February 16th, 2024
Циркадные ритмы, существующие у большинства организмов, регулируют временную организацию биологических процессов. В последнее время 3D-органоиды стали физиологически актуальной моделью in vitro . Этот протокол описывает использование биолюминесцентных репортеров для наблюдения за циркадными ритмами в органоидах, что позволяет проводить исследования циркадных ритмов в многоклеточных системах in vitro .
В настоящее время наша сфера исследований заключается в изучении роли циркадных ритмов в пролиферации и дифференцировке эпителиальных клеток кишечника. Мы пытаемся определить, регулируют ли циркадные часы пролиферацию и дифференцировку клеток из кишечных стволовых клеток. Этот протокол представляет собой метод мониторинга циркадных исследований трехмерных органоидов в режиме реального времени с использованием биолюминесцентного анализа.
В отличие от проведения биолюминесцентных анализов в обычной двумерной клеточной культуре, этот подход позволяет нам исследовать циркадные ритмы и их функции в более физиологически релевантной органоидной модели. Наши результаты показывают нарушение циркадных ритмов в условиях, обогащенных стволовыми клетками, в то же время демонстрируя устойчивые циркадные колебания в дифференцированных кишечных органоидах человека, что предполагает ремоделирование механизма циркадных часов от стволовых клеток к дифференцированным клеткам. Использование полученных от пациента органоидов с циркадными биолюминесцентными репортерами поможет нам улучшить наше понимание циркадных ритмов в периферических органах и различных болезненных состояниях.
В данном исследовании изучаются роли циркадных ритмов в пролиферации и дифференциации клеток интестинальной эпителия с использованием трехмерных органоидов. Протокол описывает метод биолюминесцентного анализа для мониторинга циркадных колебаний, выявляющий значительные различия в ритмичности в зависимости от состояния дифференциации клеток.
Real-time bioluminescence monitoring of circadian oscillations in human intestinal organoids enables discovery teams to interrogate temporal regulation of cell proliferation and differentiation in a physiologically relevant 3D system. This approach advances predictive confidence in target validation for pathways influenced by circadian biology, supporting risk-adjusted decisions at early discovery and preclinical inflection points. Integration of patient-derived organoids further enhances translational continuity for disease-relevant research portfolios.
This bioluminescence-based circadian monitoring method bridges early discovery, target validation, and preclinical research by providing quantitative, physiologically relevant data in 3D organoid models.