RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/64572-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study investigates the metabolic status of human retinal pigment epithelial (H-RPE) cells, which is crucial for understanding their health and function. An optimized protocol for employing high-resolution respirometry to analyze real-time metabolic fluxes of H-RPE is presented.
Метаболический статус пигментных эпителиальных клеток сетчатки человека (H-RPE) отражает их здоровье и функцию. Здесь представлен оптимизированный протокол для изучения метаболического потока H-RPE в режиме реального времени с использованием респирометрии высокого разрешения.
Изучение биоэнергетических профилей оксфоса и гликолиза в режиме реального времени становится ключевым фактором в характеристике здоровья и функции RPE. Респирометрия высокого разрешения позволяет эффективно сравнивать метаболический статус нормального и больного РПЭ. Преимущество этого метода заключается в одновременном исследовании как оксфоса, так и гликолиза путем измерения скорости потребления кислорода, OCR и скорости внеклеточного подкисления, ECAR.
Клетки RPE являются высокометаболически активными клетками и являются одними из первых клеток, которые дегенерируют во время ВМД. Понимание их метаболической и митохондриальной функции позволяет разрабатывать новые лекарства. Для начала добавьте 100 микролитров на лунку клеточной суспензии в среде RPE человека до конечной концентрации 20 000 клеток на 100 микролитров в каждой лунке.
И убедитесь, что четыре угловых колодца пусты. Пипетка поднимается и опускается несколько раз, чтобы обеспечить однородную клеточную суспензию, используя многоканальную пипетку для простоты и согласованности. Добавьте 100 микролитров носителя только в четыре пустые угловые лунки для коррекции фона.
Оставьте планшет для культивирования клеток при комнатной температуре на один час, чтобы свести к минимуму эффект краев. Затем помещают его в инкубатор с 5%-ным углекислым газом 37 градусов по Цельсию и увлажняют. После ночной инкубации исследуйте клетки под микроскопом, чтобы проверить их морфологию и уровень пигментации перед сменой среды.
В последующие дни обследования убедитесь, что клетки сливаются с характерной морфологией, похожей на булыжник, и со временем приобретают пигментацию. Чтобы обеспечить гидратацию картриджа датчика за день до анализа, заполните каждую скважину технической пластины 200 микролитрами деионизированной воды и поместите картридж датчика, погруженный в воду, на полезную пластину. Храните примерно 20 миллилитров раствора калибранта в течение ночи в увлажненной духовке при температуре 37 градусов Цельсия без углекислого газа.
Включите прибор для респирометрии с высоким разрешением и запустите программное обеспечение, чтобы прибор стабилизировался при температуре 37 градусов по Цельсию в течение ночи. В день проведения анализа замените воду в служебной пластине равным объемом подогретого раствора калибранта не менее чем за 45 минут до проведения анализа. Нагрейте 25 миллилитров подготовленной среды для стресс-теста Mito без фенольного красного до 37 градусов Цельсия и вакуумный фильтр фильтрующего материала с температурой pH 7,4 с помощью фильтрующего блока с трубчатой крышкой.
Удалите среду RPE человека из планшета для клеточных культур и добавьте 100 микролитров свежеприготовленной пробирной среды. Затем поместите тарелку для клеточных культур в увлажненную печь с температурой 37 градусов Цельсия без углекислого газа на один час перед началом анализа. Каждый сенсорный картридж имеет четыре порта подачи реагентов на лунку для впрыска исследуемых соединений в пластинчатые лунки для клеточных культур во время анализа.
Приготовьте по три миллилитра растворов препарата Tenex каждый, разбавив запасы лекарств в соответствующих анализовых средах. Затем пипеткой вводят 20 микролитров лекарственного препарата «Техснабэкспорт» в порт А, 22 микролитра в порт Б и 25 микролитров в порт С для достижения заданной конечной концентрации лекарственного средства в каждой лунке. Затем в программном обеспечении для анализа откройте вкладку шаблонов, выберите стресс-тест Mito и заполните определения групп.
Введите подробную информацию о стратегии инъекций препаратов стресс-теста Mito. Затем введите подробную информацию о различных экспериментальных группах в анализе для контроля или лечения. Ввод сведений об анализируемой среде для добавления различных добавок и их конкретных концентраций в базовую анализирующую среду.
И, наконец, добавьте тип ячейки. Нажмите на следующую вкладку, а затем на карту плит, чтобы назначить различные исследуемые группы в их конкретное местоположение на 96-скважинной плите. После заполнения карты пластин щелкните вкладку протокола, чтобы просмотреть протокол прибора для протокола стресс-теста Mito по умолчанию.
Затем нажмите «Запустить анализ» и вставьте картридж датчика, погруженный в раствор калибра, в полезную пластину для калибровки. Этот процесс занимает около 25 минут, и каждый биосенсор калибруется независимо на выходе датчика, измеренном в растворе калибранта с известной концентрацией pH и кислорода. По завершении калибровки снимите полезную пластину и вставьте пластину для культивирования клеток.
После базового измерения прибор автоматически впрыскивает лекарственный раствор порта А в каждую лунку, которая следует за тремя циклами смешивания и измерения по три минуты каждый. Такая же картина происходит после каждой последующей инъекции препарата в другие порты. После завершения прогона извлеките пластину для культивирования клеток и картридж датчика.
В целях контроля качества убедитесь, что все порты для лекарств и картридж датчика были введены, проверив порты на отсутствие остатков лекарства. Затем исследуйте клетки в микропланшете клеточной культуры под микроскопом, чтобы убедиться в сливающемся монослое клеток. Затем откажитесь от пробирной среды и замените ее 60 микролитрами одного буфера для лизиса в каждой лунке.
Оберните края пластины парапленкой, чтобы предотвратить испарение, и поместите ее в морозильную камеру при температуре минус 80 градусов по Цельсию, чтобы облегчить лизис клеток в течение ночи перед количественной оценкой содержания белка с помощью анализа BCA. Согласно анализу данных, нормализуйте все данные, разделив скорость потребления кислорода или OCR и скорость внеклеточного подкисления или значения ECAR на микрограммы белка в каждой лунке. Затем экспортируйте генератор отчетов о стресс-тестах Mito, который использует макросы Excel для автоматического расчета параметров стресс-теста Mito с помощью программного обеспечения для анализа данных.
Следуя тем же шагам, которые были продемонстрированы для стресс-теста Мито, можно провести гликолитический стресс-тест, за исключением добавок для анализируемых сред и инъекций лекарств, которые отличаются, как показано в таблице один и таблица два. Прибор одновременно измеряет как OCR, так и ECAR для каждого пробега. Для стресс-теста Mito расчеты периметра основаны на показаниях OCAR, тогда как для гликолитического стресс-теста расчеты параметров основаны на показаниях ECAR.
Вот кривая OCR, полученная при выполнении стресс-теста Mito на первичных клетках RPE человека. Расчеты параметров стресс-теста Mito отображаются в виде гистограмм. Точно так же это кривая ECAR, полученная в результате выполнения гликолитического стресс-теста на первичных клетках RPE человека, и расчеты показаны в виде гистограмм.
Чтобы оптимизировать инъекцию препарата порта B для стресс-теста Mito, сравнивали эффективность двух разъединяющих агентов в увеличении OCR в первичных клетках RPE человека. Было обнаружено, что BAM15 превосходит FCCP в повышении дыхательной способности митохондрий, о чем свидетельствует значительно более высокое максимальное дыхание и резервная дыхательная способность с BAM15 по сравнению с FCCP. Важно не забывать увлажнять картридж датчика за день до проведения анализа.
Этот метод позволяет исследователям лучше охарактеризовать биоэнергетические профили клеток RPE и понять, как клетки RPE проявляют метаболическую гибкость в ответ на различные патогенные стимулы.
Related Videos
14:32
Related Videos
14.2K Views
10:19
Related Videos
10K Views
08:45
Related Videos
4.9K Views
09:53
Related Videos
5.7K Views
06:26
Related Videos
1.8K Views
08:09
Related Videos
5.6K Views
10:19
Related Videos
11.9K Views
09:24
Related Videos
9.6K Views
10:25
Related Videos
11.6K Views
08:33
Related Videos
42.9K Views