или крови. Продолжайте наносить мягкое сжатие чистой марлей или салфеткой до тех пор, пока кровотечение не остановится. Верните животное в клетку и наблюдайте за ним в течение пяти минут, следя за тем, чтобы животное возобновило нормальную деятельность без дальнейшего кровотечения.

После того, как нагреватель камеры нагрева был активирован, тепловыделение лампочкой быстро повышает внутреннюю температуру в течение первых 5-15 минут, в зависимости от целевой температуры. Обогреватель отключает лампочку, если обнаруженная внутренняя температура превысила заданную температуру. Впоследствии устройство автоматически повторяет тепловой цикл для поддержания внутренней температуры.

В мышиной модели кандидоза кровотока, приводящего к сепсису, внутривенное введение Candida albicans у швейцарских мышей Вебстера вызвало быстрое начало сепсиса и распространение микроорганизмов, что привело к высокой смертности в течение трех-четырех дней. Напротив, животные могут быть защищены от сепсиса путем предварительной иммунизации или вакцинации авирулентным штаммом Candida dubliniensis, достигая более 95% выживаемости после смертельного внутривенного введения вирулентным C.albicans. У непривитых животных со смертельной инфекцией наблюдался значительный рост заболеваемости, вызванной сепсисом, в то время как у вакцинированной группы наблюдались минимальные симптомы после летального заражения.

Результаты по прогрессирующей смертности в сравнении с вакцино-опосредованной защитой были получены воспроизводимым путем в четырех независимых экспериментах. Будьте осторожны при расположении животного в конусе, чтобы вы правильно наклонили иглу для доступа к вене, отрегулировали иглу в вену и ввели в вену. Эта обтекаемая техника предлагает эффективные и действенные средства для проведения инъекций в хвостовую вену, которые улучшат научные результаты исследователей.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Иммунология и инфекция Выпуск 165 Инъекции в хвостовые вены грызунов внутривенные инъекции устройство для согревания грызунов Устройство для сдерживания грызунов модели животных модели сепсиса расширение сосудов

Related Videos

Инъекция в хвостовую вену: метод введения раковых клеток для метастатических исследований на мышиной модели

04:01

Инъекция в хвостовую вену: метод введения раковых клеток для метастатических исследований на мышиной модели

Related Videos

12.7K Views

Внутрисердечная доставка вирусных векторов: техника инъекции вирусных векторов интракардиально для изучения метастазирования в поджелудочную железу на мышиной модели

04:38

Внутрисердечная доставка вирусных векторов: техника инъекции вирусных векторов интракардиально для изучения метастазирования в поджелудочную железу на мышиной модели

Related Videos

4.4K Views

Учредительные и индуцибельной систем для генетических в естественных условиях изменения мыши гепатоцитов, используя инъекции Вену гидродинамических хвост

09:35

Учредительные и индуцибельной систем для генетических в естественных условиях изменения мыши гепатоцитов, используя инъекции Вену гидродинамических хвост

Related Videos

14.9K Views

Новый наилучшей практики для проверки хвост вен инъекции в Крыса с рядом ИК меченых агентов

04:19

Новый наилучшей практики для проверки хвост вен инъекции в Крыса с рядом ИК меченых агентов

Related Videos

22K Views

Murine Модель центрального венозного стеноза с использованием аортокавальной фистулы с оттоком стеноз

06:17

Murine Модель центрального венозного стеноза с использованием аортокавальной фистулы с оттоком стеноз

Related Videos

7.7K Views

Патологический анализ метастазирования в легкие после инъекции опухолевых клеток в латеральную хвостовую вену

08:54

Патологический анализ метастазирования в легкие после инъекции опухолевых клеток в латеральную хвостовую вену

Related Videos

9.7K Views

Модель лимфедемы мышиного хвоста

04:38

Модель лимфедемы мышиного хвоста

Related Videos

6.4K Views

Модель кровотечения при трансекции хвостовой вены у полностью обезболенных мышей с гемофилией А

08:13

Модель кровотечения при трансекции хвостовой вены у полностью обезболенных мышей с гемофилией А

Related Videos

7K Views

Многократное внутривенное болюсное дозирование и инвазивная оценка гемодинамики в модели гипертензии легочной артерии мыши, индуцированной гипоксией

08:51

Многократное внутривенное болюсное дозирование и инвазивная оценка гемодинамики в модели гипертензии легочной артерии мыши, индуцированной гипоксией

Related Videos

1.8K Views

Последовательная доставка аденоассоциированного вируса через инъекцию боковой хвостовой вены взрослым мышам

05:03

Последовательная доставка аденоассоциированного вируса через инъекцию боковой хвостовой вены взрослым мышам

Related Videos

2.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code