2 мая 2022 г.
Этот протокол обеспечивает простой, экономически эффективный метод выделения ДНК для анализа изменений микробиоты кишечника мышей во время развития аутоиммунного заболевания.
Предложенный метод выделения ДНК может служить для изучения динамики кишечной микробиоты в аутоиммунных заболеваниях мышиных моделей. Предлагается более универсальный, экономичный и эффективный метод получения ДНК из образцов фекалий, которые сопоставимы с коммерчески доступными наборами. Для начала выньте каждую мышь индивидуально из своей клетки, соберите фекальную гранулу прямо из ануса и храните ее при минус 80 градусах Цельсия до тех пор, пока она не будет обработана.
Обработайте образцы стерильными и чистыми щипцами, трубками и перчатками. Добавьте замороженную гранулу в предварительно взвешенную двухмиллитровую шнековую колпачок и запишите вес фекалий в граммах, который должен составлять от 0,02 до 0,05 г на фекальную гранулу. Добавьте к грануле тонкий слой стеклянных шариков размером 0,1 миллиметра, 500 микролитров лизисного буфера и 200 микролитров 20% додецилсульфата натрия.
Шарик взбивает трубку в течение четырех минут в гомогенизаторе, а затем три-пять минут вихря. Центрифугируйте трубки на короткое время, чтобы устранить пузырьки и пену. Чтобы извлечь ДНК из образцов микробиоты, перенесите 350 микролитров образца супернатанта в новую, 1,5 миллилитра защелкивающуюся колпачковую трубку, без какого-либо мусора.
Добавьте 500 микролитров фенола:хлороформа:изоамилового спирта в соотношении 25:24:1 и вихрь в течение одной минуты. После центрифугирования переведите 180 микролитров верхней водной фазы в новую, 1,5-миллилитровую трубку с защелкивающейся крышкой. Добавьте 180 микролитров хлороформа, инвертируйте и перемешайте.
Из этого переведите 180 микролитров водной фазы в новую трубку с защелкивающимся колпачком. В шкаф биобезопасности добавьте 180 микролитров холодного изопропанола и 36 микролитров пяти молярного ацетата аммония. Переверните его несколько раз, чтобы перемешать, и поместите трубку на лед на 20 минут.
Откажитесь от супернатанта с последующим промывкой гранул несколько раз 500 микролитрами холодного 70%-го этанола. Выбросьте супернатант, и высушите на воздухе трубку вверх ногами на папиросной бумаге в течение 20 минут, пока гранула не станет прозрачной. Суспендировать гранулу в 50 микролитрах молекулярной воды и нагревать жидкость при 37 градусах Цельсия в течение 10 минут, чтобы полностью растворить крупные гранулы ДНК.
После нагрева центрифугируйте эти трубки в 3, 400 раз G в течение одной минуты, чтобы извлечь капли конденсации из крышки. Измерьте концентрацию и получите соотношение 260/280 с помощью спектрофотометра. Соотношение для ДНК хорошего качества обычно составляет от 1,8 до двух.
Центрифугируют подготовленные образцы в 600 раз G в течение одной минуты при комнатной температуре, перед замораживанием при минус 80 градусах Цельсия в течение 24 часов. Затем отправьте 20 микролитров образцов с концентрациями от одного до 50 нанограмм на микролитр в Аргоннскую национальную лабораторию для секвенирования. Штамм мыши, не имеющий рецептора CX3CR1, имеет другой состав кишечной микробиоты по сравнению с мышами MRL/lpr дикого типа, MRL/lpr-CX3CR1 GFP/GFP, показывает значительные различия в определенных родах, относящихся к потенциально патогенным бактериям, таким как протеобактерии типа.
Будьте осторожны с загрязнением образца. Он должен быть стерильным. Также важна пипетка с точностью при переносе супернатанта в новую трубку.
Этот метод подходит для молекулярного анализа, такого как ПЦР, переваривание ферментов рестрикции или построение геномной библиотеки. При волчанке мы доказали сильную связь между микробиотой кишечника и прогрессированием волчанки.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном протоколе представлен простой и экономичный метод выделения ДНК для анализа изменений микробиоты кишечника мышей при развитии аутоиммунных заболеваний. Метод разработан для изучения динамики микробиоты кишечника на мышиных моделях аутоиммунных заболеваний.
Надежный анализ динамики микробиоты кишечника в моделях аутоиммунных заболеваний имеет решающее значение для понимания влияния факторов окружающей среды и генетики на прогрессирование заболевания. Данный экономически эффективный протокол выделения ДНК обеспечивает масштабируемую и воспроизводимую экстракцию микробной ДНК из фекальных образцов мышей, что позволяет проводить высокопроизводительные исследования микробиома в рамках доклинических исследований. Этот метод повышает достоверность прогнозов при установлении связи между изменениями микробиоты и аутоиммунными фенотипами, что способствует раннему обнаружению маркеров и разработке трансляционных стратегий.
Данный протокол изоляции ДНК применим на этапе от ранних открытий до доклинических исследований, что позволяет проводить надежный анализ микробиома на моделях мышей, предрасположенных к системной красной волчанке, а также способствует идентификации перспективных соединений и проведению исследований механизмов действия.