RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/62336-v
Minh Ma1,2, Saiaditya Badeti1, James K. Kim1, Dongfang Liu1,3
1Department of Pathology, Immunology and Laboratory Medicine,Rutgers-New Jersey Medical School, 2Department of Microbiology, Biochemistry & Molecular Genetics, Public Health Research Institute Center, New Jersey Medical School,Rutgers University, 3Center for Immunity and Inflammation, New Jersey Medical School,Rutgers-The State University of New Jersey
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Здесь мы представляем метод расширения естественного киллера периферической крови (PBNK), NK-клеток из тканей печени и химерных антигенных рецепторов (CAR)-NK-клеток, полученных из мононуклеарных клеток периферической крови (PBMCs) или пуповинной крови (CB). Этот протокол демонстрирует расширение NK и CAR-NK клеток с использованием питающих ячеек 221-mIL-21 в дополнение к оптимизированной чистоте расширенных NK-клеток.
Этот протокол может значительно улучшить расширение функциональных, неисчерпывающих, похожих на память NK-клеток ex vivo по сравнению с другими фидерными клетками, основанными на системе расширения. Это более простой метод по сравнению с другими протоколами, использующими фидерные клетки, в которых мы пропускаем этап изоляции NK-клеток до расширения NK-клеток. Этот протокол может обеспечить достаточное количество NK-клеток и CAR-NK для иммунотерапии.
Этот метод обладает высокой воспроизводимостью. Тем не менее, использование свежих, новых исходных материалов и забота о том, чтобы не беспокоить NK-клетки в течение первых нескольких дней расширения, имеет решающее значение. Начните с выявления и секционирования жизнеспособных областей ткани с использованием стерильного хирургического оборудования для получения лимфоцитов.
Затем поместите разрезанные ткани в 30 миллилитров HBSS без кальция или магния и держите ткань на льду до готовности к выделению. Работая внутри шкафа биобезопасности, измельчите ткань на кубики размером менее 0,5 сантиметра стерильными лезвиями бритвы и щипцами. Поместите измельченные кусочки ткани, не более 4 грамм, в тканевые диссоциаторные трубки и добавьте 10 миллилитров коллагеназы IV к кусочкам ткани.
Чтобы тщательно измельчить ткань, обработайте трубки тканевого диссоциатора диссоциатором тканей при температуре 37 градусов Цельсия. После удаления трубок из тканевого диссоциатора тритурируют измельченную ткань через 40-микронный нейлоновый клеточный сетчатый фильтр, используя заднюю часть 5-миллилитрового шприца. Отбросьте крупные непереваренные фрагменты.
Открутите собранный элюент при 400G в течение 5 минут при комнатной температуре и аспирируйте супернатант перед повторным использованием клеточных гранул в 30% покрытом поливинилпирролидоном кремнеземе для удаления жировых клеток. Раскрутите клетки, как описано до повторного использования клеточной гранулы в 9 миллилитрах среды R-10. Чтобы отделить лимфоциты от эритроцитов и полиморфноядерных клеток, аккуратно наложите клеточную суспензию на 4 миллилитра Фиколла или среды разделения лимфоцитов.
Отделите слои центрифугированием при 400G в течение 23 минут при комнатной температуре с выключенным ускорением и торможением. Затем тщательно декантируют верхний средний слой и собирают интерфазу, содержащую инфильтрирующие ткани лимфоциты. Промыть клетки 10 миллилитрами среды и приступить к анализу или первичному природному киллеру, или NK, протоколу расширения клеток.
Промыть мононуклеарные клетки периферической крови, или PBMCs, и 100 гамма-облученных 221-mIL-21 клеток отдельно центрифугированием при 400G в течение 5 минут 10 миллилитрами среды R-10. После центрифугирования сохраните 1 х 10 до 6-го ПБМК для проточной цитометрии и смешайте 5 х 10 к 6-м НБМК с 10 х 10 до 6-го 100 гамма-облученных 221-мИЛ-21 клеток в специальной 6-луночной пластине. Добавьте 30 миллилитров среды R-10, дополненной человеческим интерлейкином-2 и человеческим интерлейкином-15, к той же 6-луночной пластине и инкубируйте пластину при 37 градусах Цельсия с 5% углекислым газом, заменяя среду каждые 3-4 дня.
Во время инкубации регистрируйте общий естественный киллер периферической крови, или PBNK, жизнеспособность числа клеток и выполняйте проточную цитометрию каждые 3-4 дня, чтобы рассчитать скорость расширения NK-клеток. Добавьте 1,8 x 10 к 6-й ячейке 293T в 11 миллилитрах среды D-10 на обработанную 100-миллиметровую пластину и инкубируйте ячейки 293T при 37 градусах Цельсия с 5% углекислого газа. В трубке объемом 1,70 миллилитра смешайте 470 микролитров восстановленной сывороточной среды с 30 микролитрами трансфекционного реагента.
В отдельной трубке объемом 1,70 миллилитра добавьте 2,5 микрограмма плазмиды pRDF, 3,75 микрограмма плазмиды Pegpam3 и 2,5 микрограмма конструкции CAR в векторе SFG в восстановленную сывороточную среду, чтобы получить конечный объем 500 микролитров. Смешайте содержимое трубки с 1,70 миллилитровой трубкой, приготовленной ранее по каплям. После 15 минут инкубации при комнатной температуре добавьте 1 миллилитр смеси из трубки на пластину ячейки 293T по каплям и поместите пластину при 37 градусах Цельсия с 5% углекислого газа в течение 48-72 часов.
Разбавить белок ретронектина PBS до конечной концентрации от 50 до 100 мкг на миллилитр. Добавьте 500 микролитров разбавленного ретронектина в каждую лунку необработанной 24-луночной пластины. Затем запечатайте пластину с помощью парапленки и инкубируйте пластину при 4 градусах Цельсия в течение ночи.
На следующий день центрифугируйте ретронектиновую пластину при 2, 103G в течение 30 минут при 4 градусах Цельсия и выбросьте супернатант. После перекрытия каждой лунки 24-луночной пластины 1 миллилитра среды R-10 инкубируют пластину при 37 градусах Цельсия с 5% углекислым газом в течение 1 часа. Фильтруйте ранее трансфектированные клетки 293T с помощью фильтра 0,45 микрона для сбора супернатанта ретровируса.
Aliquot 2 миллилитра фильтрованного ретровирусного супернатанта в каждую лунку 24-луночной ретронектиновой пластины. Центрифугируйте 24-луночную ретронектиновую пластину при 2, 103G в течение 2 часов в предварительно нагретую центрифугу при 32 градусах Цельсия. Пока пластины центрифугируются, соберите расширенные ячейки PBNK с 0-го дня и подсчитайте клетки с помощью Trypan Blue.
Разбавляют расширенные ПБНК-клетки средой R-10, дополненной интерлейкином-2 и интерлейкином-15, до концентрации от 2,5 х 10 до 5-й - 5 х 10 до 5-й клетки на миллилитр. После центрифугирования 24-луночной ретронектиновой пластины частично аспирируют супернатант ретровируса из каждой скважины. Затем добавьте 2 миллилитра разбавленных расширенных ПБНК-клеток к каждой лунке.
Центрифугируйте пластину при 600G в течение 10 минут при 32 градусах Цельсия, прежде чем инкубировать пластину при 37 градусах Цельсия с 5% углекислым газом в течение 48-72 часов. Переместите ячейки из 24-луночной пластины в 50-миллилитровую центрифужную трубку, чтобы центрифугировать трубку при 400G в течение 5 минут. После повторного использования гранулы с 1 миллилитром среды R-10 переводят повторно суспендированные клетки на специальную 6-луночную пластину, содержащую 30 миллилитров среды R-10, дополненную интерлейкином-2 и интерлейкином-15.
Инкубируйте специальную 6-луночную пластину при 37 градусах Цельсия и 5% углекислого газа с освежающей средой и рассчитывайте скорость расширения NK-клеток каждые 3-4 дня. Было показано, что ячейки PBNK, расширенные на 221-mIL-21, расширяются почти в 5 x 10 до 4-х раз. А чистота NK-клеток поддерживалась на уровне около 85% на протяжении всего 21-дневного расширения.
До расширения надежность системы расширения 221-mIL-21 исследовали путем окрашивания PBMCs для анти-CD56 и анти-CD3, что показало чистоту клеток 7,09% для NK-клеток и высокий процент Т-клеток. На 4-й день НБМК и кокультуры 221-mIL-21 чистота НК была проверена перед трансдукцией CAR-NK. Клетки CAR-NK, окрашенные для анти-CD56, анти-CD3 и анти-человека-IgG, показали высокую популяцию NK-клеток на 7-й день и наблюдалась высокая эффективность трансдукции CAR примерно 70%.
На 18-й день экспрессия CAR в различных подмножествах была проверена с помощью проточной цитометрии. После расширения NK-клеток клетки могут использоваться для функциональных анализов in vitro или для экспериментов in vivo. Исследователь может использовать этот протокол для расширения NK и CAR-NK для пациентов с функциональным дефицитом NK, а также для других видов, таких как собаки.
Related Videos
10:44
Related Videos
49K Views
13:18
Related Videos
18.4K Views
04:17
Related Videos
626 Views
03:14
Related Videos
796 Views
09:01
Related Videos
12.4K Views
08:17
Related Videos
21.6K Views
11:11
Related Videos
11.2K Views
08:37
Related Videos
4.5K Views
06:53
Related Videos
3.4K Views
08:29
Related Videos
1.1K Views