May 24th, 2024
Разработан усовершенствованный протокол анализа мобилизации кальция с эндотелиальными клетками, используемый для идентификации лигандов рецепторов, активируемых протеазой (ФАР). Новый протокол сокращает общее время анализа на 90-120 минут и позволяет получать воспроизводимые кривые «концентрация-реакция».
Наша лаборатория работает над тем, чтобы понять, как модуляция рецепторов, активированных протеазой, может подавлять воспаление. Мы разработали новый класс малых молекул под названием пармодулины, которые модулируют активность PAR1. Цель состоит в том, чтобы обнаружить пармодулины с улучшенными свойствами для потенциального использования в качестве кандидатов в лекарственные препараты, а также понять их механизм действия.
В доклинических исследованиях с нашими коллегами мы определили, что пармодулины могут быть особенно перспективными для лечения расстройств, вызванных тромбовоспалением, включая заболевания почек, печени и сердечно-сосудистые заболевания. Их механизм действия также может позволить разработать соединения с лучшим профилем безопасности, чем предыдущие PAR1, нацеленные на кандидаты в лекарственные препараты. Рецептор PAR1 важен для активации тромбоцитов, но его передача сигналов в эндотелиальных клетках также важна и актуальна при многочисленных патологиях.
Поэтому мы хотели разработать дешевый и удобный протокол для тестирования активности пармодулинов и культивируемых эндотелиальных клеток. Мы здесь, чтобы поделиться обновленным протоколом измерения мобилизации кальция, который использует стандартный считыватель пластин и не требует автоматизированного обработчика жидкостей. Он подходит для скрининга лигандов PAR1 в эндотелиальных клетках, но теоретически его можно использовать для измерения активности любых соединений, влияющих на мобилизацию кальция.
Это исследование представляет улучшенный протокол анализа мобилизации кальция с эндотелиальными клетками, направленный на идентификацию лигандов рецепторов, активируемых протеазами (PAR). Новый метод значительно сокращает время анализа и повышает воспроизводимость результатов.
High-throughput, quantitative calcium mobilization assays using standard plate readers enable scalable characterization of protease-activated receptor (PAR) modulators in endothelial systems. This workflow supports early-stage target validation and mechanistic de-risking for anti-inflammatory drug discovery, particularly for novel small molecules such as parmodulins. The approach enhances predictive confidence and portfolio triage by providing reproducible, medium-throughput screening without the need for costly automation.
This plate reader-based calcium mobilization assay bridges early discovery and lead identification for PAR-targeted programs, supporting both mechanistic studies and compound screening.