July 22nd, 2022
DetectSyn - это непредвзятый, быстрый флуоресцентный анализ, который измеряет изменения относительного числа синапсов (до- и постсинаптического взаимодействия) между методами лечения или болезненными состояниями. Этот метод использует технику бесконтактной лигации, которая может быть использована как в культивируемых нейронах, так и в фиксированной ткани.
DetectSyn использует преимущества технологии бесконтактного лигирования для быстрого выявления изменений в синапсах. Мы также предоставляем протокол для анализа результатов. Основным преимуществом DetectSyn является то, как быстро результаты могут быть получены в больших областях ткани, которые могут быть проанализированы.
Для начала осторожно удалите блокирующий раствор пластиковой пипеткой Пастера, не нарушая клетки. Затем выровняйте большую пластиковую чашку Петри Парафильмом. А с помощью щипцов аккуратно перенесите крышку скользящих на Парафильм.
Добавьте 60 микролитров раствора первичного антитела в верхнюю часть крышки, гарантируя, что раствор антител не прольется по бокам крышки. Чтобы обеспечить влажность и предотвратить высыхание образцов во время инкубации, добавьте сверхчистую воду в меньшую чашку Петри и аккуратно поместите чашку вокруг крышки. Затем накройте большую чашку Петри и инкубируйте культивируемые клетки в течение одного часа при комнатной температуре.
После инкубации с первичным антителом используйте щипцы, чтобы осторожно отстукивать раствор первичного антитела от крышки на бумажное полотенце и переносить крышку на их оригинальную 24-луночную пластину, заполненную 500 микролитрами PBS. Затем промывайте образцы PBS три раза в течение 10 минут каждый с легким перемешиванием на орбитальном шейкере. После последней стирки переложите крышку обратно в большую чашку Петри и добавьте 40 микролитров раствора вторичного антитела в верхнюю часть крышки.
Накройте чашку Петри и высиживайте образцы при температуре 37 градусов цельсия в течение одного часа. Для лигирования, удерживая лигазу на холодной блокаде, разбавьте лигазу от 1 до 40 с помощью лигационного бульона и сразу же добавьте 40 микролитров смеси лигазы в крышку слипов. Накройте чашку Петри и инкубируйте образцы при температуре 37 градусов Цельсия в течение 30 минут.
Для усиления разбавляют полимеразу 1280 на холодном блоке с помощью амплификационного запаса. Затем добавьте 40 микролитров смеси для усиления в крышку и инкубируйте образцы в течение 100 минут при температуре 37 градусов Цельсия. Затем для монтажа опустите три микролитра монтажного носителя на слайд.
Отсоедините лишний буфер промывки от крышки и поместите крышку с ячейками вниз в монтажный носитель. Запечатайте боковые стороны небольшим количеством прозрачного лака для ногтей, чтобы удерживать крышку на месте. Для крепления нарезанной ткани аккуратно перенесите срез ткани на подготовленный слайд и уложите его ровно.
Затем опустите от 5 до 10 микролитров монтажной среды на срез ткани. Поместите стеклянную крышку поверх среза ткани и запечатайте крышку прозрачным лаком для ногтей, как показано ранее. Для цифровой визуализации с помощью конфокального микроскопа отрегулируйте коэффициент усиления, смещение и мощность лазера для каждого флуоресцентного канала, чтобы уменьшить фоновый шум и усилить флуоресцентный сигнал.
Убедитесь, что флуоресцентный сигнал не перенасыщен. Для нейронов культуры на вкладке ND Acquisition нажмите кнопку Сохранить в файл. Затем в разделе Обзор выберите файл для сохранения изображения и введите имя файла.
Затем на вкладке Z выберите параметр Симметричный режим, определяемый диапазоном. Установите фокус на лучшую двухплоскостную карту и нажмите кнопку Relative, чтобы установить эту фокальную плоскость в качестве середины z-стека. Затем установите диапазон в пять микрометров с одним шагом микрометра и установите флажок Закрыть активный затвор во время движения Z.
На вкладке Длина волны выберите имя оптической кнопки с ранее настроенными параметрами сбора в разделе Оптическая конфигурация и нажмите кнопку Выполнить сейчас. Для разрезанной ткани в меню «Получить» выберите «Сканировать большое изображение», затем под панелью захвата выберите оптическую кнопку с ранее настроенными параметрами сбора. Кроме того, выберите правильную цель на этой панели.
Затем под панелью области и окуляром используйте клавиши со стрелками, чтобы установить границы интересующей области или рентабельности инвестиций. Затем нажмите «Сохранить большое изображение в файл» и создайте имя файла пути к сохранению для изображения. Наконец, на панели настройки убедитесь, что установлен флажок Многоканальный захват.
Затем выберите имя оптической кнопки с ранее настроенными параметрами сбора данных в разделе Оптическая конфигурация. В ImageJ откройте параметр порогового значения, перейдя в меню изображения, щелкнув Настроить, а затем Порог. Выберите параметр «Темный фон», если изображение имеет темный фон.
Затем отрегулируйте верхнюю и нижнюю границы порога в соответствии с ранее определенными оптимизированными настройками порога и нажмите «Применить». Для культивируемых клеток используйте канал MAP2 и инструмент ROI свободной руки, чтобы нарисовать ROI для каждого нейрона, включая дендриты и сому. Для нарезанной ткани нарисуйте свободную окупаемость инвестиций в изображение среза, которая инкапсулирует интересующую область.
Затем получите область ROI, открыв меню «Анализ» и нажав «Мера». Чтобы определить количество пунт в каждом ROI, используйте автоматический инструмент обнаружения, такой как анализ частиц. В меню Анализируемые выберите Анализируемые частицы и определите диаметр размера пункты.
Затем в раскрывающемся меню «Показать» выберите опцию «Наложенные маски», затем отметьте опцию «Отображать результаты» и нажмите «ОК». Чтобы разделить количество пунт на область отдельной рентабельности инвестиций, скопируйте и вставьте результаты для каждого изображения из всплывающего окна результатов в электронную таблицу. Определите, из какого файла и выборки получены данные, и разделите площадь ROI на количество пунт.
Наконец, для нормализации результатов для контрольных образцов усредняют результаты по контрольным образцам и делят полученные результаты всех образцов на среднее значение контрольного образца. Агонист GABAB, баклофен, необходим для эффективности in vitro быстрого антидепрессанта Ro-256981. Увеличение образования синапсов демонстрируется увеличением белого пунта.
Без баклофена увеличения образования синапсов не наблюдается. In vivo внутрибрюшинное введение быстрого антидепрессанта приводит к увеличению образования синапсов по сравнению с физиологическим контролем. В то время как некоторые пунты появляются на изображениях технического контроля, они, как правило, не такого размера, как показано белой спецификацией по сравнению с большой пунтой на других панелях.
Кроме того, эти пунты находятся не в том же месте, как показывают некоторые пунты, появляющиеся в соме. DetectSyn может выявлять изменения синапсов из-за болезненного состояния или медикаментозного лечения. Этот метод может помочь дать представление о любой области исследований, которая изучает расстройства, влияющие на развитие или разрушение синапсов.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
DetectSyn - это быстрый флуоресцентный анализ, предназначенный для измерения изменений в вовлечении синапсе при различных видах лечения или состояниях заболевания. Используя технику проксимального лигирования, он может применяться как к культивированным нейронам, так и к фиксированной ткани.
DetectSyn addresses a critical bottleneck in neuroscience drug discovery by enabling rapid, unbiased quantification of synapse density changes across large tissue areas. This capability supports target validation and mechanistic de-risking for CNS therapeutics, particularly in depression and neurodegenerative disease programs where synaptic integrity is a key biomarker. The method’s accessibility and scalability enhance translational continuity from in vitro models to preclinical tissue analysis.
DetectSyn fits within the discovery continuum from early target validation through lead identification to preclinical efficacy testing, where synaptic density serves as a mechanistic biomarker of neuronal circuit integrity.