-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Behavior
Измерение термогенеза скелетных мышц у мышей и крыс
Измерение термогенеза скелетных мышц у мышей и крыс
JoVE Journal
Behavior
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Behavior
Measuring Skeletal Muscle Thermogenesis in Mice and Rats

Измерение термогенеза скелетных мышц у мышей и крыс

Full Text
3,236 Views
07:56 min
July 27, 2022

DOI: 10.3791/64264-v

Christina A. Watts1, Alexandra Haupt1, Jordan Smith2, Emily Welch3, Aalia Malik3, Roman Giacomino3, Dinah Walter3, Nhlalala Mavundza1, Ashley Shemery1, Heather K. Caldwell1,3, Colleen M. Novak1,3

1School of Biomedical Sciences,Kent State University, 2College of Public Health,Kent State University, 3Department of Biological Sciences,Kent State University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Мышам и крысам хирургически имплантируют удаленные температурные транспондеры, а затем привыкают к тестовой среде и процедуре. Изменения мышечной температуры измеряются в ответ на фармакологические или контекстуальные стимулы в домашней клетке или во время предписанной физической активности (т. Е. Ходьбы на беговой дорожке с постоянной скоростью).

Transcript

Этот протокол имеет большое значение, поскольку он обеспечивает прямой и экономически эффективный метод измерения температуры скелетных мышц. Более того, его можно использовать в различных контекстах и при стимуляции фармакологическими средствами. Основным преимуществом данной методики является количество животных, которых можно тестировать одновременно.

Минимальное беспокойство животных, описанное здесь, позволяет избежать необходимости в высокотехнологичных методах, таких как инфракрасная термография. Люди могут испытывать трудности с измерением температуры животных в домашней клетке или на беговых дорожках во время движения. Это можно смягчить, практикуя методы измерения во время испытаний привыкания.

Начните с нагрева закрытых транспондеров между руками в перчатках и убедитесь, что вы сохраняете стерильность, работая с транспондерами. Измерьте температуру с помощью температурного сканера и проверьте, считывает ли транспондер изменения температуры. После обезболивания мыши, как описано в рукописи, используйте хирургические ножницы, чтобы сделать неглубокий разрез через кожу на правой задней конечности.

Поместите острый край предварительно запрограммированного и неограниченного стерильного транспондера в разрез, параллельно икроножной мышце. Убедитесь, что зеленый поршень обращен вверх и виден. Продолжайте проталкивать аппликатор транспондера в разрез до тех пор, пока отверстие аппликатора транспондера не перестанет быть видимым.

Поверните аппликатор на 180 градусов, чтобы зеленый поршень был обращен вниз к конечности мыши и больше не был виден экспериментатору. После того, как аппликатор транспондера помещен рядом или частично заключен в икроножную мышцу, толкните зеленый плунжер, позволяя давлению аппликатора направлять руку исследователя от мыши. Используя щипцы, держите открытую кожу вместе.

Поместите намотанный зажим со стерильным автоклипом, при необходимости согните. Используйте рассасывающиеся швы перед стерильным автоклипом, чтобы закрыть слой фасции. С помощью транспондерного считывателя проверьте температуру мышц мыши.

После удаления мыши из наркоза поместите ее в чистую домашнюю клетку поверх грелки и убедитесь, что домашняя клетка включает чайный шарик с полотенцем без запаха, чтобы начать привыкание. Назначьте место стояку в испытательной комнате и, чтобы избежать путаницы переменных, разделите стояки, установленные для получения различных контекстных стимулов, как минимум на два метра. Используя магнитные полосы, прикрепите хирургические листы через стояк и создайте визуальный барьер для минимизации колебаний температуры из-за активности мыши в ответ на движение экспериментатора.

Приготовьте чайные шарики с контролем и запахом хищника полотенцами. Перенесите животное в подготовленную испытательную комнату. Поместите животное в заранее назначенное место на стояке и избегайте изменения местоположения стояка между процедурами привыкания и тестирования.

Извлеките мяч из домашней клетки мыши. Восстановите клетку с помощью ткани или хирургической простыни и позвольте мыши акклиматизироваться в испытательном пространстве в течение одного-двух часов. После завершения акклиматизации используйте сканер для измерения и записи базовой температуры объекта.

Раскройте клетку и положите чайный шарик на пол домашней клетки. Замените крышку клетки и тканевое покрытие. Запустите секундомер и измерьте температуру испытуемых в том же порядке размещения чайного шарика.

Записывайте температуру и время часов измерений, следуя желаемым временным точкам. Подготовьте беговые дорожки к тестированию, убедившись, что шокеры работают. Убедитесь, что животные используют одну и ту же беговую дорожку для привыкания и тестирования процедур.

Переместите мышь в комнату для тестирования и позвольте ей акклиматизироваться в течение одного-двух часов в своей домашней клетке. Прежде чем переместить мышь на беговую дорожку, измерьте и запишите ее базовую температуру. Для легкого размещения и удаления прикрепите контрольные полотенца или полотенца с запахом хищника к потолку или под передней частью беговой дорожки.

Направьте мышь в назначенную беговую дорожку. Включите ремень беговой дорожки и шокер, запустите секундомер и проведите измерения испытуемых в том же порядке, в котором они были установлены на беговых дорожках. Записывайте температуру и время часов измерений, следуя желаемым временным точкам.

Как только тест будет завершен, выключите шокер и беговую дорожку и верните мышь в ее домашнюю клетку. Очистите беговую дорожку, используя жидкое моющее средство и воду, и удалите остаточный запах хищника. Повторные испытания по привыканию значительно снижали мышечную температуру мышей, показывая, что мыши привыкли к тестовой среде и протоколу.

Комбинированный анализ пола в четвертом испытании не показал существенной разницы между измерениями температуры до движения и исходными измерениями, демонстрируя эффективность одночасовой акклиматизации к контексту тестирования. Фармакологическая стимуляция с использованием окситоцина у мышей показала снижение мышечной температуры относительно исходного уровня с максимальным снижением через 30 минут. Мышечную температуру нормализовали через 60 минут после инъекции окситоцина.

Устойчивое повышение мышечной температуры наблюдалось у крыс Sprague Dawley после удаления запаха хищника в качестве контекстуальных стимулов. Крысы Sprague Dawley показали устойчивое повышение температуры в ответ на запах хорька по сравнению с контрольным запахом. В присутствии других неприятных запахов хорька производит и поддерживает устойчивое термогенное изменение по сравнению со всеми другими условиями.

При попытке этой процедуры крайне важно приучить животных к протоколу тестирования и запланировать один-два часа акклиматизации каждый день тестирования.

Explore More Videos

Поведение выпуск 185

Related Videos

Функциональной визуализации бурого жира у мышей с ФДГ micro-PET/CT

10:53

Функциональной визуализации бурого жира у мышей с ФДГ micro-PET/CT

Related Videos

19.4K Views

Состав тела и метаболических арретирование анализ высокого жира ФРС мышей

10:28

Состав тела и метаболических арретирование анализ высокого жира ФРС мышей

Related Videos

15.9K Views

Измерение температуры тела мыши с помощью пирометр инфракрасный пассивный системный анафилаксии и пищевой аллергии оценки

04:34

Измерение температуры тела мыши с помощью пирометр инфракрасный пассивный системный анафилаксии и пищевой аллергии оценки

Related Videos

26.1K Views

Измерение поглощения глюкозы инсулином и сокращением в изолированных и инкубированных зрелых скелетных мышцах мышей

08:01

Измерение поглощения глюкозы инсулином и сокращением в изолированных и инкубированных зрелых скелетных мышцах мышей

Related Videos

6.2K Views

Визуализация и количественная оценка коричневых и бежевых жировых тканей у мышей с использованием [18F]FDG Micro-PET/MR Визуализация

08:31

Визуализация и количественная оценка коричневых и бежевых жировых тканей у мышей с использованием [18F]FDG Micro-PET/MR Визуализация

Related Videos

3.3K Views

Определение базального расхода энергии и способности термогенных адипоцитов расходовать энергию у мышей с ожирением

06:57

Определение базального расхода энергии и способности термогенных адипоцитов расходовать энергию у мышей с ожирением

Related Videos

5.8K Views

Использование комбинации непрямой калориметрии, инфракрасной термографии и уровня глюкозы в крови для измерения термогенеза бурой жировой ткани у людей

04:54

Использование комбинации непрямой калориметрии, инфракрасной термографии и уровня глюкозы в крови для измерения термогенеза бурой жировой ткани у людей

Related Videos

1.6K Views

Инфракрасная термография для выявления изменений активности бурой жировой ткани

08:16

Инфракрасная термография для выявления изменений активности бурой жировой ткани

Related Videos

2.5K Views

Микрозонд внутритканевой радиометрии для измерения яркости in situ в живой ткани

09:10

Микрозонд внутритканевой радиометрии для измерения яркости in situ в живой ткани

Related Videos

809 Views

Артериовенозная метаболомика для измерения обмена метаболитов in vivo в бурой жировой ткани

02:55

Артериовенозная метаболомика для измерения обмена метаболитов in vivo в бурой жировой ткани

Related Videos

1.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code