28 сентября 2022 г.
Этот протокол позволяет выделять вирусные частицы Эпштейна-Барра из клеточной линии P3HR1 человека при индуцировании вирусного литического цикла форболом 12-миристатом 13-ацетатом. ДНК впоследствии извлекается из вирусного препарата и подвергается ПЦР в режиме реального времени для количественной оценки концентрации вирусных частиц.
Этот метод позволит нам выделить вирусные частицы Эпштейна Барра из клеточной линии P3HR1 и количественно оценить запас вируса, чтобы его можно было использовать для различных исследовательских целей. Основным преимуществом этой методики является то, что она обеспечивает относительно простой, недорогой, быстрый и надежный метод приготовления вирусного запаса ЭБ. Жизненно важные частицы, полученные с помощью этого метода, могут быть использованы во многих экспериментальных моделях in vitro или in vivo для диагностики EB.To начать, подготовить объем клеточной суспензии А в 15-миллилитровой конической трубке, отрегулировать объем таким образом, чтобы количество клеток составляло примерно 2,2 миллиона клеток для 100-миллиметровой культуральной пластины.
Добавьте в пробирку пять миллилитров полной питательной среды. Добавьте в пробирку 80 микролитров диметилсульфоксида. Затем добавьте в трубку 350 микролитров по одному миллиграмму на миллилитр ПМА.
Конечная концентрация PMA должна составлять 35 нанограмм на миллилитр, а концентрация DMSO должна составлять 0,08%. Добавьте 4,27 миллилитра питательной среды, чтобы общий объем составлял 10 миллилитров. Перемешайте содержимое трубки путем наклона, затем перенесите содержимое на 100-миллиметровую культуральную пластину. Оставьте пластину в инкубаторе клеточной культуры на пять дней при 37 градусах Цельсия, 5% углекислого газа.
Через пять дней в инкубаторе центрифугируют содержимое пластинки на 120 г в течение восьми минут, чтобы гранулировать клетки Соберите бесклеточный вирус, содержащий супернатант, и выбросьте клеточную гранулу. Снова центрифугируют супернатант при 16 000 Г в течение 90 минут при четырех градусах Цельсия, чтобы гранулировать вирусные частицы. Выбросьте супернатант и повторно суспендируйте гранулу вируса в пяти миллилитрах питательной среды, аликвотируйте вирусную суспензию в 20 пробирок, каждая из которых содержит 250 микролитров вирусной суспензии, и храните суспензию при минус 80 градусах Цельсия.
Для отделения белков от ДНК добавляют 500 микролитров насыщенного трисом фенола в одну из пробирок, содержащих вирусный препарат. Добавьте 100 микролитров воды и хорошо вихревое, чтобы получить розовую эмульсию. Центрифуга в течение 15 минут при 9, 650 G, соберите супернатант и перенесите его в новую 1,5-миллилитровую микроцентрифужную трубку.
Добавьте эквивалент одной десятой объема супернатанта холодного ацетата натрия и перемешайте путем пипетирования вверх и вниз. Затем добавляют один микролитр 20 миллиграммов на миллилитр гликогена и перемешивают путем пипетирования. Добавьте в три раза больше объема супернатанта холодного 100%-го этанола и храните его при минус 80 градусах Цельсия в течение ночи.
Выделяют центрифугу вирусной ДНК при 9, 650 г в течение 15 минут при четырех градусах Цельсия. Выбросьте супернатант для получения гранулы ДНК и промыть гранулу три раза одним миллилитом холодного 70%-го этанола. Снова центрифугируют при 9, 650 G в течение 15 минут и выбрасывают супернатант.
После воздушной сушки гранулы в течение примерно 10 минут повторно суспендируйте гранулу в 10-50 микролитрах дистиллированной воды без нуклеазы. Храните образцы при минус 20 градусах Цельсия для последующей обработки или при четырех градусах Цельсия в течение ночи, чтобы обеспечить максимальное растворение ДНК, с последующим хранением при минус 20 градусах Цельсия. После очистки постамента микроспектрофотометра с деликатной задачей стеклоочистителя загружают один микролитр подготовленного образца ДНК и отмечают концентрацию ДНК в образце.
Проверьте соотношения поглощения как на 260-280 нанометрах, так и на 260-230 нанометрах. ДНК будет поглощать на 260 нанометрах, белки на 280 нанометрах, а органические вещества, такие как фенол, будут поглощать на 230 нанометрах. Соотношение 1,8 к 2 считается достаточным для ПЦР в реальном времени.
Чтобы приготовить реакционные смеси ПЦР, поместите пять микролитров кибер-зеленой ПЦР-смеси в реальном времени в 0,2-миллилитровые ПЦР-трубки. Добавьте один микролитр 7,5 кролей пико на микролитр передней грунтовки и один микролитр 7,5 кролей пико на микролитр обратной грунтовки в каждую трубку. Здесь амплифицируется малый ген РНК 2 ВЭБ.
Для определения числа копий генома ВЭБ. Затем добавьте два микролитра воды без нуклеазы и один микролитр вирусной ДНК в одну из пробирок. Общий объем реакционной смеси составляет 10 микролитров.
Подготовьте другие трубки, которые будут использоваться в качестве стандартов с известными номерами копий генома EBV. Запускайте ПЦР-смеси, начиная с начального этапа активации при 95 градусах Цельсия в течение пяти минут. Затем 40 циклов при 95 градусах Цельсия в течение 15 секунд и при 58 градусах Цельсия в течение 30 секунд.
Экспортируйте все листы данных в виде CSV-файлов и рассчитайте журнал количества копий генома EBV на стандартную трубку и средних значений CQ. Сгенерируйте стандартную кривую qPCR, построив значения КТ стандартов на логарифм количества копий генома. Используя стандартное уравнение кривой, выведите количество копий генома ВЭБ в трубке ПЦР, содержащей индуцированную вирусную ДНК.
Наконец, используйте формулу, показанную на экране, чтобы рассчитать концентрацию индуцированного вирусного препарата. Здесь X — это количество копий генома ВЭБ, полученных из стандартной кривой, а F — фактор разбавления, используемый для настройки ДНК на реакцию ПЦР. Подсчет клеток с помощью камеры гемоцитометра показан здесь.
Четыре квадранта подсчитываются с помощью светового микроскопа. Здесь ячейки, обозначенные синим цветом, должны быть подсчитаны, в то время как клетки красным цветом не должны засчитываться, поскольку они касаются верхней, правой, нижней или левой границ квадранта. Было проведено оптимизационное испытание для определения концентраций PMA и диметилсульфоксида, которые дали бы наибольшее количество частиц EBV.
Концентрация ДМСО 0,8% и концентрация ПМА 35 нанограмм на микролитр были оптимальными и приводили к высоким концентрациям ВЭБ. Наша лаборатория использовала жизненно важные частицы, полученные с помощью этой техники, для изучения про-аутоиммунных или воспалительных реакций на этот вирус. А также разработать новые анти-ВЭБ агенты.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Этот протокол позволяет изолировать частицы вируса Эпштейна-Барр из человеческой клеточной линии P3HR1 путем индукции литического цикла вируса. Изолированные вирусные частицы затем могут быть оценены с использованием ПЦР в реальном времени.
Reliable isolation and quantification of Epstein-Barr virus (EBV) from the P3HR1 cell line enables standardized production of viral stocks for mechanistic studies and assay development. This protocol supports predictive confidence in EBV-related research by providing reproducible viral preparations for downstream applications. The method is positioned at the intersection of early discovery and translational research, facilitating portfolio decisions in virology and immunology pipelines.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by supplying reproducible EBV stocks for mechanistic studies, assay development, and translational research.