RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/62214-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Мы описываем быстрый и надежный протокол для обогащения инвариантных естественных Т-киллеров (iNKT) клеток из мышиной селезенки и расширения их in vitro до подходящих чисел для исследований in vitro и in vivo.
Этот протокол обеспечивает очистку Т-клеток INK, которые очень редки, и позволяет увеличить их количество в 30 раз. Очистка может быть выполнена за один день и получить большое количество готовых к использованию INK Т-клеток для исследований in vivo и in vitro за две недели. Продемонстрировать процедуру будет Глория Дельфанти, постдок в лаборатории.
После рассечения мышиной селезенки разбейте ее через 70-нанометровый клеточный сетчатый фильтр, чтобы получить одноклеточную суспензию в 10 миллилитрах PBS с 2% FBS. Центрифуга в 300 раз G в течение пяти минут. Удалите супернатант и повторно суспендируйте клеточную гранулу одним миллилитром стерильного буфера лизина калия хлорида аммония.
Инкубируют клетки в течение трех минут при комнатной температуре, затем блокируют пятью миллилитрами PBS с 2% FBS. Центрифуга в 300 раз G в течение пяти минут. После удаления супернатанта повторно суспендируют ячейку гранулы в трех миллилитрах PBS с 2% FBS и удаляют жировые остатки путем пипетирования.
Для этапов обогащения держите клетки холодными и используйте растворы, предварительно охлажденные при четырех градусах Цельсия, а затем хранящиеся на льду. Центрифуга в 300 раз G в течение пяти минут. Повторно суспендировать все клетки в соответствующем количестве PBS с блокатором 2% FPS и Fc и инкубировать в течение 15 минут при комнатной температуре.
Промывайте одним-двумя миллилитрами буфера разделения MACS на 10 миллионов клеток и центрифугой в 300 раз G в течение 10 минут. После удаления супернатанта окрашивают клетки CD19-FITC и H2-IAb-FITC и инкубируют в течение 15 минут в темноте при четырех-восьми градусах Цельсия. Промывайте клетки, добавляя от одного до двух миллилитров буфера MACS на 10 миллионов клеток и центрифугу в 300 раз G в течение 10 минут.
Удалите супернатант и повторно суспендируйте клеточную гранулу в 90 микролитрах буфера MACS на 10 миллионов клеток. Добавьте 10 микролитров анти-FITC микрошариков на 10 миллионов клеток. Хорошо перемешать и инкубировать в течение 15 минут в темноте при четырех-восьми градусах Цельсия.
Промывайте клетки, добавляя от одного до двух миллилитров буфера MACS на 10 миллионов клеток и центрифугу в 300 раз G в течение 10 минут. Удалите супернатант и повторно суспендируйте до 125 миллионов клеток в 500 микролитрах буфера MACS. Поместите столбец LD в магнитное поле сепаратора MACS.
Чтобы избежать засорения, нанесите фильтр предварительного разделения на колонку LD и промойте его двумя миллилитрами буфера MACS. Нанесите суспензию ячеек на фильтр и соберите непомеченные ячейки, которые проходят через столбец. Промыть резервуар пустой колонны три раза одним миллилитром буфера MACS.
Соберите обогащенные Т-клетками стоки и подсчитайте ячейки, сохранив 50 микролитров для анализа FACS. После центрифугирования в 300 раз G в течение пяти минут удаляют супернатант и окрашивают клетки тетрамером-ПЭ CD1d. Хорошо перемешать и инкубировать в течение 30 минут в темноте на льду.
Промывайте клетки, добавляя от одного до двух миллилитров буфера MACS на 10 миллионов клеток. После центрифугирования в 300 раз G в течение 10 минут удаляют супернатант и повторно суспендируют ячейку гранулы в 80 микролитрах буфера MACS на 10 миллионов клеток. Добавьте 20 микролитров анти-ПЭ микрошариков на 10 миллионов клеток.
Хорошо перемешать и инкубировать в течение 15 минут в темноте при четырех-восьми градусах Цельсия. Промывайте клетки, добавляя от одного до двух миллилитров буфера MACS на 10 миллионов клеток и центрифугу в 300 раз G в течение 10 минут. Удалите супернатант и повторно суспендируйте до 100 миллионов клеток в 500 микролитрах буфера MACS.
В соответствии с количеством ячеек поместите столбец LS или MS в магнитное поле сепаратора MACS и промойте столбец буфером MACS. Нанесите суспензию ячеек на столбец, соберите непомеченные ячейки, которые проходят через него, и промойте столбец три раза, как описано ранее. Это отрицательная доля.
Извлеките столбец из магнитного поля и поместите его на новую коллекционную трубку. Пипетка MACS буферизуется на колонну и проталкивает предоставленный плунжер в колонну, чтобы вымыть положительную фракцию, обогащенную Т-клетками INK. Для дальнейшего увеличения восстановления Т-клеток INK центрифугируют отрицательную фракцию в 300 раз G в течение 10 минут и повторяют предыдущие шаги с новым столбцом LS или MS.
Извлеките положительные фракции и определите количество ячеек. Держите 50 микролитров как положительных, так и отрицательных фракций для анализа FACS для проверки чистоты. Чтобы активировать Т-клетки INK в соотношении один к одному, перенесите соответствующий объем магнитных шариков против CD3 и CD28 в трубку и при равном объеме PBS, затем вихрь в течение пяти секунд.
Поместите трубку на магнит на одну минуту и выбросьте супернатант. Снимите трубку с магнита и повторно суспендируйте промытые магнитные шарики в нужном объеме RPMI. Центрифуга очищает INK Т-клетки в 300 раз G в течение пяти минут и смешивает их с мышиными Т-активаторами анти-CD3 или CD28 магнитными шариками.
Пластинчатый один миллилитр клеточной суспензии, анти-CD23 и CD28 магнитные шарики в 48-луночной пластине с 20 единицами на миллилитр IL-2, затем инкубируют при 37 градусах Цельсия. Через пять дней добавьте 10 нанограмм на миллилитр IL-7. Разделите клетки пополам, когда они достигнут 80-90% слияния, всегда добавляя 20 единиц на миллилитр IL-2 и 10 нанограммов на миллилитр IL-7.
В этих условиях Т-клетки INK могут быть расширены на срок до 15 дней. Используя этот протокол, Т-клетки INK обогащаются из селезенки трансгенных мышей посредством процесса иммуномагнитного разделения. После обогащения клетки могут быть расширены шариками против CD3 и CD28, что приводит к 30-кратному расширению в среднем к 14-му дню культуры.
Сильная активация бусинами против CD3 и против CD индуцировала снижение регуляции экспрессии TCR Т-клеток IMK на поверхности клетки, и появилась двойная отрицательная популяция. Большинство расширенных Т-клеток INK являются CD4-отрицательными. Характеристика линейно-специфических факторов транскрипции PLZF и ROR gamma T позволила идентифицировать фенотипы NKT1, NKT2 и NKT17 на обогащенных INK Т-клетках на нулевом и 14-м дне.
Обогащенные INK Т-клетки показывают Т80-подобный эффекторный фенотип, который сохраняется после 14 дней расширения, что подтверждается секрецией как интерферона гамма, так и IL-4 после стимуляции PMA и иономицина. Во время этапов очистки не забывайте быстро работать с предварительно охлажденными растворами и избавляться от любых жировых остатков, которые могут быть замечены во время пипетки. Расширенные Т-клетки INK могут быть использованы для анализов in vitro и переноса in vivo мышам, даже после функциональных модификаций посредством переноса или редактирования генов.
Расширение IN VITRO Т-клеток INK преодолевает ограничение, вызванное нехваткой, что делает их пригодными для использования в доклинических исследованиях в области иммунного надзора за опухолями, инфекционных заболеваний и аутоиммунитета.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
09:47
Related Videos
36.3K Views
10:44
Related Videos
49.2K Views
04:17
Related Videos
708 Views
03:35
Related Videos
546 Views
07:12
Related Videos
53.9K Views
09:01
Related Videos
12.5K Views
09:09
Related Videos
15.8K Views
08:08
Related Videos
21.6K Views
08:39
Related Videos
20.2K Views
10:13
Related Videos
9.4K Views