6 июня 2025 г.
В этом исследовании представлен масштабируемый, надежный и воспроизводимый метод повторных хронических записей коры головного мозга в модели свиньи. Метод находит применение в различных областях нейробиологии, включая исследования боли и диагностику неврологических заболеваний.
Это исследование направлено на разработку масштабируемого и надежного метода хронической корковой записи у свиней, решение проблем отказа устройства и реакции тканей, улучшение нейробиологии, диагностики и исследований. Чтобы извлекать информацию из мозга в течение длительных периодов времени, современные технологии сосредоточены на создании стабильного и надежного интерфейса между электродом и мозгом, обеспечивая согласованные сигналы от одной и той же нейронной популяции. Электрокортикография и внутричерепные записи обычно используются для длительных записей мозга.
Эти электроды остаются на одном и том же месте, но граница раздела электродов изменяется из-за реакции тканей и отказа устройства. Для начала определите точку брегмы, проведя прямые линии между каждым ухом и контралатеральным глазом. Точка брегмы находится на пересечении этих линий.
Сделайте скальпелем надрез немного сбоку от точки брегмы. С помощью прижигания продолжайте разрез через кожу. После установки стерильной простыни сделайте первоначальный разрез с отмеченной стороны в дерме с помощью скальпеля.
С помощью прижигания продолжайте разрез через кожу. После установки ретрактора подтяните кожу с помощью щипцов и разрежьте аваскулярную соединительную ткань между надкостницей и подподкутом, чтобы обеспечить гибкость для наложения швов в дальнейшем. Установите еще один ретрактор, чтобы обеспечить дополнительную гибкость кожи.
Сверлите сверло отверстие диаметром 10 миллиметров спереди к линии сагиттального шва и сбоку от средней линии шва с помощью сверла с закругленным лезвием. Как только твердая мозговая оболочка станет видимой, переключитесь на сверло меньшего размера, чтобы добиться максимальной ширины отверстия на уровне твердой мозговой оболочки. Обрежьте края отверстия с помощью ронжеров.
Убедитесь, что краниальное окно полностью входит в просверленное отверстие, доходя до дна без зазоров и определите подходящую глубину. Удерживая черепное окно на месте, отметьте места отверстий для винтов ручной дрелью. Снимите черепное окно и просверлите отмеченные отверстия на глубину не менее четырех миллиметров.
Затем установите черепное окно обратно. После извлечения иглы из набора для инфузии бабочек измерьте глубину отверстия винта через краниальное окно с помощью тупой бабочки. Вставьте и закрепите в отверстие винт соответствующей длины.
Поместите U-образный соединитель под винт, который перфорирует череп и касается твердой мозговой оболочки. Введите две иглы перпендикулярно нервному руслу на расстоянии примерно двух сантиметров друг от друга. Снова проткните кожу примерно в трех сантиметрах от точки введения.
Пропустите проволоку Кунера через иглы и удалите иглы, оставив провода частично под кожей. Окунув электрод микроэлектрокортикографии в спирт, поместите его в ZIF-Clip Headstage. С помощью микроманипулятора и аккуратно направляя его ватной палочкой, установите микроэлектрод электрокортикографии на место.
Подсоедините провода заземления электрода к винту заземления с помощью разъема типа «крокодил». Наложите стерильную марлю на электрод, чтобы сохранить плотный контакт с тканями. Капните на марлю физраствор температуры тела, чтобы предотвратить высыхание ткани.
Затем примените электрическую стимуляцию локтевого нерва через периферический провод, чтобы вызвать небольшие движения в передней конечности. Предварительный просмотр спонтанных и вызванных сигналов мозга. Установите колпачок краниального окна, чтобы закрыть краниальное окно, следя за тем, чтобы он точно прилегал к краниальному окну и не требовал дополнительного крепления.
Положите пакетик с антибиотиком поверх крышки краниального окна. Закройте кожу подкожно, используя технику заглубленного вертикального матраса с помощью одиночных рассасывающихся швов, расположив их на расстоянии от пяти до 10 миллиметров друг от друга. Завяжите последние три шва после того, как все швы будут наложены.
Затем наложите внутрикожные швы непрерывным образом, начиная на один-два сантиметра латеральнее места разреза и проходя под кожей к дермальному слою, но ниже его поверхности. Завяжите узел на боковом конце, чтобы предотвратить раздражение или ослабление шва. Затем наложите непрерывный шов между подкожными швами до тех пор, пока не будет достигнута другая сторона разреза.
Сделайте новый разрез в дерме скальпелем немного латеральнее средней линии. С помощью прижигания продолжайте разрез через кожу. Затем разрежьте надкостницу, чтобы имплантат стал виден.
Наконец, легкими круговыми движениями ватной палочки удалите любую соединительную ткань из отверстия до тех пор, пока твердая мозговая оболочка не станет видимой. На этом рисунке показана стабильность и модуляция связанных с событиями потенциалов или ERP, зарегистрированных в разные моменты времени и при различных условиях стимуляции. ERP, записанные в трех временных точках, показали почти идентичные формы сигналов, демонстрирующие высокую воспроизводимость метода краниального окна с течением времени.
Пиковые амплитуды и межканальная вариабельность остаются стабильными в течение сеансов, что указывает на стабильное качество сигнала, в то время как небольшая задержка в первом сеансе, вероятно, отражает изменения в развитии. Высокочастотная стимуляция значительно увеличила пиковую амплитуду N1, подтвердив чувствительность ERP к нейропластическим изменениям, связанным с повышенной болевой чувствительностью. Такой подход снижает риски, связанные с постоянными имплантатами, за счет исключения отказа устройства и реакций на электроде.
Это, в свою очередь, повышает точность записи и обеспечивает высокую надежность записи. Этот метод также снижает затраты на исследования и улучшает благополучие животных. В дальнейшем он может быть реализован у других видов или для доступа к другим областям мозга.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании представлен масштабируемый и надежный метод хронической регистрации кортикальной активности на модели свиньи, позволяющий решить проблемы отказа устройств и тканевого ответа. Данная методика особенно актуальна для исследований боли и диагностики неврологических заболеваний.
Надежная хроническая регистрация кортикальной активности имеет решающее значение для трансляционной нейронауки, обеспечивая стабильный сбор нейронных сигналов для поиска биомаркеров и валидации устройств. Метод установки хронического краниального окна у свиней позволяет решить проблемы, связанные с выходом устройств из строя и тканевым ответом, что повышает прогностическую достоверность нейрофизиологических исследований. Этот масштабируемый подход оптимизирует принятие решений при формировании портфеля разработок в области интерфейсов мозг-компьютер и исследовании патологий нервной системы.
Данный метод интегрируется в континуум от этапа поиска до доклинических исследований, обеспечивая поддержку как ранних механистических исследований, так и трансляционной валидации биомаркеров на моделях крупных животных.