-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Cancer Research
Естественный киллер (NK) и метод расширения клеток CAR-NK с использованием мембранно-связанной IL...
Естественный киллер (NK) и метод расширения клеток CAR-NK с использованием мембранно-связанной IL...
JoVE Journal
Cancer Research
This content is Free Access.
JoVE Journal Cancer Research
Natural Killer (NK) and CAR-NK Cell Expansion Method using Membrane Bound-IL-21-Modified B Cell Line

Естественный киллер (NK) и метод расширения клеток CAR-NK с использованием мембранно-связанной IL-21-модифицированной В-клеточной линии

Full Text
6,057 Views
11:02 min
February 8, 2022

DOI: 10.3791/62336-v

Minh Ma1,2, Saiaditya Badeti1, James K. Kim1, Dongfang Liu1,3

1Department of Pathology, Immunology and Laboratory Medicine,Rutgers-New Jersey Medical School, 2Department of Microbiology, Biochemistry & Molecular Genetics, Public Health Research Institute Center, New Jersey Medical School,Rutgers University, 3Center for Immunity and Inflammation, New Jersey Medical School,Rutgers-The State University of New Jersey

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Здесь мы представляем метод расширения естественного киллера периферической крови (PBNK), NK-клеток из тканей печени и химерных антигенных рецепторов (CAR)-NK-клеток, полученных из мононуклеарных клеток периферической крови (PBMCs) или пуповинной крови (CB). Этот протокол демонстрирует расширение NK и CAR-NK клеток с использованием питающих ячеек 221-mIL-21 в дополнение к оптимизированной чистоте расширенных NK-клеток.

Transcript

Этот протокол может значительно улучшить расширение функциональных, неисчерпывающих, похожих на память NK-клеток ex vivo по сравнению с другими фидерными клетками, основанными на системе расширения. Это более простой метод по сравнению с другими протоколами, использующими фидерные клетки, в которых мы пропускаем этап изоляции NK-клеток до расширения NK-клеток. Этот протокол может обеспечить достаточное количество NK-клеток и CAR-NK для иммунотерапии.

Этот метод обладает высокой воспроизводимостью. Тем не менее, использование свежих, новых исходных материалов и забота о том, чтобы не беспокоить NK-клетки в течение первых нескольких дней расширения, имеет решающее значение. Начните с выявления и секционирования жизнеспособных областей ткани с использованием стерильного хирургического оборудования для получения лимфоцитов.

Затем поместите разрезанные ткани в 30 миллилитров HBSS без кальция или магния и держите ткань на льду до готовности к выделению. Работая внутри шкафа биобезопасности, измельчите ткань на кубики размером менее 0,5 сантиметра стерильными лезвиями бритвы и щипцами. Поместите измельченные кусочки ткани, не более 4 грамм, в тканевые диссоциаторные трубки и добавьте 10 миллилитров коллагеназы IV к кусочкам ткани.

Чтобы тщательно измельчить ткань, обработайте трубки тканевого диссоциатора диссоциатором тканей при температуре 37 градусов Цельсия. После удаления трубок из тканевого диссоциатора тритурируют измельченную ткань через 40-микронный нейлоновый клеточный сетчатый фильтр, используя заднюю часть 5-миллилитрового шприца. Отбросьте крупные непереваренные фрагменты.

Открутите собранный элюент при 400G в течение 5 минут при комнатной температуре и аспирируйте супернатант перед повторным использованием клеточных гранул в 30% покрытом поливинилпирролидоном кремнеземе для удаления жировых клеток. Раскрутите клетки, как описано до повторного использования клеточной гранулы в 9 миллилитрах среды R-10. Чтобы отделить лимфоциты от эритроцитов и полиморфноядерных клеток, аккуратно наложите клеточную суспензию на 4 миллилитра Фиколла или среды разделения лимфоцитов.

Отделите слои центрифугированием при 400G в течение 23 минут при комнатной температуре с выключенным ускорением и торможением. Затем тщательно декантируют верхний средний слой и собирают интерфазу, содержащую инфильтрирующие ткани лимфоциты. Промыть клетки 10 миллилитрами среды и приступить к анализу или первичному природному киллеру, или NK, протоколу расширения клеток.

Промыть мононуклеарные клетки периферической крови, или PBMCs, и 100 гамма-облученных 221-mIL-21 клеток отдельно центрифугированием при 400G в течение 5 минут 10 миллилитрами среды R-10. После центрифугирования сохраните 1 х 10 до 6-го ПБМК для проточной цитометрии и смешайте 5 х 10 к 6-м НБМК с 10 х 10 до 6-го 100 гамма-облученных 221-мИЛ-21 клеток в специальной 6-луночной пластине. Добавьте 30 миллилитров среды R-10, дополненной человеческим интерлейкином-2 и человеческим интерлейкином-15, к той же 6-луночной пластине и инкубируйте пластину при 37 градусах Цельсия с 5% углекислым газом, заменяя среду каждые 3-4 дня.

Во время инкубации регистрируйте общий естественный киллер периферической крови, или PBNK, жизнеспособность числа клеток и выполняйте проточную цитометрию каждые 3-4 дня, чтобы рассчитать скорость расширения NK-клеток. Добавьте 1,8 x 10 к 6-й ячейке 293T в 11 миллилитрах среды D-10 на обработанную 100-миллиметровую пластину и инкубируйте ячейки 293T при 37 градусах Цельсия с 5% углекислого газа. В трубке объемом 1,70 миллилитра смешайте 470 микролитров восстановленной сывороточной среды с 30 микролитрами трансфекционного реагента.

В отдельной трубке объемом 1,70 миллилитра добавьте 2,5 микрограмма плазмиды pRDF, 3,75 микрограмма плазмиды Pegpam3 и 2,5 микрограмма конструкции CAR в векторе SFG в восстановленную сывороточную среду, чтобы получить конечный объем 500 микролитров. Смешайте содержимое трубки с 1,70 миллилитровой трубкой, приготовленной ранее по каплям. После 15 минут инкубации при комнатной температуре добавьте 1 миллилитр смеси из трубки на пластину ячейки 293T по каплям и поместите пластину при 37 градусах Цельсия с 5% углекислого газа в течение 48-72 часов.

Разбавить белок ретронектина PBS до конечной концентрации от 50 до 100 мкг на миллилитр. Добавьте 500 микролитров разбавленного ретронектина в каждую лунку необработанной 24-луночной пластины. Затем запечатайте пластину с помощью парапленки и инкубируйте пластину при 4 градусах Цельсия в течение ночи.

На следующий день центрифугируйте ретронектиновую пластину при 2, 103G в течение 30 минут при 4 градусах Цельсия и выбросьте супернатант. После перекрытия каждой лунки 24-луночной пластины 1 миллилитра среды R-10 инкубируют пластину при 37 градусах Цельсия с 5% углекислым газом в течение 1 часа. Фильтруйте ранее трансфектированные клетки 293T с помощью фильтра 0,45 микрона для сбора супернатанта ретровируса.

Aliquot 2 миллилитра фильтрованного ретровирусного супернатанта в каждую лунку 24-луночной ретронектиновой пластины. Центрифугируйте 24-луночную ретронектиновую пластину при 2, 103G в течение 2 часов в предварительно нагретую центрифугу при 32 градусах Цельсия. Пока пластины центрифугируются, соберите расширенные ячейки PBNK с 0-го дня и подсчитайте клетки с помощью Trypan Blue.

Разбавляют расширенные ПБНК-клетки средой R-10, дополненной интерлейкином-2 и интерлейкином-15, до концентрации от 2,5 х 10 до 5-й - 5 х 10 до 5-й клетки на миллилитр. После центрифугирования 24-луночной ретронектиновой пластины частично аспирируют супернатант ретровируса из каждой скважины. Затем добавьте 2 миллилитра разбавленных расширенных ПБНК-клеток к каждой лунке.

Центрифугируйте пластину при 600G в течение 10 минут при 32 градусах Цельсия, прежде чем инкубировать пластину при 37 градусах Цельсия с 5% углекислым газом в течение 48-72 часов. Переместите ячейки из 24-луночной пластины в 50-миллилитровую центрифужную трубку, чтобы центрифугировать трубку при 400G в течение 5 минут. После повторного использования гранулы с 1 миллилитром среды R-10 переводят повторно суспендированные клетки на специальную 6-луночную пластину, содержащую 30 миллилитров среды R-10, дополненную интерлейкином-2 и интерлейкином-15.

Инкубируйте специальную 6-луночную пластину при 37 градусах Цельсия и 5% углекислого газа с освежающей средой и рассчитывайте скорость расширения NK-клеток каждые 3-4 дня. Было показано, что ячейки PBNK, расширенные на 221-mIL-21, расширяются почти в 5 x 10 до 4-х раз. А чистота NK-клеток поддерживалась на уровне около 85% на протяжении всего 21-дневного расширения.

До расширения надежность системы расширения 221-mIL-21 исследовали путем окрашивания PBMCs для анти-CD56 и анти-CD3, что показало чистоту клеток 7,09% для NK-клеток и высокий процент Т-клеток. На 4-й день НБМК и кокультуры 221-mIL-21 чистота НК была проверена перед трансдукцией CAR-NK. Клетки CAR-NK, окрашенные для анти-CD56, анти-CD3 и анти-человека-IgG, показали высокую популяцию NK-клеток на 7-й день и наблюдалась высокая эффективность трансдукции CAR примерно 70%.

На 18-й день экспрессия CAR в различных подмножествах была проверена с помощью проточной цитометрии. После расширения NK-клеток клетки могут использоваться для функциональных анализов in vitro или для экспериментов in vivo. Исследователь может использовать этот протокол для расширения NK и CAR-NK для пациентов с функциональным дефицитом NK, а также для других видов, таких как собаки.

Explore More Videos

Исследование рака выпуск 180

Related Videos

Расширение, очистки и функциональной оценки периферической крови человека клетки NK

10:44

Расширение, очистки и функциональной оценки периферической крови человека клетки NK

Related Videos

49K Views

Искусственные антигенпрезентирующей клетки (AAPC) Активация опосредованной и расширение естественных клеток-T убийца

13:18

Искусственные антигенпрезентирующей клетки (AAPC) Активация опосредованной и расширение естественных клеток-T убийца

Related Videos

18.4K Views

Выделение естественных клеток-киллеров из ткани печени для селективной экспансии

04:17

Выделение естественных клеток-киллеров из ткани печени для селективной экспансии

Related Videos

626 Views

Ex vivo Экспансия естественных клеток-киллеров из мононуклеарных клеток периферической крови

03:14

Ex vivo Экспансия естественных клеток-киллеров из мононуклеарных клеток периферической крови

Related Videos

796 Views

Оптимизированная метод выделения и расширение Инвариантные естественных киллеров Т-клеток из селезенки мыши

09:01

Оптимизированная метод выделения и расширение Инвариантные естественных киллеров Т-клеток из селезенки мыши

Related Videos

12.4K Views

Проточной цитометрии на основе анализа на мониторинге NK клеточных функций

08:17

Проточной цитометрии на основе анализа на мониторинге NK клеточных функций

Related Videos

21.6K Views

Изоляция и расширение цитотоксических цитотинов индуцированных Killer T-клеток для лечения рака

11:11

Изоляция и расширение цитотоксических цитотинов индуцированных Killer T-клеток для лечения рака

Related Videos

11.2K Views

Очистка и расширение мышечных инвариантных естественных Т-киллеров для исследований in vitro и in vivo

08:37

Очистка и расширение мышечных инвариантных естественных Т-киллеров для исследований in vitro и in vivo

Related Videos

4.5K Views

Генерация естественных клеток-киллеров из стволовых клеток с расширенным потенциалом человека

06:53

Генерация естественных клеток-киллеров из стволовых клеток с расширенным потенциалом человека

Related Videos

3.4K Views

Разработка химерных антигенных рецепторов-естественных киллеров, нацеленных на грибковые инфекции с использованием невирусной транспозонной системы Sleeping Beauty

08:29

Разработка химерных антигенных рецепторов-естественных киллеров, нацеленных на грибковые инфекции с использованием невирусной транспозонной системы Sleeping Beauty

Related Videos

1.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code