-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Выделение и прямое нейрональное перепрограммирование астроцитов мыши
Выделение и прямое нейрональное перепрограммирование астроцитов мыши
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Isolation and Direct Neuronal Reprogramming of Mouse Astrocytes

Выделение и прямое нейрональное перепрограммирование астроцитов мыши

Full Text
3,270 Views
07:25 min
July 7, 2022

DOI: 10.3791/64175-v

Bob A. Hersbach1,2,3, Tatiana Simon2, Giacomo Masserdotti1,2

1Institute of Stem Cell Research, Helmholtz Zentrum München,German Research Center for Environmental Health, 2Department of Physiological Genomics, Biomedical Center Munich,Ludwig-Maximilians University, 3Graduate School of Systemic Neurosciences, BioCenter,Ludwig-Maximilians University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a reliable protocol for generating highly enriched cultures of astrocytes from different regions of the central nervous system of postnatal mice. It details the process for converting these astrocytes into functional neurons through the forced expression of transcription factors, enabling researchers to investigate potential neuronal reprogramming without conflating variables such as cell purity.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cell Biology
  • Neuronal Development

Background

  • Astrocytes are a distinct cell type that can be targeted for direct neuronal programming.
  • The protocol aims to isolate astrocytes with high purity, reducing variability in experiments.
  • Understanding astrocyte reprogramming may provide insights into neural plasticity.
  • It involves specific enzymatic dissociation and culture conditions for optimal cell growth.

Purpose of Study

  • To establish a reliable method for reprogramming astrocytes into functional neurons.
  • To investigate the role of astrocyte purity in neuronal conversion.
  • To provide a detailed, replicable protocol for other researchers in the field.

Methods Used

  • Cell culture techniques were employed to isolate astrocytes from postnatal mouse spinal cords.
  • The study focused on both spinal cord and other CNS regions for astrocyte isolation.
  • The method included the use of enzymatic dissociation for cell retrieval.
  • Critical steps involve careful dissection, cell plating, and specific media preparations for differentiation.
  • Cultures were maintained under controlled temperature and CO2 conditions for optimal growth.

Main Results

  • Astrocyte cultures demonstrated 80-90% confluency within 7-10 days.
  • Converted neuronal cells displayed distinct morphology and neuronal markers at 21 days post-transduction.
  • Functional neurons were capable of firing action potentials and expressing mature neuronal markers.
  • The protocol enables the isolation of astrocytes while minimizing contamination from other cell types.

Conclusions

  • This study provides a robust method for reprogramming astrocytes into neurons, advancing the understanding of neural plasticity.
  • The detailed protocol allows for high-purity astrocyte cultures, essential for examining neuronal differentiation.
  • These findings have implications for future research into astrocyte functions and their potential therapeutic applications in neurodegenerative diseases.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of this astrocyte culture protocol?
This protocol ensures high purity of astrocyte cultures, allowing for more reliable results in neuronal programming studies.
How are the astrocytes isolated from the mouse spinal cord?
Astrocytes are isolated using a dissection protocol that includes enzyme treatment to dissociate cells and cleanup to ensure purity.
What types of cellular outcomes are measured?
Outcomes include cell morphology, expression of neuronal markers, and functionality such as action potential firing.
Can this method be adapted for other CNS regions?
Yes, the protocol is designed to isolate astrocytes from various CNS regions such as the cerebral cortex and cerebellum.
What limitations should researchers consider?
Care must be taken during dissections to avoid contamination and ensure the accuracy of results obtained from astrocyte cultures.

Здесь описан подробный протокол генерации высокообогащенных культур астроцитов, полученных из разных областей центральной нервной системы постнатальных мышей и их прямого преобразования в функциональные нейроны путем принудительной экспрессии факторов транскрипции.

Астроциты являются интересной аутогенной популяцией для прямого нейронного программирования. Данный протокол обеспечивает надежную методику выделения культуры астроцитов высокой чистоты из разных областей или центральной нервной системы. Этот протокол разработан и оптимизирован для исследования способности астроцитов перепрограммироваться в функциональные нейроны без смешивания факторов, таких как различия в чистоте астроцитов в разных стартап-популяциях.

Демонстрация процедуры будет сделана Бобом Херсбахом, постдоком в лаборатории, и Татьяной Саймон, которая будет оказывать техническую помощь в нашей лаборатории. Для начала поместите туловище усыпленной мыши в 35-миллиметровую чашку Петри и держите ее на льду. Откройте кожу ножницами и удалите позвонок мелкими ножницами.

Затем извлеките спинной мозг и поместите его в рассеченный буфер на льду. Под стереотаксическим рассеченным микроскопом с двукратным увеличением удаляют мозговые оболочки из изолированных спинных мозгов с помощью щипцов и переносят рассеченную и очищенную ткань спинного мозга в трубку С. Добавьте 50 микролитров фермента Р из набора диссоциации нервной ткани и 30 микролитров предварительно приготовленной ферментной смеси в каждую трубку С.

Переверните трубки C и поместите их на нагретый диссоциированный, гарантируя, что вся ткань собрана в крышке трубки. Ускользайте от клеток, удаляя колонку из сепаратора, добавляя 800 микролитров культуральной среды астроцитов и выталкивая клетки из колонны с включенным плунжером. Пластинчатые клетки в предварительно подготовленные культуральные колбы путем добавления 4,2 миллилитров культуральной среды астроцитов дополняют 10 нанограммами на миллилитры EGF и bFGF.

Нет необходимости покрывать колбы культуры для астроцитов, выделенных из других областей мозга, но это обеспечивает лучший субстрат для астроцитов, выделенных из спинного мозга. Культивируйте клетки при 37 градусах Цельсия и 5% углекислого газа. Выполните рассадку астроцитов под шкафом биологической безопасности с уровнем безопасности и подготовьте 24 пластины скважины со стеклянными крышками с поли-D-лизинным покрытием, как описано в текстовой рукописи.

Для покрытия изолируйте шесть спинных мозгов от мышей P2, что дает около 1 миллиона клеток. Аспиратные среды из колб культуры Т-12,5, содержащих культивируемые астроциты, промывают один раз 1x PBS. Отделите астроциты от колбы культуры, добавив 0,5 миллилитра 0,05% трипсина ЭДТА и инкубируйте при 37 градусах Цельсия в течение пяти минут.

Осторожно постучите по боковой стороне колбы, чтобы освободить клетки от поверхности колбы культуры, и проверьте отслоение под микроскопом яркого поля, используя 10-кратное увеличение. Прекратить трипсиназацию 2,5 миллилитрами культуральной среды астроцитов и собрать клеточную суспензию в 15 миллилитровых пробирках. Центрифуга при 300 RCF в течение пяти минут при четырех градусах Цельсия.

Аспират супернатант и повторно отправляют клетки в одном миллилитре культуральной среды астроцитов. Рассчитайте концентрацию клеток с помощью гемоцитометра или автоматизированной системы подсчета клеток. Исходя из количества клеток, разбавляют клеточную суспензию свежей астроцитарной средой, дополненной EGF и bFGF по 10 нанограмм на миллилитр на фактор.

Добавьте 500 микролитров клеточной суспензии в каждую лунку из предварительно подготовленных 24 луночных пластин и культивируемых клеток при 37 градусах Цельсия и 5% углекислого газа. Готовят нейронную дифференцировочную среду, добавляя один миллилитр добавки B27 к 49 миллилитрам основной питательной среды. Через 24-48 часов, в зависимости от того, были ли клетки трансдуцированы или трансфектированы, замените астроцитарную среду одной миллилитрной нейрональной дифференцировочной средой на лунку.

Культивируйте клетки при 37 градусах Цельсия с 9% углекислого газа. Для повышения эффективности перепрограммирования дополняют нейронную дифференцировочную среду форсколином и дорсоморфином до конечной концентрации 30 микромоляров и одного микромоляра соответственно при замене астроцитарной среды дифференцировочной средой. При выборе лечения клеток форсколином и дорсоморфином назначают вторую дозу дорсоморфина через два дня после начала лечения.

Добавьте эту вторую обработку непосредственно в культуральную среду. Первичные культуры астроцитов достигали от 80 до 90% слияния между семью и 10 днями после магнитной сортировки клеток и покрытия. На следующий день после покрытия клетки обычно покрывают от 50 до 60% поверхности покрытия.

Культуры в основном состояли из астроцитов на этом этапе, в то время как другие типы клеток, такие как нейробласты, практически отсутствовали. Через семь дней после трансдукции или трансфекции индуцированные нейрональные клетки были четко отличимы от астроцитов. Сома нейрональных клеток была меньше, чем непрограммированные Астроциты имели длительные процессы и были положительными для нейронного маркера, бета-три тубулина, и отрицательными для астроцитарного маркера GFAP.

Через 21 день после трансдукции или трансфекции многие индуцированные нейроны были способны запускать потенциалы действия и были положительными для зрелого нейронного маркера NeuN и пансинаптического белка Synaptophysin. Важно правильно проанализировать интересующий регион. Предотвращение загрязнения окружающих тканей.

Необходимо позаботиться об удалении мозговых оболочек и корневых ганглиев дорсо из изолированного спинного мозга. Этот метод может быть использован для выделения астроцитов из различных областей центральной нервной системы, включая кору головного мозга, дорсальный средний мозг и мозжечок. В будущем эта методика позволит нам расширить наши знания о регионарных астроцитах и их потенциале перепрограммирования в функциональные нейроны.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Неврология Выпуск 185

Related Videos

Выделение астроцитов: метод получения чистого препарата кортикальных астроцитов мыши

06:41

Выделение астроцитов: метод получения чистого препарата кортикальных астроцитов мыши

Related Videos

4.1K Views

Простой метод выделения и культивирования мышиных астроцитов

04:51

Простой метод выделения и культивирования мышиных астроцитов

Related Videos

810 Views

Прямое нейронное перепрограммирование мышиных астроцитов в нейроны

02:12

Прямое нейронное перепрограммирование мышиных астроцитов в нейроны

Related Videos

441 Views

Стереотаксическое введение вирусных векторов для перепрограммирования глиальных клеток в мышиной модели

03:58

Стереотаксическое введение вирусных векторов для перепрограммирования глиальных клеток в мышиной модели

Related Videos

392 Views

Выделение и культуры мышь кортикальной астроциты

11:25

Выделение и культуры мышь кортикальной астроциты

Related Videos

94.2K Views

Моделирование Астроцитома Патогенез In Vitro И В Vivo Использование кортикальной астроциты или нервные стволовые клетки из условного, генной инженерии мышей

10:13

Моделирование Астроцитома Патогенез In Vitro И В Vivo Использование кортикальной астроциты или нервные стволовые клетки из условного, генной инженерии мышей

Related Videos

13.9K Views

Быстрое Нейрональная Дифференциация индуцированные плюрипотентные стволовые клетки для измерения сетевой активности на микро-электродных Массивы

09:20

Быстрое Нейрональная Дифференциация индуцированные плюрипотентные стволовые клетки для измерения сетевой активности на микро-электродных Массивы

Related Videos

27.9K Views

Быстрые и конкретные иммуномагнитная изоляция первичной Олигодендроциты мыши

09:32

Быстрые и конкретные иммуномагнитная изоляция первичной Олигодендроциты мыши

Related Videos

14.5K Views

Сопутствующей изоляции первичных астроцитов и микроглии для протозоа паразитарной инфекции

09:34

Сопутствующей изоляции первичных астроцитов и микроглии для протозоа паразитарной инфекции

Related Videos

8.1K Views

В Utero Electroporation multiaddressable Genome-Integrating Color (MAGIC) Маркеры для индивидуализации кортикальной мыши астроцитов

06:47

В Utero Electroporation multiaddressable Genome-Integrating Color (MAGIC) Маркеры для индивидуализации кортикальной мыши астроцитов

Related Videos

6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code