16 марта 2022 г.
Настоящий протокол описывает одну мутацию M213L в Gja1, которая сохраняет полноразмерную генерацию Connexin43, но предотвращает трансляцию меньшей изоформы GJA1-20k с внутренней трансляцией.
Трудность с заменой одного остатка заключается в эффективном генотипировании животных, несмотря на разницу в единичном остатке. Специальное использование фермента рестрикции добавляет только один, быстрый и недорогой шаг к типичному генотипированию на основе ПЦР. Этот протокол может быть применен к любой другой мышиной модели с точкой мутации, если целевая последовательность распознается ферментом рестрикции, что обычно и происходит.
Отрежьте один-три миллиметра кончика хвоста чистыми ножницами и переложите его в 0,2-миллилитровую восьмиполосную ПЦР-трубку. После хранения образца хвоста, как описано в рукописи, храните его при Т-минус 20 градусах Цельсия до извлечения, примерно до недели. Добавьте 100 микролитров раствора лизиса тканей на пробирку и хорошо перемешайте, а затем открутите вниз с помощью настольной миницентрифуги при 2, 200 раз G в течение 10 секунд при комнатной температуре.
Убедитесь, что образцы хвоста погружены в раствор. Установите трубки на термоциклер, запрограммировав параметры лизиса, инактивации и удержания тканей. Храните тканевый лизат при четырех градусах Цельсия в течение недели, если ПЦР не может быть выполнена немедленно.
Готовят раствор ПЦР, содержащий пять микролитров воды без нуклеазы, 0,75 микролитра 10-микромолярной прямой и обратной праймеров и 7,5 микролитра мастер-смеси ПЦР на образец в новую ПЦР-трубку. Добавьте один микролитр предварительно приготовленного тканевого лизата в раствор ПЦР. Хорошо перемешайте раствор ПЦР и открутите его с помощью настольной миницентрифуги при 2, 200 раз g в течение 10 секунд при комнатной температуре.
Установите трубки на программируемый тепловой цикл. Как только реакция будет завершена, храните продукты ПЦР при четырех градусах Цельсия в течение одного-двух месяцев или примерно одного года при минус 20 градусах Цельсия. Приготовьте раствор фермента, содержащий семь микролитров воды без нуклеазы, два микролитра буфера CutSmart с силой 10X и один микролитр фермента рестрикции NlaIII.
Если образцов несколько, умножьте каждое содержимое, чтобы получилась смесь, и аликвотьте 10 микролитров на пробирку. Добавьте 10 микролитров ранее полученного продукта ПЦР к раствору фермента на пробирку. Хорошо перемешайте и раскрутите с помощью настольной мини-центрифуги, как показано ранее.
Установите трубки на программируемый тепловой циклер или тепловой блок. Хранить продукт после инкубации в холодных условиях. Добавьте 0,75 г агарозы в 50 миллилитра однопрочного буфера TAE.
Смешайте и нагрейте агарозу в микроволновой печи, пока она полностью не растворится. После охлаждения добавьте пять микролитров пятна ДНК и аккуратно перемешайте. Налейте 25 миллилитров агарозного геля в гелевую форму и дайте гелю затвердеть.
Загрузите в скважину 10 микролитров переваренного продукта ПЦР. Запустите гель со 100 вольт в течение 35 минут. Изобразите агарозный гель под ультрафиолетовым светом.
Электрофорез агарозы, выполненный с использованием переваренного продукта ПЦР, привел к образованию нескольких полос разных размеров в каждом генотипе, с двумя полосами в диком типе, тремя в гетерозиготных и одной в гомозиготных, соответственно. Тестовая инъекция с анализом бластоцисты привела к 76,9% успеха при введении 50 нанограммов на микролитр донорского олиго и 25% успеха при введении 25 нанограммов на микролитр того же донорского олигоса, соответственно. Наконец, инъекция 50 нанограммов на микролитр донорских олиго с осаждением этанола получила животных-основателей с 50%-ным успехом.
Очистка доноров олиго осаждением этанола снижала токсичность при сохранении высокой эффективности редактирования генома. Тщательное обращение и при добавлении небольшого количества реагентов очень важно. Убедитесь, что они правильно добавлены и хорошо перемешаны.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном протоколе описан метод генотипирования животных с единичной мутацией M213L в гене Gja1, которая приводит к продукции полноразмерного белка Connexin43, предотвращая при этом трансляцию более короткой изоформы GJA1-20k. В методе подчеркивается эффективность и экономическая целесообразность использования рестриктаз в сочетании с генотипированием на основе ПЦР.
Данный протокол позволяет проводить точное генотипирование точечных мутаций в моделях мышей, что необходимо для исследований по валидации мишеней, в которых требуется детальный анализ изоформ-специфической экспрессии белков. За счет устранения мешающих усеченных изоформ при сохранении функции полноразмерного белка этот метод позволяет снизить риски при изучении механизмов на ранних этапах поиска. Данный подход повышает прогностическую достоверность терапевтических гипотез, касающихся биологии Connexin 43 и связанных с ней путей щелевых контактов.
Данный метод вписывается в континуум открытий — от ранней валидации мишени до доклинических испытаний эффективности, особенно в тех случаях, когда необходимо разграничить функции специфических изоформ белков.