-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Создание модели повреждения спинного мозга мышиным ушибом, основанной на минимально инвазивной те...
Создание модели повреждения спинного мозга мышиным ушибом, основанной на минимально инвазивной те...
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Establishing a Mouse Contusion Spinal Cord Injury Model Based on a Minimally Invasive Technique

Создание модели повреждения спинного мозга мышиным ушибом, основанной на минимально инвазивной технике

Full Text
6,144 Views
07:17 min
September 7, 2022

DOI: 10.3791/64538-v

Elham Yilizati-Yilihamu Elzat1, Xiangchuang Fan1, Zimeng Yang1, Zhongze Yuan1, Yilin Pang2, Shiqing Feng1,2

1Department of Orthopaedics,Qilu Hospital of Shandong University, 2Department of Orthopaedics,Tianjin Medical University General Hospital

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a novel minimally invasive technique for creating a reproducible spinal cord injury model, effectively reducing operative damage and preserving anatomical morphology in experimental animals. The method enhances the reliability of results, thereby facilitating investigations into disease repair mechanisms.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Spinal Cord Injury
  • Experimental Models

Background

  • Spinal cord injuries often lead to drastic functional impairments.
  • Current techniques may cause excessive physical damage during procedures.
  • Minimally invasive methods are essential for maintaining tissue integrity.
  • Reliable models are crucial for exploring reparative mechanisms post-injury.

Purpose of Study

  • To establish a reliable and reproducible spinal cord injury model.
  • To reduce operative trauma while maintaining anatomical details.
  • To facilitate future research on spinal injury mechanisms and reparative strategies.

Methods Used

  • The surgical platform includes an operating table, stabilizer, and an impactor tip.
  • The model utilizes a mouse, targeting spinal cord injury by using different weights for varying injury severity.
  • Step-by-step procedural details include laminectomy and careful exposure of the spinal cord.
  • Tissue responses were monitored through microscopic examination post-injury.
  • This technique allows for controlled observation of the injury process and associated anatomical changes.

Main Results

  • Different severities of injury exhibited distinct morphological changes in spinal cord tissue.
  • Observations revealed variations in white matter integrity and the response of surrounding tissues.
  • Scar formation dynamics were noted, correlating with injury severity.
  • The model demonstrated effective visualization of injury progression and tissue response.

Conclusions

  • The study successfully demonstrates a less invasive approach to spinal cord injury modeling.
  • This technique enables more accurate studies on injury mechanisms, paving the way for better therapeutic strategies.
  • Enhancements in model reproducibility contribute significantly to neuroscience research and its applications in spinal repair.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of this spinal cord injury model?
The model minimizes operative damage while preserving anatomical structures, leading to more reliable experiments.
How is the spinal cord injury implemented in this study?
Injury is induced by dropping calibrated weights from a specified height using an impactor assembly, which allows precise control over injury severity.
What types of data are obtained from using this model?
The model provides data on tissue morphology, degree of injury, and the response of the spinal cord over time, observable under a microscope.
How can this method be adapted for other types of research?
This technique can be modified for other models of spinal injury or adapted for various experimental conditions by changing weight and procedural steps.
What are some key limitations of this model?
While minimally invasive, careful operator skill is needed to avoid unintended damage, and the model may not fully replicate human spinal cord injuries.
What implications does this study have for understanding spinal cord repair?
The findings contribute to a better understanding of spinal cord injury mechanisms, which may inform future therapeutic approaches and interventions.
Who conducted the procedures described in the study?
The procedures were performed by postgraduate and undergraduate students, indicating the method's accessibility for training purposes.

Минимально инвазивные методы и простое лабораторное устройство улучшают воспроизводимость модели повреждения спинного мозга, уменьшая оперативное повреждение экспериментальных животных и позволяя поддерживать анатомическую морфологию. Этот метод имеет смысл, поскольку надежные результаты и воспроизводимая процедура облегчают исследование механизмов репарации заболеваний.

Минимально инвазивные методы уменьшают токи нестабильности, вызванные избыточными физическими повреждениями. Культивирование для точного анализа микроокружения спинного мозга. Этот метод сочетает в себе классический принцип отмены Алана с точной процедурой операции для создания воспроизводимой модели повреждения спинного мозга.

Основной целью этого протокола является ознакомление с анатомическим строением. За которым легче следить даже таким второкурсникам, как я. Продемонстрировать процедуру будет аспирант Xiangchuang Fan A из больницы Qilu, Zhongze Yuan и Zimeng Yang.

Оба студента из Медицинского колледжа Чилу Шаньдунского университета. Для начала сборка платформы с хирургическим операционным столом над стабилизатором t-bral и наконечником ударного элемента. Положите наконечник, который позволяет точно расположить спинной мозг в рукаве.

Выберите правильные массы весовых капель для эксперимента, которые составляют 1,3, 2,0 и 2,7 грамма для легкой, умеренной и тяжелой групп соответственно. Подключите штифт к отверстиям капли веса. Соберите каплю веса в верхнюю часть гильзы с помощью вытягивающего штифта, установленного в пазе на кронштейне XYZ, так что после завершения определения местоположения вес освобождается, чтобы ударить по кончику ударного элемента.

Следовательно, контузия спинного мозга, а также изменения в спинном мозге наблюдаются под микроскопом. Уложите мышь в положение лежа в отведенной части операционного стола. Исследуйте 13-е ребро с одной стороны от костной части под операционным микроскопом.

Исследуйте остистый отросток в средней линии, слегка коснувшись области костовертебрального угла, а затем к ростралю, чтобы найти межостистое пространство между 12-м и 13-м грудными позвонками. Исследуйте межостистое пространство между 9-м и 10-м грудными позвонками от пространства 12-го и 13-го грудных позвонков до ростральной стороны. Рассечение параспинальной мышцы вдоль остистого отростка Т9 до переднего и заднего фасеточных суставов обеих сторон микроножными ножницами.

Втягивайте параспинальные мышцы микроретракторами и очищайте мягкие ткани на пластинке, а также в остистом пространстве Т8 до Т9 и Т9 до Т10 микроножницами. Для выполнения Т9-ламинэктомии зажмите остистый отросток Т9 микрохирургическими щипцами. Слегка приподнятые вверх вставляют микроножницы параллельно, вдоль правой спинной боковой стороны пластинки.

Избегая повреждения спинного мозга, и отрежьте пластинку микроножными ножницами. Повторите с левой стороны, и спинной мозг может быть обнажен. Перед фиксацией позвонка ослабьте универсальную руку и медленно зажмите 9-10 фасеточные суставы по обеим сторонам позвонка микромоскитными щипцами стабилизатора позвонков.

Затяните винты на микромоскитных щипцах, и позвонок таким образом стабилизируется. Отрегулируйте спинной мозг в горизонтальной плоскости. Подтяните универсальную руку и позвонок зафиксируется.

Как только спинной мозг уровня Т9 обнажается, и позвонок фиксируется, цельтесь в спинной мозг кончиком внутри рукава под операционным микроскопом. После обнаружения межостистого пространства Т12 до Т13 опускают гильзу до тех пор, пока конец ударного элемента не будет соответствовать отметке на окне наблюдения, и не будет достигнута указанная высота в 22 миллиметра. Вытащите штифт, чтобы освободить вес.

Удалите ударник, когда ушиб сделан и наблюдайте за степенью травмы спинного мозга под операционным микроскопом. В легкой группе изменение светло-красного цвета можно увидеть в умеренной группе. Вид травмы демонстрирует темно-красный цвет через три-четыре секунды, и, возможно, можно наблюдать возвышение.

В тяжелой группе могут появиться сразу темно-красные проявления, и проявляется явное возвышение в твердой мозговой оболочке, но твердая мозговая оболочка все еще находится в последовательной форме. Площадь поражения, постепенно увеличивалась значительно от легкой до тяжелой группы в первые сутки после травмы. Между тем, непрерывность белого вещества по обе стороны спинного мозга была лучше в легкой группе.

При этом наблюдаются небольшие круглые вакуоли, которые являются характеристиками интерстициального отека. В умеренной группе белое вещество демонстрировало плохую непрерывность, а структура вентрального белого вещества не была упорядочена. В тяжелой группе вентральное белое вещество проявляло более серьезные нарушения, и в центре травмы появился большой участок полости.

Кроме того, окружающие ткани показали очевидное заполнение эритроцитов, а красные кровяные клетки возле центрального канала собрались в полоски. Перекрывающиеся рубцы, образующие астроциты, были видны в центре всех трех групп травм. При этом длина травмированной области увеличивалась с тяжестью травмы, в то время как диаметр рубца уменьшался.

Это, говорит о наличии рубцовой контрактуры, которая может привести к уменьшению диаметра спинного мозга. Удаление мягких тканей перед и позади пластины максимально облегчает расслабление ламины и предотвращает повреждение спинного мозга при параллельном разрезании. Настоящий метод обеспечивает животную модель, которая является простой, воспроизводимой и менее инвазивной.

посттравматическое повреждение спинного мозга, особенно ушиб.

Explore More Videos

Неврология Выпуск 187 Травма спинного мозга минимально инвазивная Определение местоположения позвонков

Related Videos

Индукция ушиба спинного мозга у модели мыши с использованием коаксиальной платформы для травмы спинного мозга

02:13

Индукция ушиба спинного мозга у модели мыши с использованием коаксиальной платформы для травмы спинного мозга

Related Videos

775 Views

Модель минимального повреждения спинного мозга для изучения активации и миграции нейральных стволовых клеток

04:30

Модель минимального повреждения спинного мозга для изучения активации и миграции нейральных стволовых клеток

Related Videos

748 Views

Контролируемые травма шейного Laceration у мышей

07:28

Контролируемые травма шейного Laceration у мышей

Related Videos

17.1K Views

Neural трансплантации стволовых клеток в экспериментальной Contusive модели с повреждением спинного мозга

10:56

Neural трансплантации стволовых клеток в экспериментальной Contusive модели с повреждением спинного мозга

Related Videos

13.5K Views

Фототромбоза-индуцированной ишемии как модель с повреждением спинного мозга у мышей

08:27

Фототромбоза-индуцированной ишемии как модель с повреждением спинного мозга у мышей

Related Videos

14.7K Views

Неонатальной спинного мозга мыши Сжатие Травма Модель

13:31

Неонатальной спинного мозга мыши Сжатие Травма Модель

Related Videos

13.2K Views

Модель травматической травмы спинного мозга на мышах на мышах

07:59

Модель травматической травмы спинного мозга на мышах на мышах

Related Videos

11.7K Views

Нейросферы Assay для оценки активации эндогенного нервных стволовых клеток мыши модели минимальная травма спинного

09:08

Нейросферы Assay для оценки активации эндогенного нервных стволовых клеток мыши модели минимальная травма спинного

Related Videos

10.3K Views

Индукция полной трансекции типа травмы спинного мозга у мышей

06:51

Индукция полной трансекции типа травмы спинного мозга у мышей

Related Videos

9.4K Views

Минимально инвазивный, быстрый метод латеральной гемисекции спинного мозга для моделирования открытых повреждений спинного мозга у крыс

04:50

Минимально инвазивный, быстрый метод латеральной гемисекции спинного мозга для моделирования открытых повреждений спинного мозга у крыс

Related Videos

2.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code