January 16th, 2024
В этой работе представлен альтернативный препарат плоской сетчатки, в котором удаление тел фоторецепторных клеток обеспечивает более быструю диффузию антител и улучшенный доступ к внутренним нейронам сетчатки с помощью пипетки для иммуногистохимии, гибридизации in situ и электрофизиологических экспериментов.
Наша группа интересуется нейронными схемами и синаптическими механизмами, лежащими в основе зрительной обработки в сетчатке. Лаборатория Морганса исследует молекулярные механизмы адаптации к свету в биполярных клетках, а лаборатория Сивьера интересуется тем, как внутренние нейроны сетчатки способствуют функционированию ганглиозных клеток. Доступ к нейронам межъядерного слоя во всей сетчатке является сложной задачей как для анатомических, так и для физиологических исследований.
Нейроны межъядерного слоя доступны в вертикальных секциях, но в поле зрения их очень мало. Кроме того, нарезка разрывает боковые отростки и соединения, которые могут повлиять на физиологические исследования. Удаление фоторецепторов в технике расщепления сетчатки значительно улучшает диффузию антител во внутреннюю сетчатку, что делает иммуномечение внутренних мишеней сетчатки более чем в 20 раз быстрее по сравнению с традиционной цельной сетчаткой.
Расщепленная сетчатка также значительно улучшает доступ к нейронам межъядерного слоя во время электрофизиологии патч-зажима. Метод расщепления сетчатки откроет двери для новых подходов и ускорит темп наших экспериментов. Например, мы планируем использовать эту методику для изучения входов биполярных клеток в ганглиозные клетки меланопсина путем экспрессии каналродопсина в биполярных клетках.
Это исследование представляет новую методику приготовления ретины в виде флатмаунта, которая улучшает диффузию антител и облегчает доступ к внутренним нейронам сетчатки. Эта методика значительно повышает эффективность экспериментов по иммуногистохимии, гибридизации in situ и электрофизиологии.
Efficient access to inner nuclear layer neurons is critical for de-risking early-stage ophthalmology targets and validating mechanistic hypotheses in retinal drug discovery. The split retina flatmount preparation accelerates quantitative immunolabeling and electrophysiological interrogation, supporting predictive confidence in neuronal pathway analysis. This capability enhances portfolio triage and informs translational continuity for vision research programs.
This preparation bridges early discovery and preclinical research by enabling robust functional and molecular analyses of inner retinal neurons.