-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Доклиническое тестирование лекарств в масштабируемых 3D-инженерных мышечных тканях
Доклиническое тестирование лекарств в масштабируемых 3D-инженерных мышечных тканях
JoVE Journal
Bioengineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Bioengineering
Preclinical Drug Testing in Scalable 3D Engineered Muscle Tissues

Доклиническое тестирование лекарств в масштабируемых 3D-инженерных мышечных тканях

Full Text
4,448 Views
08:07 min
April 7, 2023

DOI: 10.3791/64399-v

Bonnie J. Berry*1, Shawn M. Luttrell*1, Charles T. Moerk1, Jesse Macadangdang1, Jessica Perez1, Kevin Gray1, Hamed Ghazizadeh1, Samir Kharoufeh1, Brandon Nelsen1, Nicholas A. Geisse1

1Curi Bio Inc.

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol outlines the generation of 3D engineered cardiac and skeletal muscle tissues, utilizing a magnetic sensing system for drug screening. The methods allow for the simultaneous assessment of 24 tissues, enhancing throughput in preclinical studies.

Key Study Components

Area of Science

  • Cardiac and skeletal muscle engineering
  • Preclinical drug screening
  • Tissue modeling

Background

  • 3D engineered muscle tissues provide a relevant in vitro model for studying muscle diseases.
  • Magnetic sensing technology enables high-throughput contractility measurements.
  • Improved consistency in tissue fabrication is crucial for reliable experimental outcomes.
  • Incorporation of motor neurons aims to create a neuromuscular junction model.

Purpose of Study

  • To develop a method for generating consistent 3D muscle tissues.
  • To facilitate drug discovery and disease modeling using human muscle tissues.
  • To enhance the throughput of contractility assessments in vitro.

Methods Used

  • Preparation of casting plates and thrombin solutions for tissue formation.
  • Cell dissociation and counting to ensure proper cell density.
  • Casting of muscle tissues using fibrinogen and thrombin solutions.
  • Incubation and transfer of tissues to differentiation media.

Main Results

  • Successful generation of 3D engineered muscle tissues with consistent contractility.
  • Maximal compaction of tissues observed by day 21.
  • Immunohistochemical analysis confirmed the presence of muscle-specific proteins.
  • High-throughput assessment of contractility across multiple tissues was achieved.

Conclusions

  • The developed protocol allows for efficient generation and assessment of muscle tissues.
  • This method can significantly aid in drug discovery and modeling muscle diseases.
  • Future work will focus on integrating motor neurons into the constructs.

Frequently Asked Questions

What is the significance of using 3D engineered muscle tissues?
3D engineered muscle tissues provide a more physiologically relevant model for studying muscle function and disease compared to traditional 2D cultures.
How does the magnetic sensing system work?
The magnetic sensing system measures the contractility of muscle tissues by detecting changes in magnetic fields as the tissues contract.
What are the advantages of this high-throughput method?
This method allows simultaneous assessment of multiple tissues, increasing efficiency and reducing the time needed for drug screening.
Can this method be applied to other types of tissues?
While this protocol focuses on muscle tissues, the principles may be adapted for other tissue types in future studies.
What challenges are associated with tissue fabrication?
Challenges include ensuring tissue attachment, avoiding air bubbles, and achieving uniform tissue deposition.
What future directions does this research aim to explore?
Future research will explore integrating motor neurons to create a neuromuscular junction model and further applications in gene therapy.

Этот протокол предоставляет методы создания 3D-инженерных тканей сердца и скелетных мышц и описывает их использование в доклинических методах скрининга лекарств. Описанные методы используют магнитно-сенсорную систему для облегчения одновременной оценки 24 тканей параллельно.

Наша платформа использует 3D-инженерные мышечные ткани и магнитное сенсорное оборудование для одновременного измерения сократительной способности в 24 лунках. Это обеспечивает более высокопроизводительный метод оценки новых терапевтических средств in vitro с использованием мышечных тканей человека. Наш метод литья улучшает консистенцию и воспроизводимость при изготовлении 3D-инженерных мышечных тканей.

Мы разработали расходную 24-луночную литейную пластину, оснащенную магнитным чувствительным оборудованием для измерения и анализа сократимости на нашей платформе. Этот метод может дать ценную информацию о моделировании заболеваний in vitro, открытии лекарств и генной терапии для любого мышечного заболевания, которое влияет на сократительную способность. В настоящее время мы включаем двигательные нейроны в наши 3D-конструкции, чтобы создать модель нервно-мышечного соединения.

Для начала поместите предварительно охлажденный набор для отливки тканей на холодный блок или лед внутри колпака для клеточной культуры. Положите литейную пластину плашмя на лед. Добавьте тромбин в базовую среду, чтобы получить раствор тромбина, и переместите пострешетку с литейной пластины на новую стерильную 24-луночную пластину.

Налейте пипеткой 50 микролитров раствора тромбина в каждую предварительно охлажденную лунку литейной пластины и поместите решетку обратно на набор. Отложите кастинговый набор на лед. Затем добавьте 500 миллилитров среды RPMI, 10 миллилитров B27 и 2,5 грамма аминокапроновой кислоты или ACA, чтобы приготовить сердечную среду EMT.

Выньте среду EMT, которая будет использоваться для отливки тканей, и добавьте в нее 10 микромолярных ингибиторов ROCK. Подготовьте скелетную среду EMT, добавив 50 миллилитров среды F10 и 0,25 грамма аминокапроновой кислоты или ACA для первичных миобластов. Используйте 0,1 грамма ACA для миобластов, полученных из IPSC.

Затем стерильно фильтруют литейную среду, содержащую ACA. Нагрейте реагент для диссоциации клеточной культуры и равный объем среды EMT до 37 градусов Цельсия. Эта нагретая среда EMT будет использоваться для разбавления реагента диссоциации.

Промойте клетки PBS и добавьте подогретый реагент диссоциации, чтобы поднять клетки. Инкубируйте при температуре 37 градусов по Цельсию в течение пяти минут или до тех пор, пока клетки не поднимутся, и проверяйте культуры каждые две-три минуты, постукивая по стенке тарелки. Как только клетки поднимутся, перенесите их в коническую трубку объемом 50 миллилитров.

Тритурат с помощью пипетки P-1000 для обеспечения одноклеточной суспензии. Промойте тарелку и колбу дополнительной средой EMT, чтобы собрать оставшиеся клетки и добавить их в коническую трубку. Опять же, тритуируйте клетки, чтобы обеспечить одноклеточную суспензию.

Добавьте среду EMT, чтобы остановить процесс диссоциации, а затем возьмите образцы клеточных суспензий для подсчета клеток. Выполняйте подсчет клеток с помощью автоматического счетчика клеток или гемоцитометра трипанового синего цвета. Вращайте клетки при 200 г в течение четырех минут, аспирируйте надосадочную жидкость и повторно суспендируйте клетки в пяти миллилитрах базовой среды EMT, чтобы удалить остаточный реагент диссоциации.

После повторного центрифугирования в течение четырех минут аспирируйте надосадочную жидкость и приготовьте клеточные суспензии с соответствующей плотностью. Рассчитайте объемы каждого клеточного раствора, необходимые для составления нужного количества тканей, и нанесите рассчитанные объемы клеток пипеткой в коническую трубку объемом 15 миллилитров. Добавьте 10 микролитров фибриногена на ЕМТ в клеточную суспензию и поместите ее на лед.

Убедитесь, что каждая ЕМТ имеет 90 микролитров клеточной суспензии, 10 микролитров фибриногена и 50 микролитров раствора тромбина в окончательной тканевой конструкции. В колпаке для культивирования клеток снимите крышку набора для литья тканей и поместите литейную пластину с решеткой, лежащей плашмя на льду. Смешайте клеточную смесь фибриногена и наберите 100 микролитров пипеткой Р-200.

Добавьте 100 микролитров смеси в лунки, приготовленные с 50 микролитрами раствора тромбина, и тритурируйте пять раз, чтобы хорошо перемешать. Не проталкивайте пипетку дальше первой упора и не снимайте наконечник после растирания, чтобы избежать образования пузырьков. Смешайте клеточную суспензию в конической трубке перед отливкой каждой ткани.

Держите решетку и пластину для литья одновременно указательным и большим пальцами одной руки, чтобы избежать движения решетки, или оставьте пластину плоской на льду и качните ведро со льдом, чтобы заглянуть в литейную пластину. Повторите то же самое со свежим наконечником P-200 для каждой ткани, пока все ткани не будут отлиты. Аккуратно перенесите семенной набор в инкубатор и выдерживайте при 37 градусах Цельсия в течение 80 минут.

Затем подготовьте свежую 24-луночную пластину с двумя миллилитрами на лунку среды EMT для сердечных тканей и инкубируйте пластину при 37 градусах Цельсия, чтобы нагреть среду. После 80-минутной инкубации аккуратно добавьте один миллилитр среды EMT к краю заливных лунок и выдерживайте еще 10 минут при температуре 37 градусов Цельсия. Через 10 минут инкубации осторожно приподнимите столбовую решетку и перенесите ткани из литейной пластины в подготовленную 24-луночную пластину с подогретой средой.

Наконец, верните пластины с тканями в инкубатор клеточных культур при температуре 37 градусов Цельсия. Неудачное производство ЕМТ может варьироваться от катастрофических отказов, таких как отслоение тканей от столбов, до более тонких структурных дефектов, таких как пузырьки воздуха и неравномерное осаждение тканей вокруг обоих постов. Конструкция EMT через день после отливки показана здесь.

Ткани скелетных мышц переносили в среду дифференцировки, начиная с нулевого дня слияния клеток и гидрогелевого уплотнения. С седьмого по 28-й день одна и та же ЕМТ показала немного меньшую общую длину между двумя стойками и меньшую ширину при измерении через среднюю часть ЕМТ. Четыре пластины тканей отслеживались в течение 21 дня, сравнивая диаметр ЕМТ во время уплотнения.

Временные точки показывают постоянный размер ЕМТ между пластинами. Максимальное уплотнение достигается на 21-й день, когда происходит стабилизация ремоделирования матрицы. Здесь изображена иммуногистохимия ЕМТ.

ЕМТ фиксировали на 10-й день посева и вводили в парафин. Тонкие поперечные срезы окрашивали антителами против миозина, тяжелой цепи и дистрофина перед визуализацией. Эти графические изображения представляют собой среднюю абсолютную силу подергивания, измеренную сердечными и скелетными ЕМТ с течением времени.

Здесь показано лечение острым и хроническим доксорубицином в искусственно сконструированных тканях сердца. Три различные концентрации дозы Dox доставлялись либо болюсно, либо непрерывно вводились в искусственные ткани сердца в течение 27 дней. Доза-реакция на BDM в сконструированных тканях скелетных мышц представлена на этом рисунке.

Частота сердечных сокращений или частота подергивания прекращаются дозозависимым образом в тандеме с прекращением сократительной силы, что указывает на кардиотоксичность при воздействии этого соединения на ЕМТ. Самое важное, что нужно помнить при отливке тканей, - это всегда держать все холодным, включая клеточную суспензию и реагенты, а также держать пострешетку полностью неподвижной после начала отливки.

Explore More Videos

Биоинженерия выпуск 194

Related Videos

Инженерные скелетных мышечных тканей из мышиных миобластов клеток-предшественников и применения электрической стимуляции

08:38

Инженерные скелетных мышечных тканей из мышиных миобластов клеток-предшественников и применения электрической стимуляции

Related Videos

21.7K Views

Тканевая инженерия человеческого 3D В пробирке Опухоль Тестовая система

11:12

Тканевая инженерия человеческого 3D В пробирке Опухоль Тестовая система

Related Videos

21.9K Views

Комбинированный 3D Tissue Engineered In Vitro / В Silico Lung Опухоль модель для прогнозирования эффективности наркотиков в конкретных мутационные Backgrounds

13:34

Комбинированный 3D Tissue Engineered In Vitro / В Silico Lung Опухоль модель для прогнозирования эффективности наркотиков в конкретных мутационные Backgrounds

Related Videos

10.7K Views

Автоматизированный анализ Сужение человеческого Engineered ткани сердца для скрининга сердца безопасности лекарственных средств

10:39

Автоматизированный анализ Сужение человеческого Engineered ткани сердца для скрининга сердца безопасности лекарственных средств

Related Videos

13.7K Views

3D Microtissues для инъекций восстановительной терапии и высок объём наркотиков скрининг

11:28

3D Microtissues для инъекций восстановительной терапии и высок объём наркотиков скрининг

Related Videos

10.8K Views

Физиологические пациент выведенных 3D сфероидов для анти-неопластических наркотиков скрининга целевой рак стволовых клеток

10:03

Физиологические пациент выведенных 3D сфероидов для анти-неопластических наркотиков скрининга целевой рак стволовых клеток

Related Videos

9.4K Views

Изготовление 3D-матриц микротизвестков сердца с использованием кардиомиоцитов человека, фибробластов сердца и эндотелиальных клеток

10:37

Изготовление 3D-матриц микротизвестков сердца с использованием кардиомиоцитов человека, фибробластов сердца и эндотелиальных клеток

Related Videos

7.5K Views

Оценка функциональных показателей здоровья скелетных мышц в микротизносах скелетных мышц человека

09:30

Оценка функциональных показателей здоровья скелетных мышц в микротизносах скелетных мышц человека

Related Videos

4.8K Views

Разработка и характеристика оптогенетической модели нервно-мышечного соединения человека

11:07

Разработка и характеристика оптогенетической модели нервно-мышечного соединения человека

Related Videos

2.9K Views

Генерация, высокопроизводительный скрининг и биобанкирование индуцированных человеком плюрипотентных сердечных сфероидов, полученных из стволовых клеток

09:23

Генерация, высокопроизводительный скрининг и биобанкирование индуцированных человеком плюрипотентных сердечных сфероидов, полученных из стволовых клеток

Related Videos

5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code