6 июня 2025 г.
Используя мультимодальную платформу, сочетающую безмаркерные методы оптической визуализации, мы разработали протокол для визуализации и количественной оценки клеточной динамики и метаболизма. С помощью визуализации с помощью многофотонной флуоресценции, генерации второй гармоники и микроскопии вынужденного комбинационного рассеяния мы можем создать целостный обзор клеточной и молекулярной среды.
Наши исследования включают в себя использование нашего мультимодального микроскопа для измерения молекулярных и метаболических различий в нескольких патологиях и визуализации их пространственной гетерогенности. Мультимодальный подход к оптической визуализации позволяет нам идентифицировать патофизиологические изменения с различных точек зрения. Мультимодальный подход к оптической микроскопии постоянно расширяет свое применение, особенно в клинических условиях, где разработка микроэндоскопов открыла путь для клинической визуализации.
Текущие экспериментальные проблемы заключаются в сложности объединения всего оборудования друг с другом, что является одной из причин, по которой мы используем специально разработанную систему микроскопов. Благодаря использованию нашей мультимодальной платформы оптической визуализации мы добились значительных успехов в изучении биоортогональных заболеваний без меток, включая классификацию различных подтипов рака молочной железы и анализ липидного обмена в мозге дрозофил и мышей. Используя нашу мультимодальную оптическую визуализацию без меток, мы можем одновременно визуализировать метаболизм, морфологию и молекулярный состав, что является мощным инструментом для исследования заболеваний и процессов старения.
Для начала разогрейте лазер и подождите примерно от 15 до 20 минут. Включите блок управления, затем контроллер сенсорной панели, адаптер переменного тока для основного лазерного пульта дистанционного управления и адаптер переменного тока для дистанционного управления сублазером, затем включите детектор кремниевых фотодиодов и синхронный усилитель. Настройте лазерную систему с накачкой луча, настраиваемым в диапазоне от 780 нанометров до 990 нанометров, с длительностью импульса от пяти до шести пикосекунд и частотой повторения 80 мегагерц.
Луч лазера Стокса должен иметь фиксированную длину волны 1031 нанометр, импульс в шесть пикосекунд и частоту повторения 80 мегагерц. Убедитесь, что оба луча насоса и стокса имеют низкую мощность, не менее 20 милливатт, чтобы она была видна на юстировочной пластине. Нанесите масло на масляный конденсатор с высокой числовой апертурой.
Установите предметное стекло микроскопа на масляный конденсатор и поместите крупную каплю воды на предметное стекло микроскопа для объектива 25X для воды. Отрегулируйте Z-ступень, чтобы настроить фокус до тех пор, пока яркое светлопольное изображение биологического образца не станет видимым под объективом 25X для воды. Начните процесс визуализации в правильной последовательности, чтобы избежать фотообесцвечивания.
Чтобы быстро переключаться между MPF и SHG, переключитесь с балки насоса на неподвижную балку Стокса. Выберите разрешение изображения 512 на 512 пикселей. Установите время задержки на восемь микросекунд на пиксель для MPF и SHG, со средним значением кадра выше трех.
Используйте 40 микросекунд на пиксель со средним значением кадра два для модальности SRS. Чтобы получить автофлуоресценцию с помощью MPF, выключите луч лазера Стокса. Настройте лазер накачки на 800 нанометров, чтобы возбудить NADH и флавин.
Получите сигнал коллагенового волокна с помощью ГВГ. Выключите лазерный луч накачки и используйте только лазерный луч Стокса мощностью 500 милливатт. Получите пространственное распределение белков и липидов с помощью SRS.
Держите оба лазерных луча включенными и отрегулируйте частоту лазерного луча в соответствии с конкретной модой колебаний для каждой молекулы. Чтобы получить наборы данных гиперспектральных изображений SRS, выберите режим набора и установите диапазон длин волн от 781,3 нанометров до 806,5 нанометров. Выберите число стека не менее 60 и захватите стек гиперспектральных изображений.
Сохраните все изображения одних и тех же областей интереса в одной папке и убедитесь, что формат изображения — файл Olympus OIR. Автофлуоресценция и SRS-визуализация успешно захватили метаболическую и структурную информацию из легочной ткани человека. Ратиометрический анализ оптического окислительно-восстановительного коэффициента и коэффициента ненасыщения липидами позволил получить пространственные распределения метаболической активности и молекулярного состава в легочной ткани человека.
Количественное сравнение окислительного стресса и ненасыщения липидами между здоровой и опухолевой тканью выявило различия в метаболических состояниях.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании представлена мультимодальная платформа оптической визуализации, позволяющая визуализировать и количественно оценивать клеточную динамику и метаболизм. Используя различные методы визуализации, мы можем получить представление о клеточном и молекулярном окружении при различных патологиях.
Мультимодальные платформы для оптической визуализации, объединяющие методы МФК, ВГГ и СРР, позволяют проводить одновременный безметочный количественный анализ клеточного метаболизма, морфологии и молекулярного состава с субклеточным разрешением. Эта возможность удовлетворяет критическую потребность в получении высокосодержательных, пространственно разрешенных метаболических и структурных данных на этапах раннего поиска и трансляционных исследований, что повышает прогностическую достоверность моделирования заболеваний и снижает риски при изучении механизмов. Способность платформы осуществлять корегистрацию нескольких функциональных показателей из одной и той же биологической области оптимизирует принятие решений по портфелю препаратов и способствует риск-ориентированному продвижению разработок.
Эта мультимодальная платформа визуализации связывает этапы первичного поиска, идентификации ведущих соединений и доклинических исследований, предоставляя мультиплексные количественные данные о целостных биологических системах.