16 мая 2025 г.
В этой статье мы представляем подход к генной терапии, который доставляет хитозан с покрытием ABE непосредственно в костный мозг путем внутрикостной инъекции.
Мы предлагаем метод генной терапии, который напрямую доставляет хитозан на основе аденина в костный мозг через внутрикостную инъекцию. Эффективность трансфекции экзогенных плазмид экспериментальным животным относительно низка, и введение плазмид для долгосрочной экспрессии генов может зависеть от иммунной системы. Мы используем хитозан для инкапсуляции плазмид на основе аденина и доставляем комплекс непосредственно в костный мозг мышей через внутрикостное введение, что делает его пригодным для заболеваний, вызванных аномальной функцией остеокластов.
Наш протокол обеспечивает высокую эффективность трансфекции, небольшие биологические повреждения и высокую эффективность экспрессии генов. Наша новая стратегия подходит не только для лечения заболеваний, вызванных аномальной функцией остеокластов, но и имеет значительный потенциал для развития в области генной терапии. Для начала поместите усыпленную мышь на рабочий стол.
С помощью хирургических ножниц и пинцета удалите большеберцовую кость и снимите всю окружающую мышечную ткань. Замочите очищенную голень в PBS и промойте до тех пор, пока не останется только кость. Наберите один миллилитр PBS в шприц и промойте клетки костного мозга с одного конца большеберцовой кости до тех пор, пока кость не станет полностью белой.
Далее соберите клеточную суспензию в пробирку. Центрифугируйте его при 800 G при четырех градусах Цельсия в течение пяти минут. После пипетирования надосадочной жидкости добавьте в гранулу 500 микролитров буфера для лизиса эритроцитов.
Через минуту добавьте один миллилитр разделительного буфера, чтобы завершить лизис. Снова центрифугируйте суспензию при 800 G при четырех градусах Цельсия в течение пяти минут. Удалите надосадочную жидкость и положите полученную клеточную гранулу на лед для последующего использования.
Для трансфекции хитозана растворяют четыре миллиграмма хитозана в 20 миллилитрах раствора уксусной кислоты. Отрегулируйте pH до 5,5 с помощью 10 моляров гидроксида натрия. Затем распределите 500 микролитров раствора хитозана по отдельным микроцентрифужным пробиркам.
Теперь добавьте два, три, четыре и пять микрограммов плазмид ABE в отдельные пробирки. Растворите плазмиды в 500 микролитрах 30 миллимолярного сульфата натрия. Затем смешайте 500 микролитров раствора плазмиды с 500 микролитрами раствора хитозана в соответствующих пробирках.
Инкубируйте трубки на водяной бане при температуре от 50 до 55 градусов Цельсия в течение 15 минут. Сделайте каждую трубку вихревой в течение 15-30 секунд и дайте им постоять в течение 30 минут. Для определения характеристик проанализируйте диаметр и дзета-потенциал хитозана с помощью динамического рассеяния света.
Поддерживайте концентрацию хитозана на уровне 0,1 миллиграмм на миллилитр в дважды дистиллированной воде. Затем отлите образцы хитозана с концентрацией 0,1 миллиграмма на миллилитр на кремниевый чип. Добавьте 20 микролитров ресуспендированных образцов на сетки 200 меш и инкубируйте.
Центрифужную суспензию клеток костного мозга при 800 G при четырех градусах Цельсия в течение пяти минут. Выбросьте надосадочную жидкость, затем добавьте 500 микролитров лизата эритроцитов. Через минуту добавьте один миллилитр разделительного буфера, чтобы остановить реакцию.
Затем подсчитайте количество ячеек с помощью счетчика ячеек. Затем перенесите 1 миллион клеток в новую микроцентрифужную пробирку. После повторного центрифугирования извлеките надосадочную жидкость пипеткой и повторно суспендируйте клетки в 500 микролитрах PBS.
Перенесите ресуспензионные клетки в пробирку проточной цитометрии и измерьте эффективность трансфекции с помощью проточной цитометрии. Для инъекции в полость костного мозга зафиксировать обезболенную мышь в лежачем положении на операционном столе. Используйте клейкую ленту, чтобы зафиксировать переднюю конечность на месте.
Продезинфицируйте заднюю большеберцовую кость с помощью спиртового тампона. Затем загрузите плазмидный раствор в одномиллилитровый шприц, оснащенный иглой 26 калибра. Удалите все пузырьки воздуха и держите шприц готовым к инъекции.
Далее коснитесь и стабилизируйте голень мышки пальцами. Расположите иглу для инъекции так, чтобы она вошла в большеберцовый ствол от плато большеберцовой кости рядом с коленным суставом. Теперь поверните иглу параллельно большеберцовой кости, введите в полость костного мозга и медленно вводите в течение трех секунд.
После инъекции медленно извлекайте иглу в течение трех секунд. Немедленно продезинфицируйте место прокола с помощью спиртового тампона, чтобы остановить кровотечение. Поместите мышь в теплое место с температурой 37 градусов по Цельсию, чтобы облегчить ее восстановление.
Наночастицы, образованные плазмидами ABE и GRNA, имели однородную сферическую морфологию и узкое распределение по размерам со средним размером 202,9 нанометра. Дзета-потенциал равен 2,77 милливольта и индекс полидисперсии 0,22. Встроенная в хитозан плазмида ABE значительно усилила флуоресцентный сигнал в клетках костного мозга, что указывает на более высокую эффективность трансфекции по сравнению с контрольной группой.
Проточная цитометрия подтвердила, что плазмида ABE, кодируемая хитозаном, достигает высокой эффективности трансфекции в клетках костного мозга. При пиковой эффективности 51,2% наблюдалась при дозе четыре мкг, при этом три мкг обеспечивали баланс высокой эффективности 47,2%Секвенирование по Сэнгеру и ПЦР геномной ДНК клеток костного мозга выявили in vivo редактирование генов на целевом сайте А1 с эффективностью 14,27% и на сайте А2 с эффективностью 10,69%.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
Это исследование представляет новый метод генной терапии, который использует хитозан для доставки плазмидных редакторов на основе аденина прямо в костный мозг путем внутрикостной инъекции. Этот подход направлен на повышение эффективности трансфекции и экспрессии генов при минимизации биологического повреждения.
Efficient gene delivery to bone marrow remains a bottleneck in preclinical gene therapy and disease modeling, limiting predictive confidence in target validation and mechanistic studies. The use of chitosan nanoparticles for intraosseous delivery of adenine base editor plasmids directly addresses transfection efficiency and immune evasion challenges. This approach enables robust in vivo gene editing, supporting translational continuity and risk-adjusted advancement in bone and osteoclast-related disease research portfolios.
This intraosseous chitosan nanoparticle delivery method integrates at the interface of early discovery and preclinical model development, enabling direct gene editing in bone marrow for target validation and mechanistic studies.