7 февраля 2025 г.
Модель повреждения костного мозга мышей является полезным инструментом для изучения постнатального остеогенеза посредством внутримембранозной оссификации. Этот упрощенный хирургический протокол описывает процедуру абляции костного мозга для последующей оценки новых костных образований и клеточных реакций после травмы.
Наше исследование направлено на понимание механизмов восстановления костной ткани с использованием модели травмы костного мозга. Мы стремимся выяснить, как регулируется внутримембранозная оссификация во время заживления, а также изучить терапевтические подходы, которые могут быть использованы для улучшения регенерации костей. Недавние исследования в этой области установили поверхностные маркеры, определяющие скелетные стволовые и прогениторные клетки, раскрывая их критическую роль в развитии и восстановлении костей.
Наш протокол позволяет исследовать вклад этих клеток во время внутримембранозной оссификации, что позволяет нам изучить их регуляцию и потенциал для терапевтического нацеливания во время восстановления кости. Наш протокол устраняет пробел в понимании восстановления кости исключительно путем внутримембранозной оссификации в постнатальном контексте, используя клинически значимую модель. В отличие от других моделей травмы, используемых для изучения внутримембранозной оссификации, наш протокол обеспечивает более контролируемую среду и воспроизводимые реакции на травмы, особенно в длинных костях.
В будущем наша лаборатория будет использовать модель повреждения костного мозга наряду с локализованными фармакологическими подходами для временной модуляции эпигенетических регуляторов остеогенеза. Наша цель — улучшить регенерацию и заживление костей с помощью новых терапевтических подходов. Для начала подготовьте и продезинфицируйте все рабочие поверхности дезинфицирующим средством клинического класса.
Накройте нагревательную платформу стерильной хирургической прокладкой. Соберите и расставьте все стерильные инструменты, а также реактивы. Теперь взвесьте мышь с помощью прецизионных весов.
Исходя из имеющейся рецептуры бупренорфина, рассчитайте необходимый объем для введения анальгетика. После обезболивания мыши осторожно извлеките ее из индукционной камеры. Поместите животное на стерильную хирургическую прокладку в положении лежа на спине и наденьте носовой конус на голову мыши.
Кратковременно извлеките мышь из носового конуса и введите рассчитанную дозу анальгетика бупренорфина с пролонгированным высвобождением подкожным путем. Затем осторожно поместите мышь обратно в узел для анестезии носового конуса. Наполните трехмиллилитровый шприц, оснащенный иглой 26-го калибра, стерильным физиологическим раствором и поставьте его в сторону.
Снимите шерсть с задней конечности, где будет проводиться процедура, с помощью электрических или аккумуляторных машинок для стрижки. С помощью стерильных ватных аппликаторов нанесите на место операции скраб с 10% повидон-йодом, затем нанесите скраб с 70% изопропиловым спиртом и дайте области полностью высохнуть. Теперь положите мышь на заднюю часть и согните колено операционной ноги.
Держите ногу недоминирующей рукой так, чтобы колено было согнуто над средним пальцем. Второй палец опирается на бедренную кость, а большой палец – на большеберцовую кость. С помощью скальпеля сделайте небольшой неглубокий горизонтальный надрез чуть ниже коленной чашечки.
Найдите суставное пространство с помощью иглы, расположенной горизонтально поперек согнутого колена, и нащупайте пространство между бедренной и большеберцовой костью. С помощью этого анатомического шаблона вручную просверлите дистальный отдел бедренной кости от колена к проксимальному отделу с помощью иглы 25-го калибра. Введите иглу через коленную чашечку или вокруг нее.
Подтвердите правильное размещение иглы в костномозговой полости с помощью рентгена, убедившись, что она находится как можно ближе к центру. После извлечения иглы 25-го калибра немедленно вставьте иглу 26-го калибра в то же отверстие в полости костного мозга. Разверните боковые стороны костномозговой полости круговыми движениями не менее пяти раз, пока она не станет гладкой.
Затем снимите иглу 26-го калибра и промойте полость 1,5-2 миллилитрами физиологического раствора, пока обратный поток не станет прозрачным. Безопасно утилизируйте шприц и иглу в специально отведенном для этого контейнере. Далее закройте рану на коже с помощью местного адгезивного шва.
Сразу после операции введите оставшуюся дозу бупренорфина с пролонгированным высвобождением, как было рассчитано ранее. Следите за животным на грелке на предмет признаков нормального, беспрепятственного дыхания.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Это исследование сосредоточено на модели повреждения костного мозга мышей для исследования послеродового остеогенеза путем внутримембранной окостенения. Описанный протокол обеспечивает контролируемую среду для оценки клеточных реакций и формирования новой кости, полученной в результате процедуры.
Reliable modeling of postnatal intramembranous ossification is critical for de-risking early bone repair targets and understanding skeletal stem and progenitor cell (SSPC) contributions. This improved murine bone marrow injury model enables reproducible, quantitative assessment of new bone formation, supporting predictive confidence in target validation and translational research. The approach addresses a key inflection point for portfolio decisions in bone regeneration and repair programs.
This model integrates into the discovery-to-preclinical continuum for bone repair, enabling early target validation, quantitative screening, and translational assessment of regenerative interventions.