December 8th, 2023
В настоящем протоколе описан метод обратной политрансфекции эмбриональных стволовых клеток мыши при культивировании средами 2i и LIF. Этот метод обеспечивает более высокую жизнеспособность и эффективность, чем традиционные протоколы прямой трансфекции, а также позволяет оптимизировать соотношение плазмид в одном горшке.
Наша работа, как правило, сосредоточена на использовании синтетических генетических устройств для манипулирования судьбой и поведением стволовых клеток. Контролируя клеточное состояние, мы стремимся продвигать развитие клеточной терапии следующего поколения. В последнее время было установлено более глубокое понимание взаимосвязи между дозировкой гена, определяющего судьбу, и линией клетки.
Этому способствовала разработка генетических регуляторов, способных точно титровать данный ген. Классические методы молекулярной биологии, такие как трансфекция или лентивирусная трансдукция для простой экспрессии генов, всегда будут основными. Тем не менее, в последнее время в нашей области были приняты синтетические устройства, которые включают в себя линейную и нелинейную обратную связь для получения более сложных результатов из доставленной ДНК.
Дозировка генов играет ключевую роль в определении результата экспрессии генов. При доставке нескольких экзогенных генов ключевым экспериментальным фактором является то, сколько каждого гена даст оптимальный или желаемый результат. Наш протокол позволяет исследователям быстро сканировать различные дозировки за одну процедуру, ища желаемое соотношение устройств ДНК.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Этот протокол описывает метод обратной политрансфекции для клеток эмбриональных стволовых клеток мыши, культивируемых в среде 2i и LIF. Этот подход повышает жизнеспособность клеток и эффективность трансфекции по сравнению с традиционными методами, что позволяет оптимизировать соотношение плазмид в одном шаге.
Efficient and scalable transfection of hard-to-manipulate cell types, such as mouse embryonic stem cells, is a critical bottleneck in early-stage genetic circuit discovery and synthetic biology R&D. The optimized reverse poly-transfection protocol enables rapid, quantitative exploration of nucleic acid ratios in a single well, supporting high-throughput hypothesis testing and functional target validation. This capability accelerates the design-make-test cycle for genetic devices, directly impacting portfolio triage and predictive confidence in cell-based therapeutic platforms.
This reverse poly-transfection protocol integrates at the interface of early discovery and lead identification, enabling rapid hypothesis testing and functional screening in pluripotent stem cell models.